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        核果類果樹遺傳轉(zhuǎn)化及檢測(cè)技術(shù)研究進(jìn)展

        2013-01-01 00:00:00、宗曉娟等
        山東農(nóng)業(yè)科學(xué) 2013年4期

        摘要:綜述了近年來(lái)國(guó)內(nèi)外常見核果類果樹遺傳轉(zhuǎn)化的研究進(jìn)展,概述了目前果樹遺傳轉(zhuǎn)化的主要方法,闡述了核果類果樹遺傳轉(zhuǎn)化植株的主要鑒定方法,指出了當(dāng)前研究中存在的一些問(wèn)題,探討了轉(zhuǎn)基因研究未來(lái)的發(fā)展方向。

        關(guān)鍵詞:核果類果樹;遺傳轉(zhuǎn)化;檢測(cè)技術(shù);發(fā)展方向

        中圖分類號(hào):S662;Q789文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)號(hào):A文章編號(hào):1001-4942(2013)04-0130-07

        核果類果樹是指薔薇科李屬(Prunus)、果實(shí)為核果的一類果樹,包括桃、杏、李和櫻桃等,是我國(guó)落葉果樹的重要種類。果樹長(zhǎng)期的育種實(shí)踐表明,常規(guī)雜交育種方法對(duì)核果類果樹種質(zhì)改良有很大的局限性;基因工程育種周期短,基因資源豐富,能最大限度地克服物種生殖隔離的障礙,實(shí)現(xiàn)生物界遺傳物質(zhì)的自由交流。自1988年首例轉(zhuǎn)基因核桃成功報(bào)道以來(lái)[1],基因轉(zhuǎn)化方面的研究在果樹遺傳轉(zhuǎn)化研究上得到了廣泛應(yīng)用,其在果樹遺傳改良中的作用越來(lái)越受到重視。本文主要綜述了近年來(lái)國(guó)內(nèi)外在核果類果樹遺傳轉(zhuǎn)化方面所取得的進(jìn)展,為基因工程育種提供參考和借鑒。

        1常見核果類果樹遺傳轉(zhuǎn)化的研究現(xiàn)狀

        11桃

        桃轉(zhuǎn)基因難度較大,多數(shù)研究只獲得了轉(zhuǎn)基因的愈傷組織而未能獲得轉(zhuǎn)基因植株。1991年Smigocki和Hammerschlag[2]用未成熟桃胚為外植體,經(jīng)過(guò)愈傷組織誘導(dǎo)和再分化,成功將細(xì)胞分裂素合成酶基因(IPT)導(dǎo)入了桃,這是世界上首例也是目前為止唯一公開報(bào)道的轉(zhuǎn)基因桃實(shí)例。農(nóng)桿菌介導(dǎo)法、基因槍法、花粉管通道法在桃遺傳轉(zhuǎn)化研究中均有報(bào)道[3~6]。

        Smigocki等[8]早期利用Ti質(zhì)粒中含細(xì)胞分裂素合成酶基因和生長(zhǎng)素酶突變基因的根癌農(nóng)桿菌與桃的成熟細(xì)胞共培養(yǎng)進(jìn)行感染,獲得了桃轉(zhuǎn)化細(xì)胞及愈傷組織。Martin[9]曾用2種發(fā)根農(nóng)桿菌和8種根癌農(nóng)桿菌感染桃,證明了以GUS基因作為桃遺傳轉(zhuǎn)化的報(bào)告基因和測(cè)試包含GUS基因標(biāo)記系統(tǒng)的農(nóng)桿菌的有用性。Ognjanow[10]用帶有GUS基因的農(nóng)桿菌感染桃子葉轉(zhuǎn)化體,GUS熒光檢測(cè)與陰性對(duì)照明顯不同。Hammerschlag等[11]用農(nóng)桿菌tma328∶tn5轉(zhuǎn)化桃成年樹離體莖段,均產(chǎn)生了腫瘤組織,并表現(xiàn)出不依賴細(xì)胞分裂素的特性,轉(zhuǎn)化體DNA呈陽(yáng)性,初次說(shuō)明了成年桃樹的細(xì)胞能夠被轉(zhuǎn)化及根癌菌具有轉(zhuǎn)化重要基因到桃樹上的潛能。1991年他們又用tma328∶tn5感染未成熟桃胚,將共培養(yǎng)后的外植體接種在無(wú)激素的MS培養(yǎng)基上,誘導(dǎo)產(chǎn)生愈傷組織,這些愈傷組織在分化培養(yǎng)基上分化產(chǎn)生了芽。Ye等[6]用基因槍法轟擊桃未成熟胚、胚軸、子葉、莖尖、葉片和長(zhǎng)期胚性愈傷組織轉(zhuǎn)化GUS/NPTⅡ嵌合基因,所有類型的外植體均獲得了GUS基因瞬時(shí)表達(dá),并在長(zhǎng)期胚性愈傷組織中得到穩(wěn)定表達(dá)。他們篩選出了桃組織遺傳轉(zhuǎn)化的最優(yōu)組合,并用微粒轟擊法使外源基因成功導(dǎo)入桃胚愈傷組織并得到穩(wěn)定表達(dá)。金勇豐等[12,13]已先后從桃品種“玉露”克隆了ACC氧化酶和ACC合酶的基因,且已構(gòu)建其反義植物表達(dá)體系,若轉(zhuǎn)化桃獲得成功,可望阻抑果實(shí)軟化期該基因的表達(dá),從而提高果實(shí)的耐貯性?,F(xiàn)已成功獲得導(dǎo)入了ACC氧化酶反義基因的轉(zhuǎn)基因桃植株[12],目前正在培育以觀察轉(zhuǎn)基因果實(shí)的性狀。

