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        熱瘀散對潰瘍性結腸炎胃腸濕熱型大鼠模型細胞因子影響的研究

        2012-11-30 13:37:22王翼洲楊桂芳
        中國中醫(yī)急癥 2012年1期
        關鍵詞:低劑量試劑盒劑量

        王翼洲 楊 輝 楊桂芳 柳 雯

        (安徽中醫(yī)學院第一附屬醫(yī)院,安徽 合肥 230031)

        本實驗組自擬經(jīng)驗方熱瘀散治療潰瘍性結腸炎(UC)取得肯定療效,尤其適用于輕、中度UC,效果顯著。但鑒于本病病因病機至今尚不十分清楚,故通過建立UC胃腸濕熱型大鼠模型,利用熱瘀散高、低劑量組進行治療,并設立相關對照組,選擇以上血清學細胞因子進行檢測后比較,以探討熱瘀散治療該病的作用機制,并探討UC的發(fā)病機制。

        1 材料與方法

        1.1 藥物 熱瘀散組成為:黃芪15g,白術12g,茯苓 12g,黃芩15g,黃連 9g,敗醬草 30g,丹參 15g,三七粉 3g,赤芍 15g,木香9g,白芍12g,炙甘草6g;由廣東一方制藥有限公司生產的顆粒劑組方,由安徽省中醫(yī)院藥劑科提供。

        1.2 動物 wistar大鼠,體質量150~180g,雄性,由安徽醫(yī)科大學動物中心提供(合格證號:XK蘇2002-0025)。

        1.3 試劑與儀器 2,4,6-三硝基苯磺酸 (TNBS,Sigma公司產品)的30%(體積分數(shù))乙醇溶液,20%氨基甲酸乙酯。NO試劑盒為北京邦定生物公司產品。超氧化物歧化酶(SOD)放射免疫分析試劑盒,由北京北方生物技術研究所提供。白細胞介素(IL)-6放射免疫試劑盒,由北京北方生物技術研究所提供。丙二醛(MDA)測定試劑盒:南京聚力生物醫(yī)學工程研究所提供。高速組織勻漿儀(德國JANKE&KUNKEL GMBH公司)。GL-20A型高速冷凍離心機(湖南儀器儀表總廠離心機廠)。UV-260型可見紫外分光光度計(日本島津公司)。光學顯微鏡(日本Olympus AHBT-5B)。LRH-800-GS人工氣候箱為廣東省醫(yī)療器械廠產品。YC-DZOZ亞都超聲加濕器為北京亞都科技股份有限公司產品。電光分析天平,由上海天平儀器廠提供。純LBYN5A型旋轉式血流變儀(北京普利生儀器有限公司)。

        1.4 分組與造模 將大鼠隨機分成正常對照組、模型對照組、熱瘀散高劑量組、熱瘀散低劑量組、柳氮磺胺吡啶(SASP)組。除正常對照組外,其余各組參照文獻[1-2]的方法建立UC胃腸濕熱型大鼠模型。將禁食12h動物,20%氨基甲酸乙酯腹腔注射麻醉,6mL/kg,將一直徑2.0mm長約12cm的橡膠輸液管,由肛門輕緩插入深約8cm,按100mg/kg質量濃度的三硝基苯磺酸(TNBS)推入結腸,每只0.5mL,讓動物保持平躺自然清醒。麻醉大鼠自然清醒后,將大鼠飼以高脂高糖飲食,即在普通飼料喂養(yǎng)的基礎上,加用200g/L蜂蜜水自由飲用,且隔日按大鼠體質量灌服油脂10g/kg,并與油脂隔日灌服10mL/kg白酒,共10d,然后放入溫度(32±2)℃,相對濕度為95%的人工氣候箱中,共5d。

        1.5 給藥方法 完成造模后,熱瘀散高劑量組予8g/kg灌胃,熱瘀散低劑量組予2g/kg灌胃,SASP組經(jīng)口灌胃給予SASP 66.7mg/(kg·d)(按人常用劑量的5倍量換算),各組灌胃給藥均每日1次,連用15d;同時,模型對照組及正常對照組作常規(guī)飼養(yǎng)料理。

