于軍超,張樂萃,高志強(qiáng),張鶴曉,馬貴平,蒲 靜,張利峰,吳亞瓊,王慧珊,朱淑芬,張 偉,谷 強(qiáng)
(1.青島農(nóng)業(yè)大學(xué)動物科技學(xué)院,山東 青島266109;2.北京出入境檢驗(yàn)檢疫局,北京 朝陽100026;3.山東農(nóng)業(yè)大學(xué)動物科技學(xué)院,山東 泰安271018)
口蹄疫(FMD)是由口蹄疫病毒(FMDV)引起的偶蹄動物的一種急性高度傳染性疫病,是國際貿(mào)易中最重要動物傳染病之一[1]。最易感染的動物是黃牛、牦牛、犏牛、水牛、豬、羊、駱駝、鹿。通過交叉保護(hù)試驗(yàn)和血清學(xué)試驗(yàn)確定FMDV有7個血清型,即O、A、C、Asia1和SAT1、SAT2、SAT3,及70個以上的血清亞型[2]。血清型之間無交叉和交叉免疫現(xiàn)象[3]。通過檢測特異性抗體應(yīng)答反應(yīng),可對FMDV感染作出診斷。通常采用病毒中和試驗(yàn)(VN)和ELISA方法,也是貿(mào)易中指定使用的方法。中和試驗(yàn)具型特異性,但是要求條件高,并且需要2~3d才能提供結(jié)果,少數(shù)血清在稀釋倍數(shù)低時會出現(xiàn)假陽性。ELISA試驗(yàn)也具型特異性,而且具備敏感、快速、穩(wěn)定、可定量等優(yōu)點(diǎn)[3]。本試驗(yàn)旨在利用原核高效表達(dá)系統(tǒng)在大腸桿菌中表達(dá)FMDV O型的VP1蛋白,建立檢測FMDV O型抗體的間接ELISA方法。
1.1 試劑 Trizol,購自Invitrogen公司;DNA片段回收試劑盒,限制性內(nèi)切酶SacⅠ,HindⅢ,pMD-T20載體克隆試劑盒,T4DNA連接酶,DNA快速純化回收試劑盒,質(zhì)??焖偬崛〖兓噭┖?,購自TaKaRa公司;M-MLV反轉(zhuǎn)錄酶,RNA酶抑制劑,TaqDNA聚合酶,購自Promega公司;His·Bind蛋白純化試劑盒,購自Novagen公司;HRP標(biāo)記的rec Protein G,購自北京博奧森生物技術(shù)有限公司。
1.2 病毒核酸、質(zhì)粒、宿主菌及血清 O型O/YN-1/2005病毒核酸,云南檢驗(yàn)檢疫局動物檢疫實(shí)驗(yàn)室提供;原核表達(dá)質(zhì)粒pET-32a,本實(shí)驗(yàn)室保存;大腸桿菌(E.coli)Top10,Rosetta,購自北京康為世紀(jì)生物科技有限公司;口蹄疫病毒陽性血清,購自蘭州獸醫(yī)研究所。
1.3 口蹄疫病毒O型VP1基因擴(kuò)增、克隆 根據(jù)已知序列于口蹄疫病毒O型基因兩側(cè)序列,利用Oligo 6.0設(shè)計(jì)以下兩對引物,用于擴(kuò)增O型和基因的編碼區(qū)序列,設(shè)計(jì)的引物名稱、序列見表1。
表1 用于擴(kuò)增口蹄疫病毒1D編碼區(qū)的引物名稱和序列
42℃反轉(zhuǎn)錄30min之后進(jìn)行PCR擴(kuò)增。將擴(kuò)增產(chǎn)物用DNA片段回收試劑盒回收后,按照試劑盒說明將目的片段克隆于pMD-T20載體轉(zhuǎn)化大腸桿菌Top10,涂布于含有氨芐的LB瓊脂培養(yǎng)基中,于37℃條件下過夜培養(yǎng)。第2天挑取菌落于LB中37℃過夜培養(yǎng),對菌液進(jìn)行PCR鑒定后進(jìn)行測序。將序列正確的質(zhì)粒,命名為pMD-T20-O-VP1。
1.4 原核表達(dá)載體構(gòu)建與序列分析 分別用限制性內(nèi)切酶SacⅠ,HindⅢ對 pMD-T20-O-VP1和pET-32a37℃過夜雙酶切,然后用T4連接酶進(jìn)行連接,轉(zhuǎn)化大腸桿菌Top10,提取質(zhì)粒進(jìn)行PCR鑒定和酶切鑒定。將鑒定為陽性的質(zhì)粒分別命名為pET-32a-O-VP1。對插入片段進(jìn)行序列測定。
1.5 重組蛋白的誘導(dǎo)表達(dá) 將重組質(zhì)粒pET-32a-O-VP1轉(zhuǎn)化Rosetta宿主菌后,加入終濃度為1.0 mmol/L的IPTG進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá),分別在誘導(dǎo)前,誘導(dǎo)后6h取菌液1.0mL,5 000r/min離心10min,收集菌體。將表達(dá)產(chǎn)物進(jìn)行SDS-PAGE電泳。