        李曜東等[14]將肥城桃反義PG基因通過(guò)農(nóng)桿菌介導(dǎo)轉(zhuǎn)化組培苗,轉(zhuǎn)化苗在含卡那霉素培養(yǎng)基上篩選,獲得抗卡那霉素轉(zhuǎn)基因苗。吳延軍等[15]以桃幼胚作為根癌農(nóng)桿菌介導(dǎo)轉(zhuǎn)化的受體,通過(guò)GUS基因瞬時(shí)表達(dá)率的分析,研究出了該轉(zhuǎn)化體系的最佳實(shí)驗(yàn)參數(shù),GUS瞬時(shí)表達(dá)率最高。Pérez-Clemente等[3]2004年報(bào)道以GFP為內(nèi)部標(biāo)記鑒定轉(zhuǎn)基因桃樹。萬(wàn)春雁等[7]2009年對(duì)桃花粉管通道法轉(zhuǎn)基因技術(shù)進(jìn)行初步研究,探索一種建立于組織培養(yǎng)之外的轉(zhuǎn)基因方法。

        12李

        除了桃,其它核果類果樹的遺傳轉(zhuǎn)化研究也得到廣泛開展。1991年,Mante等[16]首先實(shí)現(xiàn)了西洋李轉(zhuǎn)基因,目前已在波蘭、羅馬尼亞和西班牙等3個(gè)不同氣候條件的國(guó)家進(jìn)行了溫室和大田試驗(yàn)。Scorza等[17,18]在李樹上轉(zhuǎn)化木瓜環(huán)斑病毒(PRV)外殼蛋白基因,并就轉(zhuǎn)基因植株對(duì)李痘病毒(PPV)的反應(yīng)進(jìn)行了初步研究。1994年,Scorza等[19]成功利用帶有重組質(zhì)粒PGA482 gg/PPV-CP-33的致瘤農(nóng)桿菌與下胚軸切段共培養(yǎng)獲得了轉(zhuǎn)PPV外殼蛋白基因的歐洲李轉(zhuǎn)基因莖,在歐洲和地中海地區(qū)用于防治核果類重要病害的發(fā)生。Ravelonandro等[20~23]先后幾年致力于利用轉(zhuǎn)基因技術(shù)抵御李痘病侵染的研究;Yancheva等[24]利用農(nóng)桿菌介導(dǎo)法進(jìn)行了李樹遺傳轉(zhuǎn)化的研究;Malinowski等[25]2006年成功進(jìn)行了李樹轉(zhuǎn)PPV-CP基因的田間試驗(yàn);2008年Urtubia等[26]在中國(guó)李子兩個(gè)變種“Angeleno”和“Larry Anne”上用農(nóng)桿菌GV3101介導(dǎo)轉(zhuǎn)化NPTⅡ和GFP兩種基因,并成功進(jìn)行了檢測(cè);2011年,Ilardi等[27]研究并報(bào)道了利用轉(zhuǎn)基因技術(shù)防止李痘病毒在草本寄主和核果類果樹上侵染的相關(guān)研究成果。至今,轉(zhuǎn)基因技術(shù)在李樹上的應(yīng)用已取得了一定成績(jī),并在一直不斷地研究與進(jìn)步。

        13杏

        1992年Machado等[28]首次通過(guò)致瘤農(nóng)桿菌將PPV外殼蛋白基因成功轉(zhuǎn)入杏的Kecskemeter品種,是杏轉(zhuǎn)基因的首次成功。而后,Machado等[29]又進(jìn)行了利用轉(zhuǎn)基因技術(shù)在草本模式寄主以及杏、李上防治PPV的相關(guān)研究。2004年,Petri等[30]以杏樹葉片為試材,對(duì)農(nóng)桿菌介導(dǎo)的轉(zhuǎn)基因技術(shù)的影響因素進(jìn)行了優(yōu)化研究,并成功篩選出最優(yōu)因子。隨后,有人對(duì)氨基糖苷類抗生素[31]、植物生長(zhǎng)素、多胺與乙烯抑制劑等因素對(duì)轉(zhuǎn)基因杏樹葉組織選擇及再生作用進(jìn)行了研究報(bào)道[32];也有研究表明,轉(zhuǎn)化PRV外殼蛋白到杏樹上會(huì)提高杏樹對(duì)PPV的抗性 [17,18,33]。2007年,宮雪超等[34]報(bào)道了利用Southern雜交法對(duì)轉(zhuǎn)基因杏和柑橘進(jìn)行檢測(cè)與鑒定??傊?,杏樹的遺傳轉(zhuǎn)化研究已在方法、效率以及檢測(cè)等方面取得了巨大進(jìn)步。

