李 丹,崔久嵬,蒿姍姍,牛 超,Aadil Yousif,李 薇
(吉林大學第一醫(yī)院 腫瘤中心,吉林 長春130021)
多發(fā)性骨髓瘤(multiple myeloma,MM)是最為常見的血液系統惡性腫瘤之一,發(fā)生率占血液系統惡性腫瘤的10%左右,隨著人口的老齡化,該病的發(fā)生率在我國呈逐年增高的趨勢。三氧化二砷(arsenic trioxide,ATO)在體外對多種實體瘤和血液腫瘤細胞系,包括MM 細胞系均有作用,但其機制尚未完全清楚[1、2]。為了揭示ATO對多發(fā)性骨髓瘤細胞系的作用機制,本研究分別對細胞增殖、凋亡、細胞周期、VEGF分泌和Bcl-2[3]表達情況等方面進行探討。
三氧化二砷(sigma公司)、IMDM培養(yǎng)液、胎牛血清(Gibco公司),6孔及96孔板培養(yǎng)板(Coring公司);CCK-8細胞增殖及細胞毒性檢測試劑盒、細胞周期與細胞凋亡檢測試劑盒 (武漢博士德);ELISA檢測試劑盒(R&D公司);Bcl-2、β-actin、鼠抗人-抗多克隆抗體(Santa Cruz公司);兔抗鼠二抗多克隆抗體(中杉金橋);Western blot試劑盒(KPL公司);FACScan型流式細胞儀(BD公司);酶標儀(BIO-TEK公司)。
1.2.1 細胞培養(yǎng) RPMI8226細胞株購自ATCC,懸浮培養(yǎng)于IMDM 培養(yǎng)液(內含2mmol/L L-谷氨酰胺、10%的滅活胎牛血清、100U/ml青霉素、100 mg/ml鏈霉素)中,置于5%CO2飽和濕度的37℃培養(yǎng)箱培養(yǎng)。48h傳代1次,取對數生長期細胞用于實驗。
1.2.2 CCK-8法檢測ATO作用后細胞生長情況
收集對數生長期的RPMI8226細胞,調整細胞懸液濃度為5×105個/ml,接種于96孔板。每孔100 μl。實驗設溶質對照組,細胞不加藥組以及細胞加ATO組(ATO 終濃度分別為1.0、2.0、3.0、4.0、5.0μmol/L)共七組,每組設3個復孔。將各組細胞培養(yǎng)至12h、24h、48h后,每孔加入10μl CCK-8,于5%CO2飽和濕度的37℃培養(yǎng)箱繼續(xù)培養(yǎng)4h,然后在酶聯免疫檢測儀450nm處測量各孔的吸光值。取3孔的平均值,計算細胞生長抑制率,繪制細胞生長抑制曲線。實驗重復3次。
1.2.3 流式細胞儀Annexin V/PI染色法檢測細胞周期及凋亡情況 收集對數生長期的RPMI8226細胞,配成1×106/ml的細胞懸液,接種于6孔板,3 ml/孔。各孔分別加入不同濃度 ATO(1.0、2.0、3.0、4.0、5.0μmol/L)及PBS(作為對照),培養(yǎng)48 h后收集各組細胞,制備成100μl單細胞懸液于流式管中,加入5μl Annexin-Ⅴ和10μl PI染液,同時設熒光補償管,暗室反應15min,再加入150μl結合緩沖液,于1h內流式細胞儀檢測。每組實驗均重復3次。
1.2.4 用ELISA法檢測不同濃度 ATO對RPMI8226細胞分泌VEGF的影響 收集不同濃度ATO作用RPMI8226細胞48h后上清液,進行稀釋后,按照VEGF ELISA檢測試劑盒說明書進行操作。
1.2.5 Western blot檢測 ATO 作用后 Bcl-2蛋白水平檢測 RPMI8226細胞于含10%滅活胎牛血清的IMDM培養(yǎng)液中,根據加入ATO的濃度的不同,共分為六組,即:空白不加藥組和ATO終濃度分別為1.0、2.0、3.0、4.0、5.0μmol/L組。各組作用24h及48h后,分別收集各時間點細胞,4℃預冷的PBS洗滌2次,加入細胞蛋白提取液,冰浴10-30min后,12 000rpm,4℃低溫離心5min。取上清,經Bradford分析方法定量。細胞蛋白提取液樣品(約50μg)溶于樣品緩沖液中,混勻,沸水中熱溶5min。取等量的蛋白進行SDS-PAGE電泳,轉膜,5%脫脂奶粉封閉2h,漂洗后加入相應的一抗,4℃孵育過夜,漂洗后二抗孵育1h,用ECL發(fā)光液顯色、曝光、顯影、定影、水洗。X光片曝光處理,計算機軟件分析結果。以β-actin為內參照,統計數據以供分析。