1.6 重組蛋白的誘導(dǎo)表達(dá)的優(yōu)化 在菌液OD600nm分別為0.6和1.0時用1.0mmol/L的IPTG在37℃進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá),分析其表達(dá)量的變化;之后,在菌液OD600nm=1.0時,分別用0.5mmol/L,1.0 mmol/L和2.0mmol/L 的IPTG 在37℃誘導(dǎo)表達(dá),分析其表達(dá)量的變化;此外,在菌液OD600nm=1.0時,用1.0mmol/L IPTG 分別于28℃和37℃條件下進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá),分析其表達(dá)量的變化。
1.7 重組蛋白的純化與復(fù)性 在變性條件下采用His·Bind試劑盒對重組蛋白VP1進(jìn)行親和層析純化。在4℃條件下進(jìn)行稀釋復(fù)性。復(fù)性24h后,裝入透析袋中,對50mmol/L Tris-Cl(pH 值9.0)進(jìn)行透析,將透析后的蛋白溶液用PEG(分子量20 000)濃縮后,12 000r/min(4℃)離心15min,收集上清,過濾除菌后,小份分裝,保存于-80℃。
1.8 重組蛋白的反應(yīng)原性檢測
1.8.1 Western-blot分析 將誘導(dǎo)表達(dá)菌和對照菌全菌體蛋白經(jīng)SDS-PAGE電泳分離后,按常規(guī)方法進(jìn)行電轉(zhuǎn)印。轉(zhuǎn)印結(jié)束后,用口蹄疫病毒O型陽性血清和HRP標(biāo)記的rec蛋白G進(jìn)行Westernblot檢測,驗(yàn)證蛋白的反應(yīng)原性。
1.8.2 ELISA分析 用0.5mol/L的碳酸緩沖包被液將0.25mg/mL的純化重組蛋白抗原分別作50,100,200,400,800倍5個倍比稀釋度,包被酶標(biāo)反應(yīng)板,陽性血清和陰性血清作1∶40稀釋,酶標(biāo)抗體采用HRP標(biāo)記的rec蛋白G,用ELISA方法驗(yàn)證蛋白的反應(yīng)原性。
1.9 重組間接ELISA方法的建立 按照ELISA方法建立的常規(guī)程序,對方法建立過程中的各個條件進(jìn)行了優(yōu)化和確定其中酶標(biāo)抗體采用HRP標(biāo)記的rec蛋白G。
1.10 間接ELISA方法特異性試驗(yàn)
1.10.1 阻斷試驗(yàn) 用血清稀釋液將FMDV O型滅活抗原做1∶2稀釋,同時用血清稀釋液把O型陽性血清和陰性血清分別做各稀釋度倍比稀釋,觀察FMDV O型病毒抗原是否能阻斷陽性血清反應(yīng)。1.10.2 特異性交叉反應(yīng)試驗(yàn) 以最適濃度抗原包被酶標(biāo)板,分別對FMDV-A型、O型、C型、Asia 1型陽性血清,收集的豬瘟、豬藍(lán)耳病、豬偽狂犬病、豬細(xì)小病毒的陽性血清作1∶40稀釋,作ELISA測定,從而驗(yàn)證方法的特異性。
1.11 板內(nèi)和板間重復(fù)性試驗(yàn) 用重組蛋白包被ELISA板,對3份陽性血清和3份陰性血清樣品進(jìn)行檢測,重復(fù)4孔,進(jìn)行板內(nèi)重復(fù)性試驗(yàn);用重組蛋白分別包被4塊反應(yīng)板,分別對2份陽性血清和2份陰性血清進(jìn)行板間重復(fù)性試驗(yàn),并對檢測結(jié)果進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)。
1.12 標(biāo)準(zhǔn)陽性血清效價測定 O型標(biāo)準(zhǔn)陽性血清從1∶40作2倍系列稀釋,確定方法的檢測限。
1.13 對臨床樣品的檢測 用建立的間接ELISA方法檢測了2000年以來血清樣品355份,其中包括進(jìn)口血清257份,免疫血清98份。并與液相阻斷ELISA試劑盒進(jìn)行這些臨床樣品進(jìn)行檢測,比較符合率。
2.1 O型口蹄疫病毒VP1編碼基因擴(kuò)增結(jié)果 在比對口蹄疫病毒O型1D基因編碼區(qū)兩側(cè)序列基礎(chǔ)上設(shè)計(jì)引物,對 O/YN-1/2005病毒核酸進(jìn)行 RTPCR擴(kuò)增,經(jīng)電泳,觀察到了預(yù)期大小為657bp的特異性條帶(見圖1)。