        14扁桃

        1995年,Archilleti等[35]報(bào)道了用含有NPTⅡ基因的致瘤農(nóng)桿菌轉(zhuǎn)化扁桃品種MN51和Supernova葉片,試驗(yàn)了不同的細(xì)菌濃度、共培養(yǎng)時(shí)間和卡那霉素選擇前的培養(yǎng)時(shí)間,以期建立有效的轉(zhuǎn)化和再生體系。Miguel等 [36]于1999年獲得第一株轉(zhuǎn)基因扁桃植株,他用離體培養(yǎng)的葉片外植體為起始材料首次建立了表達(dá)NPTⅡ和GUS基因的扁桃品種Boa Casta轉(zhuǎn)基因克隆,有3個(gè)克隆是嵌合體;與帶有相同質(zhì)粒的菌株LBA4404相比,EHA105轉(zhuǎn)化產(chǎn)生的轉(zhuǎn)化子的GUS陽(yáng)性頻率和GUS表達(dá)單位更高。2000年,Ainsley [37]對(duì)扁桃基因轉(zhuǎn)化技術(shù)的發(fā)展進(jìn)行了論述;Ramesh等[38]于2006年對(duì)以扁桃為材料的農(nóng)桿菌介導(dǎo)的遺傳轉(zhuǎn)化方法進(jìn)行了部分改進(jìn),建立了優(yōu)化的農(nóng)桿菌介導(dǎo)轉(zhuǎn)化體系,扁桃遺傳轉(zhuǎn)化取得了較快進(jìn)展。

        15櫻桃

        第一例轉(zhuǎn)基因櫻桃于1998年首次報(bào)道[39],1999年Dolgov等[45]報(bào)道了酸櫻桃的重組轉(zhuǎn)化,我國(guó)科學(xué)家方宏筠等[40]也于1999年成功地將抗菌肽基因?qū)霗烟?。Bhagwat等[41]2004年報(bào)道了甜櫻桃拉賓斯和甜心的體外遺傳重組;Song等[42]于2005年對(duì)酸櫻桃農(nóng)桿菌轉(zhuǎn)化瞬時(shí)表達(dá)因素及芽再生條件進(jìn)行了優(yōu)化,遺傳轉(zhuǎn)化技術(shù)在櫻桃上的應(yīng)用獲得了較快發(fā)展。張開春等[43]從圓葉櫻桃中克隆了多聚半乳糖醛酸酶抑制蛋白(PGIP)基因,為通過(guò)轉(zhuǎn)基因技術(shù)操縱櫻桃果實(shí)的成熟和軟化奠定了良好的基礎(chǔ)。Dolgov等[44,45]已獲得7個(gè)含有抗凍基因的酸櫻桃轉(zhuǎn)化系,目的是為了防止春季霜凍時(shí)細(xì)胞內(nèi)冰晶形成,但遺憾的是未在轉(zhuǎn)化植物中表達(dá)出相應(yīng)的蛋白質(zhì)。

        用6個(gè)不同的帶有pBI121的野生型農(nóng)桿菌菌株轉(zhuǎn)化酸櫻桃,獲得了含有NPTⅡ和GUS基因的轉(zhuǎn)基因莖[46]。在一種顯著抗霜凍櫻桃砧木(Psubhirtella cv.autumnorosa)中,用致瘤農(nóng)桿菌介導(dǎo)的GUS基因轉(zhuǎn)化實(shí)驗(yàn)測(cè)定了胚性培養(yǎng)物的轉(zhuǎn)化效率[47]。用基因槍法和農(nóng)桿菌介導(dǎo)法將35S啟動(dòng)子和CAM啟動(dòng)子引導(dǎo)的帶有BAR和GUS基因的質(zhì)粒轉(zhuǎn)入櫻桃矮化砧木Inmil(P incisa×P.serrulata GM9)和Damil(Pdawyckensis GM61/1)以及甜櫻桃品種Summit(P avium L),在未加選擇劑的情況下產(chǎn)生了嵌合的再生植株[48]??傊?,遺傳轉(zhuǎn)化技術(shù)在櫻桃育種方面取得了較快發(fā)展。

        2核果類果樹的遺傳轉(zhuǎn)化方法及影響因素

        21農(nóng)桿菌介導(dǎo)法

        農(nóng)桿菌的體內(nèi)含有一些很大的質(zhì)粒,在原質(zhì)粒上有一段DNA稱為T-DNA,在土壤農(nóng)桿菌侵入細(xì)胞時(shí),T-DNA能夠插入植物細(xì)胞的基因組并穩(wěn)定遺傳給新分裂的細(xì)胞。人們利用T-DNA的這一特點(diǎn),將其中能導(dǎo)致植物形成腫瘤的基因全部切除,換上需要的目的基因,就組成了一個(gè)可將目的基因帶進(jìn)植物細(xì)胞中去的載體。目前,核果類轉(zhuǎn)基因最常用的方法是農(nóng)桿菌介導(dǎo)的轉(zhuǎn)化法。農(nóng)桿菌介導(dǎo)的轉(zhuǎn)化過(guò)程是把Ti質(zhì)粒的T-DNA片段轉(zhuǎn)移到植物的核基因組。此方法的轉(zhuǎn)化效率受以下幾方面因素的影響:(1)細(xì)菌的菌株對(duì)轉(zhuǎn)化頻率影響很大。在核果類果樹上最常用的Ti質(zhì)粒菌株為L(zhǎng)BA4404、EHA105和EHA101,而常用的發(fā)根農(nóng)桿菌菌株則是1855NCPPB和ATCC15834,外植體和農(nóng)桿菌共培養(yǎng)時(shí)間一般為24~36 h,向培養(yǎng)基中加入抗生素(如:羧芐青霉素)來(lái)抑制細(xì)菌的生長(zhǎng),共培養(yǎng)后,除菌十分關(guān)鍵;(2)轉(zhuǎn)化細(xì)胞的選擇。常用卡那霉素,因?yàn)楹斯惖拇蠖鄶?shù)種質(zhì)對(duì)卡那霉素高度敏感,卡那霉素的濃度和加入時(shí)間根據(jù)外植體和物種的不同進(jìn)行預(yù)先實(shí)驗(yàn);(3)轉(zhuǎn)化細(xì)胞能否高效地再生是轉(zhuǎn)化的主要問(wèn)題,核果類果樹再生困難;(4)導(dǎo)入的外源DNA在植物基因組中的穩(wěn)定性,避免外源基因的瞬時(shí)表達(dá)和形成嵌合體。