1.2.6 統計學方法 用SPSS13.0統計軟件分析,采用單因素方差分析(F檢驗)和LSD-t檢驗進行多樣本均數的兩兩比較。取α=0.05為檢驗水準,P≤0.05為差異有統計學意義。
CCK-8法檢測ATO作用后細胞增殖后OD值,計算抑制率(圖1)。并觀察不同作用時間下,ATO對細胞的抑制作用。ATO對RPMI 8226細胞株的增殖抑制呈劑量-時間依賴性,即:劑量越大,時間越長,抑制率越高。其中,ATO濃度為5.0 μmol/L時,12h對細胞的抑制率為51.7%,同濃度24h及48h抑制率分別為61.6%,80.2%。不同濃度ATO(1.0-5.0μmo/L),以24h為例,ATO對細胞的抑制率從42.9%升至61.1%。
圖1 ATO抑制RPMI8226細胞抑制率曲線
選取1.0,2.0,3.0,4.0,5.0(μmol/L)ATO 作用于RPMI8226細胞48h為例,選用各自未加藥組細胞為對照,AnnexinⅤ/PI法,檢測細胞周期變化情況(見表2)。流式細胞檢測結果分析,隨著ATO濃度的增加,G1期細胞數逐漸增多,提示ATO將RPMI8226細胞阻滯在G1期(如表2)。
表2 流式細胞儀檢測不同濃度ATO作用48h后細胞周期變化
選取1.0,2.0,5.0μmol/L的ATO作用于RPMI8226細胞24h、48h兩個時間點,各自選用未加藥細胞組為對照,AnnexinⅤ/PI法,檢測細胞凋亡情況(見圖2及圖3)。結果提示ATO可誘導RPMI8226細胞凋亡,1.0μmol/L的ATO在24h誘導細胞凋亡率是15.69%,相同濃度在48h是26.33%;5.0μmol/L組24h凋亡率為27.61%,48 h則為39.47%。與各自的空白組相對比,ATO誘導RPMI8226細胞凋亡,呈時間依賴性和濃度依賴性,P<0.05,有統計學意義。
圖2 不同濃度ATO作用細胞24h后細胞凋亡情況
圖3 不同濃度ATO作用細胞48h后細胞凋亡情況
ATO作用于人多發(fā)性骨髓瘤細胞株RPMI8226后,利用ELISA技術檢測ATO作用RPMI8226細胞48h后,對細胞VEGF合成的影響。如表3所示:隨著ATO藥物濃度升高,VEGF表達及分泌量越少,與對照組相比,P<0.01,有統計學意義。
為了進一步研究ATO抑制多發(fā)性骨髓瘤RP MI8226細胞增殖的機制,我們檢測了細胞內抗凋亡蛋白Bcl-2的水平。結果提示,隨著ATO濃度升高及作用時間的延長,細胞內Bcl-2蛋白表達下降(如圖4)。
表3 As2O3對RPMI8226細胞VEGF轉錄和分泌的影響(±s)
表3 As2O3對RPMI8226細胞VEGF轉錄和分泌的影響(±s)
注:與對照組比較,**P<0.01
組別 VEGF(ng/L)Ctrol 865.6±32.5 1mol/L As2O3 583.5±28.6**2mol/L As2O3 471.3±26.1**3mol/L As2O3 305.6±19.4**4mol/L As2O3 238.1±27.1**5mol/L As2O3 101.3±22.3**
圖4 ATO作用24、48h后RPMI8226細胞內Bcl-2表達水平
本實驗進一步研究ATO作用于RPMI8226細胞后ERK變化情況。我們選取ATO處理后48h,ATO 終濃度分別為0、1.0、2.0、3.0、4.0、5.0μmol/L六個組,并以β-actin為內參照,利用 Western blot法檢測RPMI8226細胞內ERK1/2蛋白及其磷酸化蛋白表達量。結果顯示,各組細胞均有ERK1/2蛋白表達,組間比較表達量無明顯差異(如圖5)。
圖5 ATO作用48h后RPMI8226細胞內ERK表達水平
目前,ATO已用于復發(fā)和難治性MM的治療,并取得可靠療效。體外實驗研究表明,ATO是通過不同的途徑,對不同的多發(fā)性骨髓瘤細胞系的進行抑制,從而誘導MM 細胞凋亡,包括 MAPK途徑、JAK/STAT 途徑,線粒體凋亡途徑等[4、5]。對于ATO作用于MM細胞凋亡的機制,國內外實驗結論各不相同,尚存在很大爭議。
本實驗應用CCK-8法,對不同濃度ATO作用細胞12h、24h、48h后,檢測ATO對多發(fā)性骨髓瘤RPMI8226細胞系有明顯抑制作用,其作用呈時間依賴和濃度依賴性。并且ATO能夠誘導人多發(fā)性骨髓瘤RPMI8226細胞凋亡,其作用同樣具有時間依賴和濃度依賴的,ATO將RPMI8226細胞阻滯在G1期。
