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        大鼠坐骨神經(jīng)切斷后丙戊酸鈉對相應(yīng)脊髓運動神經(jīng)元p-ERK1/2表達的影響

        2012-11-23 09:12:56劉浩宇吳廣智崔樹森
        中國實驗診斷學(xué) 2012年3期
        關(guān)鍵詞:胞核運動神經(jīng)元胞質(zhì)

        劉浩宇,吳廣智,崔樹森

        (吉林大學(xué)中日聯(lián)誼醫(yī)院 手外科,吉林 長春130033)

        胞外信號調(diào)節(jié)激酶(extracellular signal-regulated kinase,ERK)是信號網(wǎng)絡(luò)中絲裂原活化蛋白激酶(MAPK)家族的一員,ERK1/2的活化具有抑制細胞凋亡、促進創(chuàng)傷愈合及神經(jīng)再生的作用[1]。丙戊酸鈉(sodium valproate,VPA)是目前臨床上應(yīng)用較廣的抗癲癇藥物,近年來研究[2,3]發(fā)現(xiàn)大鼠腦組織損傷后VPA對其具有保護神經(jīng)元、降低炎性反應(yīng)、促進神經(jīng)再生等作用。但是,關(guān)于VPA的作用機制卻不清楚。因此,作者通過建立大鼠坐骨神經(jīng)損傷模型,應(yīng)用VPA進行干預(yù),檢測損傷相關(guān)的脊髓運動神經(jīng)元胞體中p-ERK1/2的表達情況,繼而探討VPA對大鼠坐骨神經(jīng)損傷后脊髓運動神經(jīng)元保護作用的機制。

        1 材料與方法

        1.1 動物與試劑 健康雄性Wister大鼠64只,體重250-300g(吉林大學(xué)動物實驗室),隨機分為:對照組:即單純坐骨神經(jīng)切斷組,實驗組:即:丙戊酸鈉組,每組32只。各組按手術(shù)后1、3、7、14d分為4個時間點,每個時間點8只。主要試劑:一抗:p-ERK1/2-1(Promega公司),β-actin(Sigma公司),VPA片(江蘇省恒瑞制藥有限公司)。使用濃度及方法嚴格按照說明書配制。

        1.2 給藥方法 術(shù)后當天給藥。丙戊酸鈉組給VPA片,將藥片取出研成粉末后用生理鹽水稀釋成50ml/L混懸液灌胃,每1ml懸液含生藥0.05g,按大鼠每250g體重1.5ml給藥,每日給藥1次,相當于生藥300mg/(kg.d),作為實驗組;單純坐骨神經(jīng)切斷組坐骨神經(jīng)原位縫合后給予生理鹽水,按每100g體重1ml灌胃,每日1次,作為對照組。

        1.3 模型制備與取材 3%戊巴比妥鈉40mg/kg腹腔麻醉大鼠,術(shù)區(qū)常規(guī)消毒,做右側(cè)臀部斜行切口,鈍性分離肌肉,暴露坐骨神經(jīng),將坐骨神經(jīng)完全切斷,在12倍手術(shù)顯微鏡下將其神經(jīng)兩端正確對位后,用9-0無損傷線吻合斷端4針,逐層閉合創(chuàng)口。

        1.4 免疫組化法 石蠟切片脫蠟后室溫孵育,5%-10%正常山羊血清(PBS稀釋)封閉,室溫孵育、去血清,滴加適當比例稀釋的一抗p-Erk1/2兔抗鼠單克隆抗體(1:100),4℃孵育過夜。DAB顯色、沖洗、復(fù)染、封片。結(jié)果判定:陽性為細胞內(nèi)出現(xiàn)棕黃色顆粒。①不著色為陰性(細胞著色比例<10%),②染色呈淡黃色為弱陽性(+)(10%<細胞著色比例<25%),③黃色為陽性(++)(25%<細胞著色比例<50%),④棕黃色為強陽性(+++)(50%<細胞著色比例)。

        1.5 Western blot 快速將液氮中的組織取出,研碎、裂解細胞,分離提取蛋白,測定濃度,每個泳道15ug,進行8%SDS-PAGE電泳。轉(zhuǎn)至PDVF膜,一抗p-ERK1/2抗體(1:2500),4℃搖床輕搖孵育過夜,二抗Goat Anti Rabbit IgG,F(xiàn)ITC偶聯(lián)抗體(1:5000)室溫搖床輕搖2小時。按ECL顯色試劑盒說明書操作顯色,X光膠片曝光,然后進行條帶掃描和分析P-ERK1/2表達。