        22基因槍法

        基因槍是1987年美國(guó)康奈爾大學(xué)Sanford等人首先發(fā)明的,是憑借高速運(yùn)動(dòng)的金屬微粒將附著其表面的核酸分子引入到受體細(xì)胞中的一種遺傳物質(zhì)轉(zhuǎn)化技術(shù)[49]?;驑尫ㄒ渤S糜诠麡涞倪z傳轉(zhuǎn)化,基因槍微彈轟方法可用于任何植物組織的轉(zhuǎn)化,而且報(bào)告基因的瞬時(shí)表達(dá)便于分析基因表達(dá)的組織特異性,但獲得穩(wěn)定轉(zhuǎn)化的頻率較低。Ye等[6]用基因槍轟擊桃外植體

        轉(zhuǎn)化GUS/NPTⅡ嵌合基因,并在長(zhǎng)期胚性愈傷組織中得到GUS基因的固定表達(dá)。此方法的轉(zhuǎn)化效率受以下幾方面因素的影響:(1)基因槍轟擊參數(shù):DNA 包裹和射擊過(guò)程中的各種物理參數(shù)因基因槍類型不同而有所差別。以PDS-1000/He 型基因槍為例,金粒形狀較均勻,對(duì)受體細(xì)胞沒(méi)有太大的損傷,轉(zhuǎn)化效果較好。氦氣的壓力是決定金屬粒子飛行速度的主要因素,壓力過(guò)大會(huì)對(duì)植物細(xì)胞造成傷害,壓力過(guò)小,金屬粒子不能進(jìn)入細(xì)胞。此外,金屬粒子大小、載體膜的位置和靶材料的位置等參數(shù),也與其他射擊參數(shù)相互聯(lián)系,應(yīng)根據(jù)實(shí)驗(yàn)具體設(shè)置。(2)微彈射程:微彈射程指基因槍擋板與靶細(xì)胞間的距離,它是影響基因轉(zhuǎn)化率的重要因素,植物組織中只有特定的細(xì)胞具有再生能力,需根據(jù)受體材料選擇合適的距離;轉(zhuǎn)化率與彈膛內(nèi)的真空度呈正相關(guān)關(guān)系,但要考慮靶細(xì)胞對(duì)真空度的耐受性;適當(dāng)?shù)霓Z擊次數(shù)有利于目的基因的表達(dá),轟擊次數(shù)過(guò)多往往會(huì)使轟擊細(xì)胞損傷嚴(yán)重,降低轉(zhuǎn)化率;DNA 的純度和濃度均會(huì)影響轉(zhuǎn)化率,目前普遍采用的DNA 濃度為1 g/L;氯化鈣與亞精胺常用作DNA 的沉淀劑,其濃度對(duì)轉(zhuǎn)化率也有影響。Klein 報(bào)道氯化鈣的最適宜濃度為19~24 mol/L,亞精胺的最適宜濃度為769×10-3~769×10-3 mol/L[49]。(3)受體的生理因素:受體的生理因素主要指受體細(xì)胞或組織的生理狀態(tài)。一般認(rèn)為,生理活性高的組織或細(xì)胞有利于外源DNA 的攝入與整合,選用再生能力強(qiáng)的外植體作為轉(zhuǎn)化受體,提高轉(zhuǎn)化率。

        主要的基因轉(zhuǎn)化方法除了上述兩種方法外,還有微注射法、電擊法和花粉管通道法[7]。如Vardi等[50]用PEG法將CAT基因和NPTⅡ基因?qū)霗幟试|(zhì)體獲得再生植株;Oliveira[51]用電擊法及PEG法轉(zhuǎn)化獼猴桃原生質(zhì)體獲得成功。木本果樹遺傳轉(zhuǎn)化上應(yīng)用的方法還有DNA直接攝取法[52]、碳化硅法[53]、電泳法[54]等。

        3轉(zhuǎn)基因植株的檢測(cè)鑒定

        遺傳轉(zhuǎn)化后,先通過(guò)抗性篩選獲得抗性芽后生成植株,再對(duì)抗性植株進(jìn)行檢測(cè),檢測(cè)陽(yáng)性的植株才是真正的轉(zhuǎn)基因植株。常用的檢測(cè)方法有GUS活性檢測(cè)、PCR技術(shù)雜交檢測(cè)、免疫學(xué)檢測(cè)。

        31GUS活性檢測(cè)