        1.6 標本采集與檢測 留取標本進行血清學相關細胞因子檢測。包括 NO、IL-6、SOD、MDA、IL-8、IL-10、IL-13、腫瘤壞死因子(TNF)-α指標測定,測定方法按測定試劑盒說明書的方法進行。大鼠行腹主動脈取血,離心10min取血清待測。(1)SOD測定:采用微量快速測定法,取肝素抗凝血100μL加入盛有5mL生理鹽水的刻度離心機中,2000r/min離心10min,棄盡上清液,加預冷雙蒸水0.2mL、95%乙醇0.1mL、三氯甲烷0.1mL,振搖片刻,3000r/min離心10min,取上清液,再按試劑盒要求測定。(2)MDA測定:含量采用TBA比色法測定。利用MDA與硫代巴比妥(TBA)縮合,形成紅色產物,在532nm處有最大吸收峰,以四乙氧基丙烷為MDA標準品,取0.1mL血清,在與標準曲線相同的條件下反應,用比色法測定各管吸收光值。按公式計算MDA的含量。MDA (μmoL/g)=(測定管吸光度-測定空白管吸光度)/(標準管吸光度-標準空白管吸光度)×標準品濃度×樣本測試前稀釋倍數(shù)。(3)NO測定:南京建成生物工程有限公司試劑盒,采用酶標法高密度測定(ELISA)。設置測定管與標準管。測定管樣品 0.1mL,試劑 10.1mL,試劑 20.1mL,輕輕混勻,37℃水浴 1h,另加試劑30.5mL,試劑40.5mL混勻,室溫放置10min后,530nm波長處測定OD值,計算NO含量。IL-6的測定:采用雙抗體夾心ELISA法測定,具體按IL-6試劑盒說明書操作。(4)IL-8、IL-10測定:采用雙抗體夾心ABC-ELISA法,具體按試劑盒說明書操作。(5)TNF-α、IL-13 測定:采用酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA),具體按試劑盒說明書操作。

        1.7 統(tǒng)計學處理 采用SPSS13.0軟件進行統(tǒng)計學分析,連續(xù)型變量用()表示,組間均數(shù)比較采用t檢驗,P<0.05為差異具有統(tǒng)計學意義。

        2 結 果

        2.1 熱瘀散對血清MDA、SOD、IL-6、NO的影響 見表1。與正常對照組比較,模型對照組SOD含量均顯著減少,MDA、IL-6、NO含量明顯增多 (P<0.01);SASP組及熱瘀散各組均能升高SOD含量,降低MDA、IL-6、NO含量,尤以熱瘀散高劑量組效果明顯,與SASP組比較有顯著差異(P<0.01);SASP組及熱瘀散低劑量組,與模型對照組比較有顯著差異(P<0.01);熱瘀散低劑量組與SASP組比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。

        表1 各組血清 MDA、SOD、IL-6、NO 水平比較()

        表1 各組血清 MDA、SOD、IL-6、NO 水平比較()

        與正常對照組比較,*P<0.01;與模型對照組比較,△P<0.01;與SASP對照組比較,▲P<0.05,▲▲P<0.01。下同。

        組別 n MDA(μmoL/g) SOD(U/mg) IL-6(pg/mL) NO (μmoL/g)正常對照組 10 23.44±1.9 785.11±15.56 52.28±9.57 196.43±3.95模型對照組 10 47.72±5.17* 53.23±11.78* 86.36±10.26* 382.13±9.93*熱瘀散高劑量組 10 26.92±2.94△▲▲ 76.23±11.78△▲▲ 49.97±8.67△▲▲ 264.07±9.84△▲▲熱瘀散低劑量組 10 33.03±2.57△ 61.78±12.33△ 69.34±9.37△ 303.61±3.71△SASP 組 10 34.91±2.97△ 60.16±13.16△ 70.22±9.93△ 315.11±29.12△

        2.2 熱瘀散對血清IL-8、IL-10的影響 見表2。與正常對照組比較,模型對照組IL-8表達顯著增高,IL-10表達顯著降低(P<0.01);與模型對照組比較,各治療組IL-8顯著降低,各治療組IL-10表達均有不同程度回升 (P<0.01);熱瘀散高劑量組與SASP組比較,雖然高劑量組IL-8表達略低于SASP組,但差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05);熱瘀散高劑量組較SASP組IL-10表達增高(P<0.05);熱瘀散低劑量組與SASP組相比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。

        表2 各組血清 IL-8、IL-10 含量比較(pg/mL,)

        表2 各組血清 IL-8、IL-10 含量比較(pg/mL,)

        組 別 n IL-8 IL-10正常對照組 10 34.847±3.985 111.111±5.369模型對照組 7 58.798±3.048* 69.203±6.374*熱瘀散高劑量組 9 41.074±3.009△ 96.663±3.431△▲熱瘀散低劑量組 8 49.692±3.183△ 85.701±3.572△SASP 組 8 41.694±3.261△ 89.587±5.202△

        2.3 熱瘀散對血清TNF-α、IL-13的影響 見表3。與正常對照組比較,模型對照組大鼠血清TNF-α表達水平顯著增高,IL-13表達水平顯著降低(P<0.01);與模型對照組相比較,各治療組大鼠血清TNF-α水平顯著降低,IL-13表達水平顯著升高 (P<0.01);熱瘀散高劑量組與SASP組比較,雖然高劑量組TNF-α表達略低于SASP組,但差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05);熱瘀散高劑量組較SASP組IL-13表達水平顯著增高(P<0.05);熱瘀散低劑量組與SASP組比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。