圖1 目的片段RT-PCR擴(kuò)增結(jié)果
2.2 O型口蹄疫病毒VP1原核表達(dá)載體的構(gòu)建與序列測定分析 將657bp的PCR產(chǎn)物克隆入pMD-T20載體后,經(jīng)限制性內(nèi)切酶SacⅠ,HindⅢ對pMD-T20-O-VP1和pET-32a37℃過夜雙酶切后,將VP1克隆入pET-32a,即為構(gòu)建的表達(dá)載體pET-32a-O-VP1。將表達(dá)載體質(zhì)粒進(jìn)行測序,與預(yù)期結(jié)果一致。
2.3 O型口蹄疫病毒VP1蛋白的誘導(dǎo)表達(dá) 將重組質(zhì)粒pET-32a-O-VP1轉(zhuǎn)化 Rosetta宿主菌后,將誘導(dǎo)表達(dá)前以及誘導(dǎo)后不同時間,分別取菌液1.0 mL,5 000r/min離心10min,收集菌體,加入2×SDS上樣緩沖液,煮沸5min,用12%SDS-PAGE膠檢查,結(jié)果見圖2,在誘導(dǎo)后6h,可觀察到明顯的重組蛋白表達(dá),分子量約為43ku,與預(yù)期大小一致。
2.4 重組蛋白的表達(dá)條件優(yōu)化 經(jīng)試驗(yàn)確定的最佳表達(dá)條件為在菌液OD600nm=1.0時,用0.5 mmol/LIPTG在28℃誘導(dǎo)8h,可產(chǎn)生部分可溶性表達(dá),但大部分菌體蛋白為包涵體表達(dá)。
2.5 重組蛋白的純化與復(fù)性 經(jīng)純化透析后得到高純度的重組蛋白,見圖3。
2.6 重組蛋白的反應(yīng)原性檢測
2.6.1 Western-blot檢測結(jié)果 進(jìn)行 Westernblot檢測,可以檢測到約43ku大小的預(yù)期條帶,結(jié)果見圖4。表明重組蛋白具有良好的反應(yīng)原性。
2.6.2 ELISA試驗(yàn)結(jié)果 ELISA試驗(yàn)結(jié)果顯示,不同量的表達(dá)蛋白包被酶標(biāo)反應(yīng)板之后,用1∶40陰陽性血清檢測,P/N值可達(dá)5.24~7.71之間,進(jìn)一步表明重組蛋白具有良好的反應(yīng)原性,可作為重組抗原建立ELISA方法。
2.7 重組ELISA方法的建立
慢跑能增加大學(xué)生的積極幸福感,對心理煩惱和疲勞感無影響;慢跑結(jié)合音樂可以增加大學(xué)生的積極幸福感,能有效地降低大學(xué)生的心理煩惱感,對疲勞感無響應(yīng)。兩種類型的慢跑,即慢跑組和慢跑結(jié)合音樂組的對比:在積極幸福感上,運(yùn)動后慢跑組和慢跑結(jié)合音樂組無差異;在心理煩惱感上,慢跑結(jié)合音樂比慢跑更有效地降低大學(xué)生心理煩惱感;在疲勞感上,慢跑比慢跑結(jié)合音樂更能降低大學(xué)生的疲勞感。
2.7.1 重組蛋白抗原最適包被濃度和待檢血清稀釋濃度的確定 隨著抗原濃度的減小和血清稀釋倍數(shù)的增加,血清的OD450不斷減小,當(dāng)重組抗原包被濃度為0.062 5μg時,血清稀釋度為1∶40時,P/N值較高,而且陰性血清OD450值相對較低。據(jù)此,我們確定抗原包被量為0.062 5μg,血清稀釋度為1∶40。
2.7.2 重組蛋白抗原包被和封閉條件的確定 用重組蛋白在最適包被濃度包被酶標(biāo)板,37℃中2h,然后于4℃條件下過夜,所測得的P/N值較2、3組高,因此選為最適包被條件。
2.7.3 封閉液的確定 3種適用于此酶標(biāo)抗體的封閉液,比較封閉效果。含1%明膠的PBST封閉液的封閉效果好,從而確定為合適的封閉液。
2.7.4 酶標(biāo)抗體反應(yīng)時間確定 為適用于多種動物的抗體檢測,我們選擇HRP標(biāo)記的rec G作為酶標(biāo)抗體,經(jīng)優(yōu)化,確定 HRP標(biāo)記的rec G(1∶2 000稀釋)的反應(yīng)時間為37℃30min。
2.7.5 間接ELISA方法陰陽臨界值的確定 根據(jù)統(tǒng)計(jì)學(xué)原理,樣本的OD450值>陰性血清OD平均值X+3×SD,可以在99.9%的置信水平上判定為陽性。計(jì)算30份血清的OD450值平均值=0.191,標(biāo)準(zhǔn)差SD=0.039,因此,ELISA陰陽性臨界值等于0.191+3×0.039=0.308。為便于判定結(jié)果,確定樣本臨界值為0.3。