        GUS基因是研究外源基因瞬時(shí)表達(dá)轉(zhuǎn)化試驗(yàn)中的報(bào)告基因。GUS 基因3′端與其他結(jié)構(gòu)形成的融合基因能正常表達(dá),所產(chǎn)生的融合蛋白仍具有GUS 活性,這為研究外源基因表達(dá)的具體細(xì)胞部位及組織部位提供了條件,這是它的一大優(yōu)點(diǎn)。在實(shí)驗(yàn)過(guò)程中要設(shè)定嚴(yán)格的陰性對(duì)照,GUS 活性的檢測(cè)方法有很多,包括組織化學(xué)法、色譜法、熒光法等。GUS活性檢測(cè)多采用組織化學(xué)染色法,轉(zhuǎn)化組織與對(duì)照組織相比呈可區(qū)分的藍(lán)色。GUS活性檢測(cè)是柑橘[55]轉(zhuǎn)基因植株檢測(cè)的一種常規(guī)方法,在轉(zhuǎn)基因植株鑒定中有著廣泛應(yīng)用。

        32PCR技術(shù)

        轉(zhuǎn)基因植物核酸水平上的檢測(cè)實(shí)質(zhì)是檢測(cè)插入的外源基因,主要的檢測(cè)方法是多聚酶鏈反應(yīng)(PCR)技術(shù)。PCR技術(shù)是近幾年發(fā)展起來(lái)的一種體外擴(kuò)增特異性DNA片段的技術(shù),主要有常規(guī)定性PCR技術(shù)、多重PCR技術(shù)(MPCR)、PCR-GeneScan、實(shí)時(shí)熒光定量PCR(qRT-PCR)、電化學(xué)發(fā)光PCR (ECL-PCR)、PCR-ELISA法。其中,PCR-ELISA 法能半定量檢測(cè)轉(zhuǎn)基因成分含量;qRT-PCR 能定量檢測(cè)轉(zhuǎn)基因含量,且采用閉管分析,有效消除了核酸的交叉污染,是適合植物轉(zhuǎn)基因檢測(cè)鑒定的一種快速、靈敏、準(zhǔn)確、實(shí)用的方法??傮w來(lái)說(shuō),PCR 反應(yīng)靈敏度較高,但易出現(xiàn)假陽(yáng)性結(jié)果,常采用Southern 雜交、酶切、測(cè)序等進(jìn)一步驗(yàn)證其結(jié)果。PCR已成功用于柑橘轉(zhuǎn)基因植株的檢測(cè)[55];楊東燕等[56]采用PCR技術(shù)建立了對(duì)抗環(huán)斑病毒轉(zhuǎn)基因番木瓜55-1進(jìn)行品系鑒定的檢驗(yàn)方法。

        33雜交檢測(cè)

        外源基因?qū)胫参锖螅D(zhuǎn)基因植株在DNA、RNA及蛋白質(zhì)水平上均與對(duì)照存在差異,這三種水平的差異可分別通過(guò)Southern雜交、Northern雜交和Western雜交得到檢測(cè)。核酸分子雜交是根據(jù)外源基因序列設(shè)計(jì)探針,將探針與待測(cè)核苷酸序列雜交,由雜交結(jié)果判斷待測(cè)基因片段是否與已知外源基因同源。核酸分子雜交檢測(cè)轉(zhuǎn)基因成分具有靈敏度高、特異性強(qiáng)的特點(diǎn),但雜交程序復(fù)雜,對(duì)實(shí)驗(yàn)技術(shù)要求較高,用于檢測(cè)所轉(zhuǎn)化植株中外源基因的整合(Southern 雜交)和表達(dá)(Northern雜交),有時(shí)也用來(lái)驗(yàn)證PCR產(chǎn)物的準(zhǔn)確性。大多數(shù)轉(zhuǎn)基因植株都采用Southern雜交檢測(cè)基因是否整合,在柑橘、杏的轉(zhuǎn)基因檢測(cè)中得到廣泛應(yīng)用[34]。而通過(guò)Northern或Western雜交則可以檢測(cè)基因是否表達(dá),Northern雜交于草莓中得到廣泛應(yīng)用[34]。

        34免疫學(xué)檢測(cè)

        免疫學(xué)檢測(cè)是蛋白質(zhì)水平的一種檢測(cè)方法,主要的方法是免疫酶聯(lián)吸附法(ELISA)。ELISA原理是利用抗原和抗體的特異反應(yīng)將待測(cè)物與酶連接,然后通過(guò)酶與底物產(chǎn)生顏色反應(yīng),用于定量測(cè)定。陳松等[57]和秦崇濤等[58] 研究表明雙抗夾心ELISA 法能對(duì)轉(zhuǎn)基因含量進(jìn)行定量檢測(cè)。基于ELISA 法的改進(jìn)方法還有試紙檢測(cè),與常規(guī)ELISA相比,不同之處是以硝化纖維代替聚苯乙烯反應(yīng)板為固相載體,外源蛋白特異結(jié)合的抗體上聯(lián)結(jié)了顯色劑被固定在試紙條內(nèi),檢測(cè)時(shí)只需將試紙條插入待測(cè)樣品的提取物中,就可以快速測(cè)定被測(cè)樣品中是否含有被檢測(cè)的轉(zhuǎn)基因蛋白。目前國(guó)內(nèi)已有用一張?jiān)嚰垯z測(cè)轉(zhuǎn)基因番茄[59]的報(bào)道。應(yīng)用ELISA 法和試紙條檢測(cè)轉(zhuǎn)基因產(chǎn)品,只限于幾個(gè)種類,主要是因?yàn)橛行┎迦氲耐庠椿虮旧聿槐磉_(dá)蛋白質(zhì)或表達(dá)量很低或表達(dá)量變化很大,很容易出現(xiàn)假陰性結(jié)果,而且制備特異的酶標(biāo)抗體較為復(fù)雜。