        1.6 統(tǒng)計學(xué)方法 將Western blot條帶掃描和分析,各組計量數(shù)據(jù)以±s表示,采用SPSS 10.0版軟件進行統(tǒng)計分析,組間比較采用t檢驗分析,P<0.05為具有統(tǒng)計學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 大鼠坐骨神經(jīng)切斷后,VPA對脊髓運動神經(jīng)元p-ERK1/2表達的定位分析 400倍鏡下觀察:對照組:1d時,運動神經(jīng)元胞質(zhì)中p-Erk1/2表達呈強陽性(+++),胞核中未見表達(圖1-1)。3d時,胞質(zhì)仍呈強陽性表達(+++),胞核中未見表達(圖1-3)。7d時,胞質(zhì)內(nèi)呈黃色為陽性表達(++)(圖1-5)。14d時,逐漸衰減呈淡染,為弱陽性表達(圖1-7)。實驗組:1d時,運動神經(jīng)元胞質(zhì)中p-Erk1/2表達呈強陽性(+++),胞核中未見表達(圖1-2);3d時,胞質(zhì)仍呈強陽性表達(+++),胞核中未見表達(圖1-4);7d時,胞質(zhì)內(nèi)呈黃色為陽性表達(++),可見少量細胞核內(nèi)有表達(圖1-6);14d時,逐漸衰減呈淡染,為弱陽性表達(圖1-8)。

        2.2 大鼠坐骨神經(jīng)切斷后,VPA對脊髓運動神經(jīng)元p-ERK1/2表達的定量分析 Western blot結(jié)果顯示(圖2):對照組:術(shù)后3d時,p-ERK1/2的表達達到高峰;術(shù)后7-14d,p-ERK1/2的表達逐漸下調(diào)。實驗組:術(shù)后3d時,p-ERK1/2的表達達到高峰;術(shù)后7-14d,p-ERK1/2的表達逐漸下調(diào)。組間數(shù)據(jù)分析顯示:術(shù)后1-7d,實驗組相關(guān)p-ERK1/2表達明顯高于對照組(P<0.05)具有統(tǒng)計學(xué)意義。

        3 討論

        ERK是信號網(wǎng)絡(luò)中絲裂原活化蛋白激酶家族的一員,坐骨神經(jīng)切斷后各種刺激的傳導(dǎo)可能引起相應(yīng)脊髓運動神經(jīng)元胞體一些信號分子的表達變化,通過各種細胞因子激活ERK通路促進細胞存活和抑制細胞凋亡[4]。正常狀態(tài)下,ERK位于胞漿中,當激活后轉(zhuǎn)位至胞核,調(diào)節(jié)轉(zhuǎn)錄因子活性,例如活化轉(zhuǎn)錄因子 AP-1、fas、jun,也參與BCL-2的磷酸化、活化CDK2、CDK4、活化NF-KB誘導(dǎo)生存基因表達,產(chǎn)生細胞效應(yīng)[5]。因此,研究坐骨神經(jīng)損傷后,VPA對大鼠脊髓運動神經(jīng)元p-ERK1/2的表達變化,對研究VPA對大鼠坐骨神經(jīng)損傷后脊髓運動神經(jīng)元保護作用機制具有重要意義。

        圖1 脊髓運動神經(jīng)元p-ERK1/2免疫組化,*400

        圖2 脊髓運動神經(jīng)元p-ERK1/2定量分析(* 對照組比較P<0.05)

        VPA是一種經(jīng)典的抗癲癇藥物,臨床使用已有多年,由于其價格便宜,安全性好,受到廣大患者的歡迎,一些癲癇病人還長期服用。但是,關(guān)于VPA的作用機制卻不清楚。本實驗結(jié)果顯示:術(shù)后1-28d,VPA實驗組相關(guān)p-ERK1/2表達明顯高于對照組。這些研究結(jié)果表明:VPA對脊髓運動神經(jīng)元的保護作用可能是因為VPA激活了MAPK/ERK信號傳導(dǎo)途徑,該途徑是內(nèi)源性神經(jīng)生長因子[6]常用的信號傳遞系統(tǒng),該途徑亦可調(diào)控的基因表達[7],包括生長相關(guān)蛋白(GAP-43)和Bcl-2,促進神經(jīng)生長和細胞存活。

        [1]Waetzig V,Herdegen T.The concerted signaling of ERK1/2and JNKs is essential for PC12cell neuritogenesis and converges at the level of target proteins[J].Mol Cell Neurosci,2003,24(1):238.

        [2]Bosetti F,Bell JM,Manickam P.Microarray analys is of rat brain gene expression after chronic administration of sodium valproate[J].Brain Res Bull,2005,65(4):331.

        [3]劉世清,吳 飛,饒 婷,等.丙戊酸對大鼠坐骨神經(jīng)修復(fù)與再生作用的影響[J].中國臨床康復(fù),2005,9(9):26.

        [4]Bonni A,Brunet A,West AE,et al.Cell survival promoted by the Ras MAPK signaling transcription-dependent and independent mechanisms[J].Science,1999,286(5443):1358.

        [5]Michaela M,Jason EC,Josef A,et al.ERK-dependent and-independent pathways trigger human neural progenitor cell migration[J].Toxicol Appl Pharmacol,2007,221(1):57.

        [6]Husseini K,Manji,Gregory J,et al.Clinical and pre-clinical evidence for the neurotrophic effects of mood stabilizers:Implications for the pathophy siology and treatment of manic-depressive illness[J].Biol Psychiatry,2000,48:740.

        [7]Mora A,Gonzalez-Polo RA,F(xiàn)uentes JM,et al.Different mechanisms of protection against apoptosis by valproate and Li1[J].Eur J Biochem,1999,266:886.

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