        表3 各組TNF-α、IL-13 水平比較(pg/mL,)

        表3 各組TNF-α、IL-13 水平比較(pg/mL,)

        組 別 n TNF-α IL-13正常對照組 10 49.27±1.98 126.39±3.95模型對照組 7 75.62±3.12* 78.98±4.92*熱瘀散高劑量組 8 58.63±1.06△ 105.67±4.16△▲熱瘀散低劑量組 8 67.82±3.18△ 94.26±3.82△SASP對照組 8 59.05±2.15△ 97.15±2.91△

        3 討 論

        筆者認為,UC的病機主要是脾虛為本,濕熱為因,血瘀是UC的重要環(huán)節(jié),故以益氣健脾,清熱利濕,活血化瘀為治療大法。熱瘀散方中黃芩、黃連清熱燥濕、瀉火解毒,兩藥相須為君;黃芪益氣健脾利濕,白術補氣健脾、燥濕利水,與黃芪配伍以加強益氣健脾之功效,赤芍、丹參、敗醬草清熱化瘀止痛,木香行氣止痛,茯苓利水滲濕,共為臣藥;佐以白芍調和肝脾、緩急止痛,尚有斂陰和營之效,防清熱利濕太過,三七粉活血化瘀止痛,亦為佐藥;甘草炙用以益氣補中、緩急止痛,并能調和諸藥,是兼佐使之用。諸藥合用共達益氣健脾,清熱利濕,活血化瘀之功。

        本實驗結果表明,熱瘀散能顯著提高胃腸濕熱型大鼠模型SOD活性,同時降低MDA含量,對UC有明顯的治療作用,其作用機制可能是SOD能有效地清除氧自由基從而抑制腸組織中的脂質過氧化反應,并能穩(wěn)定細胞膜,提高機體抗自由基損傷的能力。過多產生的NO易在氧自由基存在時轉變?yōu)檫^氧化亞硝酸,并通過自由基鏈式反應導致含巰基的蛋白和脂質氧化,從而造成組織損傷。本實驗結果表明熱瘀散能降低NO含量,減輕NO的殺傷毒性及其對組織細胞的損傷作用,減輕炎癥反應,促進潰瘍愈合。UC患者IL-6水平明顯升高可與TNF-α和IL-1α相互作用,導致UC活動期的特征性炎癥反應。IL-6含量的增高使大量的T細胞尤其是CD4+T細胞迅速分裂增殖,形成致敏淋巴細胞,又可活化粒細胞,增強NK細胞及LAK細胞殺傷力,從而增進炎癥反應。有實驗研究[3]結果顯示,通過觀測患者IL-6活性,可以反映疾病的活動度及其轉歸。熱瘀散能降低IL-6含量,從而減輕炎癥反應,改善機體的免疫功能,促進潰瘍愈合。IL-8升高程度與局部炎癥程度相一致,可作為UC早期診斷指標,對UC嚴重程度判斷有一定指導意義[4-5]。熱瘀散能降低IL-8含量,從而減輕炎癥反應,改善機體的免疫功能,促進潰瘍愈合。IL-10為Th2型細胞分泌,在黏膜免疫中是一種重要的細胞因子調節(jié)劑,在腸道黏膜內環(huán)境穩(wěn)定中發(fā)揮重要作用。Linehan等[6]認為IL-10抑制誘生型一氧化氮合酶(iNOS)的表達。目前各種針對補充IL-10的UC免疫治療在模型動物和臨床實驗中也都取得了良好效果[7]。所以,IL-10對有效判斷UC的病情程度有重要意義。本實驗結果表明熱瘀散能提高IL-10含量,從而減輕炎癥反應,改善機體的免疫功能,促進潰瘍愈合。TNF-α被公認為介導UC的細胞因子,屬于促炎因子。諸多報道顯示UC患者TNF-α分泌水平高于正常組或未受累結腸黏膜[8]。本實驗結果表明熱瘀散能降低TNF-α、提高IL-13水平,從而減輕炎癥反應,改善機體的免疫功能,促進潰瘍愈合。

        綜上所述,主要通過中藥清熱化濕,益氣健脾,兼有活血化瘀作用,從而調節(jié)大鼠模型的免疫反應,減輕促炎因子的作用,增強抑炎因子的作用,以減輕甚至控制炎癥反應,以發(fā)揮療效。本實驗結果則又進一步證實UC的發(fā)病機理中,氧自由基誘發(fā)的脂質過氧化反應起著重要的作用。為免疫反應系UC發(fā)病的病機之一提供依據(jù)。

        [1]鄭禮,高振強,王淑仙.大鼠潰瘍性結腸炎模型的實驗研究[J].中國藥理學通報,1998,14(4):370-372.

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