        綜合目前的轉(zhuǎn)基因檢測(cè)手段,雖然檢測(cè)方法豐富,但都有其優(yōu)勢(shì)和不足。目前國(guó)內(nèi)已經(jīng)建立了大豆、油菜、玉米、蔬菜、煙草、飼料、食品等的轉(zhuǎn)基因檢測(cè)體系,但尚未建立有效的水果轉(zhuǎn)基因檢測(cè)體系,因此,完善轉(zhuǎn)基因檢測(cè)體系和建立果樹轉(zhuǎn)基因體系意義深遠(yuǎn)。

        4果樹轉(zhuǎn)基因研究存在的問(wèn)題和展望

        果樹轉(zhuǎn)基因雖然取得了較快的發(fā)展,但研究中還存有一些潛在問(wèn)題:食品安全性問(wèn)題、病蟲的抗性問(wèn)題、環(huán)境生態(tài)平衡問(wèn)題等。另外,轉(zhuǎn)基因技術(shù)方面也存在一些問(wèn)題:轉(zhuǎn)基因尚未能定點(diǎn)、定量導(dǎo)入受體基因組中并獲得穩(wěn)定、高效的表達(dá)和遺傳,且又不影響受體生物原有優(yōu)良性狀的表達(dá)。如:AC/DS轉(zhuǎn)座系統(tǒng)建立的載體,其宿主范圍廣,提高了轉(zhuǎn)化效率,并能有效地將大片段DNA以完整的單拷貝方式整合到宿主染色體上。再如:利用核基質(zhì)附著區(qū)序列,將轉(zhuǎn)基因與周圍染色質(zhì)分離開來(lái),使轉(zhuǎn)基因表達(dá)不受染色體上整合位點(diǎn)的影響,形成一個(gè)獨(dú)立調(diào)節(jié)的染色質(zhì)區(qū)域,這樣轉(zhuǎn)基因表達(dá)水平就會(huì)隨拷貝數(shù)增加而明顯增強(qiáng)。

        展望果樹遺傳轉(zhuǎn)化工程,未來(lái)的研究應(yīng)集中在下列幾個(gè)方面:(1)進(jìn)一步建立完善高效穩(wěn)定的果樹目的基因的轉(zhuǎn)化體系;(2)加快果樹目的基因的分離與克隆。除利用模式植物中已轉(zhuǎn)化成功的目的基因外,加快果樹本身基因的分離已成當(dāng)務(wù)之急;(3)開展果樹轉(zhuǎn)基因植株的產(chǎn)業(yè)化發(fā)展;(4)加大對(duì)果樹基因工程生物安全性及生態(tài)問(wèn)題的關(guān)注。

        參考文獻(xiàn):

        [1]McGranahan H,Leslie C A,Uratsu S L,et alAgrobacterium-mediated transformation of walnut somatic embryos and regeneration of plants[J] Nature BioTechnology,1988,6:800-804

        [2]Smigocki A C,Hammerschlag F ARegeneration of plants from peach embryo cells infected with a shooty mutant strain of Agrobacterium[J] J Amer Soc Hort Sci,1991,116:1092-1097

        [3]Pérez-Clemente R M,Pérez-Sanjuan A, Garcia-Férriz L, et al Transgenic peach plants (Prunus persica L) produced by genetic transformation of embryo sections using the green fluorescent protein(GFP) as an in vivo marker[J]Molecular Breeding, 2004,14:419-427

        [4]Padilla I M G,Golis A,Gentile A, et al Evaluation of transformation in peach Prunus persica explants using green fluorescent protein(GFP) and beta-glucuronidase(GUS) reporter genes[J]Plant Cell Tissue and Culture, 2006, 84:309-314

        [5]劉祥林,湯浩茹.桃胚培養(yǎng)及遺傳轉(zhuǎn)化的研究進(jìn)展[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2005,33(6):1087-1089.

        [6]Ye X J, Brown S K, Scorza R, et al Genetic transformation of peach tissues by particel bombardment[J] J Amer Soc Hort Sci, 1994, 119:367-373

        [7]萬(wàn)春雁,韓明玉,趙彩平,等.桃花粉管通道法轉(zhuǎn)基因技術(shù)的初步研究[J].中國(guó)農(nóng)學(xué)通報(bào),2009,25(5):38-42.

        [8]Smigocki A C, Owins L D, Hammerschlag F A In vitro transformation of peach, Prunus persica (L) Batsch—using Agrobacterium tumefaciens[J] HortScience,1987,22:1069

        [9]Martin G C, Miller A N, Castle L A, et al Feasibility studies using beta-glucuronidase as a gene fusion marker in apple,peach and radish[J]J Amer Soc Hort Sci, 1990, 115(4):686-691

        [10]Ognjanow V, Vujanic V D, Macet K, et al Tissue culture approaches to peach improvement[A]Progress in temperate fruit breeding[C] Wadenswil-Einsiedeln:Proceeding of the Eucarpia Fruit Breeding Section Meeting,1994, 389-393

        [11]Hammerschlag F A,Owens L D,Smigocki A CAgrobacterium-mediated transformation of peach cells derived from mature plants that were propagated in vitro[J] J Amer Soc Hort Sci, 1989, 114(3):508-510

        [12]金勇豐,張耀洲,陳大明,等.桃ACC氧化酶基因的克隆和植物表達(dá)載體的構(gòu)建[J].園藝學(xué)報(bào),1998,25(1):37-43.