骨髓瘤細胞可以分泌VEGF,并且VEGF分泌水平與腫瘤不同療效及預后之間存在著密切的聯系[6]。高水平VEGF是療效不佳的影響因素之一,VEGF可以直接促進骨髓瘤細胞生長,證明VEGF還可以通過自分泌途徑促進腫瘤細胞生長。我們應用ATO作用于人多發(fā)性骨髓瘤細胞株RPMI8226,觀察其對瘤細胞VEGF合成分泌的影響,結果顯示ATO可抑制RPMI8226細胞VEGF的分泌,提示此可能也是ATO抑制RPMI8226細胞生長的機制之一。
本研究顯示:經不同時間,不同濃度ATO作用后,RPMI8226細胞ERK及磷酸化ERK水平未見明顯變化。隨著ATO作用濃度與時間的延長,Bcl-2水平明顯下降,且呈時間及劑量依賴性,因此,提示ATO促進多發(fā)性骨髓瘤RPMI8226細胞凋亡作用主要是通過下調 Bcl-2來實現的[7]。Bcl-2其對細胞的作用并不影響細胞的增殖,而是通過抑制細胞凋亡從而增加了腫瘤發(fā)生的機會并促進腫瘤的發(fā)展[8]。
總之,體外實驗表明ATO具有抑制多發(fā)性骨髓瘤細胞增殖及VEGF表達。其可能的機制為ATO將RPMI8226細胞阻滯在G1期,Bcl-2基因功能的下調也可能是重要的機制。ATO對RPMI8226細胞的這種抑制作用,表明其可能是一種很好的抗多發(fā)性骨髓瘤的藥物,值得進一步動物實驗及臨床研究。
[1]Shen ZX,Chen GQ,Ni JH,et al.Use of arsenic trioxide(As2O3)in the treatment of acute promyelocytic leukemia(APL):Ⅱ.Clinical efficacy and pharmacokineties in replaced patients[J].Blood,1997,89(9):3358.
[2]Miller WH Jr,Schipper HM,Lee JS,et al.Mechanisms of action of arsenic trioxide[J]Cancer Res,2002,62:3901.
[3]Reed JC,Double identity for proteins of the Bcl-2family[J].Nature,1997,387(6635):775.
[4]曹 琦,韋國楨,郭紅榮.三氧化二砷誘導惡性腫瘤細胞凋亡機制的研究進展[J].現代腫瘤學,2007,15(5):732.
[5]Risau W,Mechanisms of angiogenesis[J].Nature,1997,386(6626):673.
[6]Chen GQ,Zhu J,Shi XG,et al.In vitro studies on cellular and molecular mechanisms of arsenic trioxide(As2O3)in the treatment of acute promyelocytic leukemia:As2O3induces NB4cell apoptosis with downregulation of Bcl-2expression and modulation of PML-RARalpha/PML proteins[J].Blood,1996,88(3):1058.
[7]Ge F,Lu XP,Zeng HL,et al.Proteomic and functional analyses reveal a dual molecular mechanism underlying arsenic-induced apoptosis in human multiple myeloma cells [J].Proteome Res,2009,8(6):3017.
[8]Wong WW,Puthalakath H.Bcl-2family proteins:the sentinels of the mitochondrial apoptosis pathway[J].IUBMB Life,2008,60(6):396.