2.8 特異性試驗(yàn)
2.8.2 特異性交叉反應(yīng)試驗(yàn) 結(jié)果表明,僅O型陽性血清與包被抗原產(chǎn)生免疫反應(yīng),結(jié)果為陽性,其他血清型的FMDV陽性血清和陰性對照血清的OD450nm值均小于0.3,為陰性。表明,重組蛋白與口蹄疫病毒O型陽性血清,有較好的特異性,可以用于口蹄疫病毒O型抗體的檢測。
2.9 重復(fù)性試驗(yàn) 對于不同的血清樣品,板內(nèi)重復(fù)試驗(yàn)變異系數(shù)最大為4.7%,小于5%。對4份已知的陰陽性血清用4塊板子進(jìn)行板間重復(fù)試驗(yàn)的變異系數(shù)最大為9.49%,小于10%,可以滿足檢測需求,表明建立的方法重復(fù)性良好。
2.10 標(biāo)準(zhǔn)陽性血清檢測極限測定 O型標(biāo)準(zhǔn)陽性血清從1∶40作2倍系列稀釋,確定方法的檢測靈敏度。結(jié)果顯示,血清效價為1∶320。
2.11 對臨床樣品的檢測 用建立的間接ELISA方法檢測了2000年以來血清樣品355份。與口蹄疫病毒O型液相阻斷ELISA試劑盒進(jìn)行比較,比較符合率,結(jié)果見表2。
表2 對臨床樣品檢測結(jié)果的比較
經(jīng)過計(jì)算,本試驗(yàn)建立的間接ELISA方法與液相阻斷ELISA比較,特異性為98.46%,敏感性為100%,兩者的符合率為98.87%。經(jīng)統(tǒng)計(jì)學(xué)方法分析,兩種方法的差異不顯著(P>0.05)。
在本試驗(yàn)中,我們應(yīng)用生物信息學(xué)對口蹄疫病毒O型VP1的抗原指數(shù)進(jìn)行分析,并進(jìn)行重組表達(dá),用來作為檢測抗原,用以檢測口蹄疫病毒O型抗體。
盡管克隆的VP1基因經(jīng)序列測定無突變,但仍含有一些稀有密碼子[4],但我們采取可給予表達(dá)過程提供稀有密碼子的Rosetta受體菌,外源基因以包涵體的形式獲得高效表達(dá)。但也有一部分以可溶性存在。我們將包涵體溶解后,在變性條件下采用His·Bind蛋白純化試劑盒純化蛋白。獲得高純度蛋白。通過Western-blot以及ELISA試驗(yàn)證明表達(dá)產(chǎn)物具有良好的抗原性。而且與其他的陽性血清無交叉反應(yīng)。
ELISA方法具有特異、敏感、重復(fù)性好以及易于操作等優(yōu)點(diǎn),已經(jīng)廣泛用于多種動物傳染病的檢測。本試驗(yàn)利用原核表達(dá)的重組蛋白建立了檢測口蹄疫病毒O型抗體的間接ELISA方法,并與商品化試劑盒進(jìn)行了比較。通過對355份血清的檢測結(jié)果表明,二者在特異性為98.46%,敏感性為100%,符合率為98.87%,進(jìn)一步收集更多數(shù)量的血清對我們的方法進(jìn)行驗(yàn)證和完善,將是我們今后的重要任務(wù)。
[1]Office International des Epizooties.Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals[M].Office International des Epizooties,Paris,F(xiàn)rance.www.oie.int.2012.
[2]殷震,劉景華.動物病毒學(xué)[M].2版.北京:科學(xué)技術(shù)出版社,1997.
[3]Lu Z,Cao Y,Bao H,etal.Techniques developed in China for foot-and-mouth disease[J].TransboundEmerg Dis,2008,55(5/6):196-199.
[4]Sanyal A.Monhapatra J K,Kumar R M,etal.Complete nucleotide sequence analysis of a vaccine strain and a field isolate of foot-and-mouth disease virus serotype Asia I with an insertion in VP1genomic region[J].Acta Viol,2004,48(3):159-166.