        [13]金勇豐,張耀洲.桃果實(shí)ACC合酶cDNA的克隆[J].園藝學(xué)報(bào),2000,27(4):257-262.

        [14]李曜東,魏玉凝.肥城桃組培苗誘導(dǎo)、基因轉(zhuǎn)化及其增殖[J].果樹學(xué)報(bào),2003,20(1):70-72.

        [15]吳延軍,張上隆,徐昌杰,等.根癌農(nóng)桿菌介導(dǎo)的桃幼胚轉(zhuǎn)化實(shí)驗(yàn)參數(shù)研究[J].果樹學(xué)報(bào),2004,21(5):477-479.

        [16]Mante S, Morgens P H, Scorza R, et al Agrobacterium-mediated transformation of plum (Prunus domestica L) hypocotyl slices and regeneration of transgenic plants[J] Nature Biotechnology,1991, 9:853-857

        [17]Scorza R, Cordts J M, Mante S, et al Agrobacterium-mediated transformation of plum with the papaya ringspot virus coat protein gene[J] HortScience, 1991, 26(6):786

        [18]Scorza R, Levy L, Damsteegt V, et al Transformation of plum with the papaya ringspot virus coat protein gene and reaction of transgenic plants to plum pox virus[J] J Amer Soc Hort Sci, 1995, 120(6):943-952

        [19]Scorza R, Ravelonandro M, Callaban A M, et al Transgenic plums(Prunus domestica L) express the plum pox virus coat protein gene[J] Plant Cell Rep, 1994,14:18-22

        [20]Ravelonandro M, Monsion M, Teycheney P Y, et al Construction of a chimeric viral gene expressing plum pox virus coat protein[J] Gene, 1992, 120:167-173

        [21]Ravelonandro M, Monsion M, Delbos R, et al Variable resistance to plum pox virus and potato virus Y infection in transgenic plants expressing plum pox virus coat protein[J] Plant Science, 1993, 91:157-169

        [22]Ravelonandro M, Scorza R, Bachelier J C, et al Resistance of transgenic Prunus domestica to plum pox virus infection[J] Plant Disease, 1997, 81:1231-1235

        [23]Ravelonandro M, Scorza R, Minoiu N Field tests of transgenic plums in Romania[J] Plant’s Health, 2002, (Spec ed): 16-18

        [24]Yancheva S D, Druart P H, Watillon B Agrobacterium-mediated transformation of plum (Prunus domestica L)[J] Acta Hort, 2002, 577:215-217

        [25]Malinowski T, Cambra M, Capote N, et al Field trials of plum clones transformed with the plum pox virus coat protein (PPV-CP) gene[J] Plant Disease, 2006, 90:1012-1018

        [26]Urtubia C, Devia J, Castro A, et al Agrobacterium-mediated genetic transformation of Prunus salicina[J] Plant Cell Rep, 2008, 27:1333-1340

        [27]Ilardi V, Nicola-Negri E D Genetically engineered resistance to plum pox virus infection in herbaceous and stone fruit hosts[J] GM Crops, 2011, 2:1,24-33

        [28]da Cmara Machado M L, da Cmara Machado A, Hanzer V, et a1 Regeneration of transgenic plants of Prunus armeniaca containing the coat protein gene of plum pox virus[J] Plant Cell Rep, 1992, 11:25-29

        [29]da Cmara Machado A, Katinger H,da Cmara Machado M L Coat protein-mediated protection against plum pox virus in herbaceous model plants and transformation of apricot and plum[J] Euphytica, 1994, 77:129-l34

        [30]Petri C, Alburquerque N, Garcia-Castillo S, et a1 Factors affecting gene transfer efficiency to apricot leaves during early Agrobacterium-mediated transformation steps[J] J Hortic Sci Biotech, 2004, 79:704-712

        [31]Petri C, Alburquerque N, Burgos L The effect of aminoglycoside antibiotics on the adventitious regeneration from apricot leaves and selection of nptⅡ-transformed leaf tissues [J] Plant Cell Tiss Organ Cult, 2005, 80:271-276

        [32]Petri C, Alburquerque N, Perez-Tornero O, et a1 Auxin pulses and a synergistic interaction between polyamines and ethylene inhibitors improve adventitious regeneration from apricot leaves and Agrobacterium-mediated transformation of leaf tissues[J] Plant Cell Tissue Organ Cult, 2005, 82:105-111

        [33]Quemada H L, Hostis B, Gonsalves D, et al The nucleotide sequence of the 3′-terminal regions of papaya ringspot virus strains W and P[J] J Gen Virol, 1990, 71:203-210

        [34]宮雪超,于麗杰,高金秋.轉(zhuǎn)基因植物的檢測(cè)與鑒定[J].牡丹江師范學(xué)院學(xué)報(bào),2007,1:15-17.

        [35]Archilleti T, Lauri P, Damiano C Agrobacterium-mediated transformation of almond leaf pieces[J] Plant Cell Rep, 1995, 14:267-272

        [36]Miguel C M, Oliverian M M Transgenic almond plants obtained by Agrobacterium-mediated transformation of leaf explants[J] Plant Cell Rep, 1999, 18:387-393

        [37]Ainsley P J Developing tissue culture and genetic transformation techniques for almond(Prunus dulcis Mill)[D] Aelaide University, 2000

        [38]Ramesh S A, Kaiser B N, Franks T, et al Improved methods in Agrobacterium-mediated transformation of almond using positive (mannose/pmi) or negative (kanamycin resistance) selection-based protocols[J] Plant Cell Rep, 2006, 25:821-828

        [39]Negri P E, Magnanini L, Cantoni G, et al Piante arboree transgeniche: Prime esperienze sul transferimento di geni per il controllo dell’habitus vegetativo[J] Rivista di Frutticoltura, 1998,60(5):91-97

        [40]方宏筠,王關(guān)林,王火旭,等.抗菌肽基因轉(zhuǎn)化櫻桃矮化砧木獲得抗根瘤病的轉(zhuǎn)基因植株[J].植物學(xué)報(bào),1999,41(11):1192-1198.

        [41]Bhagwat B, Lane W D In vitro shoot regeneration from leaves of sweet cherry (Prunus avium) ‘Lapins’ and ‘Sweetheart’ [J] Plant Cell Tissue Organ Cult, 2004,78:173-181

        [42]Song G Q, Sink K C Optimizing shoot regeneration and transient expression factors for Agrobacterium tumefaciens transformation of sour cherry (Prunus cerasus L) cultivar Montmorency[J] Scientia Hortic, 2005, 106(1):60-69

        [43]Zhang K C, Zhang J K Cloning and sequencing of PGIP gene from Prunus mahaleb L[J] Journal of Agricultural Biotechnology, 2000, 8(3):281-283

        [44]Dolgov S VGenetic transformation of sour cherry (Cerasus vulgaris Mill)[A]In:Bajaj Y P S(ed)Biotechnology in Agriculturel and Forestry,Vol44,Transgenic trees[M]Heidelberg:Springer-Verlag Berlin,1999,29-38

        [45]Dolgov S V,F(xiàn)irsov A PRegeneration and genetic transformation of sour cherry leaf dises[J]Acta Hortic,1999,484:577-580

        [46]Brasileiro A C, Leple J C, Muzzin J, et al An alternative approach for gene transfer in trees using wild type Agrobacterium strains[J] Plantmol Biol, 1991, 17(3):441-452

        [47]da Cmara M A,da Cmara Machado M L Genetic transformation in Prunus armeniaca L[A] In:Bajaj Y P (ed)Biotechnology in Agriculturel and Forestry,Vol34 Plant protoplasts and genetic engineering VI[M] Berlin:Springer-Verlag, 1995, 240-254

        [48]Druart P, Delporte F, Brazda M, et al Genetic transformation of cherry trees[J] Acta Hort, 1998, 468: 71-76

        [49]楊奇志,趙琦.基因槍技術(shù)在農(nóng)作物基因轉(zhuǎn)化中的應(yīng)用和進(jìn)展[J].生物技術(shù)通報(bào),2003,6:14-17,23.

        [50]Vardi A, Beichman S, Aviv D Genetic transformation of citrus protoplasts and regeneration of transgenic plants[J]Plant Science, 1990, 69:199-206

        [51]Oliveira M M, Miguel C M, Raquel M H Transformation studies in woody fruit species[J] Plant Tissue Culture and Biotechnology, 1996, 2(2):76-93

        [52]趙慧,宋桂英.將菜豆幾丁酶基因?qū)胩O果砧木的研究[J].激光生物學(xué)報(bào),1998,7(3):163-167.

        [53]Soloki M, Alderson P G, Fucker G Genetic transformation grape using Agrobacterium biolistics and silicon carbide[A] In:Davey M R, Alderson P G, Lowe K C, et al Tree biotechnology [C]Nottingham: Nottingham University Press,1998, 325-330

        [54]Gresbach R T A method for transforming whole plants via the eletrophoreses of shoot tips[J] HortScience, 1995, 30 (4):788

        [55]蔣迪,徐昌杰,陳大明,等.柑橘轉(zhuǎn)基因研究的現(xiàn)狀及展望[J].果樹學(xué)報(bào),2002,19(1):48-52.

        [56]楊冬燕,楊永存,鄧平建.抗環(huán)斑病毒轉(zhuǎn)基因番木瓜55-1的PCR檢測(cè)[J].中國(guó)公共衛(wèi)生,2007,1:91-92.

        [57]Chen S, Wu J Y, Chen D R, et alStudy on the enzyme-linked immunosorbent assay of Bacillus thuringiensis insecticidal protein expressed in transgenic cotton[J] Acta Gossypii Sinica,1999, 11(5): 258-267

        [58]秦崇濤,陳在杰,蘇軍,等.3 種ELISA 法定量檢測(cè)Cry1A(c)蛋白的比較研究[J].福建農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2003,18(4):258-263.

        [59]一張?jiān)嚰垳y(cè)定轉(zhuǎn)基因番茄[J].長(zhǎng)江蔬菜,2004,2:50.

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