孫慶國,趙文靜,王日中,陳 鋒
(吉林省肝膽病醫(yī)院 檢驗科,吉林 長春130062)
骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(mesenchymal stem cell,MSCs)是骨髓中一類具有多分化潛能的干細(xì)胞,在一定誘導(dǎo)條件下不僅可分化為中胚層的骨細(xì)胞、軟骨細(xì)胞、脂肪細(xì)胞、心肌細(xì)胞,而且能分化成外胚層的神經(jīng)元、神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞及內(nèi)胚層的肝細(xì)胞[1-4]。MSCs向心肌細(xì)胞的分化為擴張性心肌病、心肌梗死等的治療帶來了新的希望[5]。研究證明,5-氮胞苷(5-aza)可誘導(dǎo)MSCs向心肌樣細(xì)胞分化,但如何促進(jìn)MSCs向心肌細(xì)胞分化仍是需要重點研究的問題,為此本研究分離培養(yǎng)大鼠骨髓MSCs,并采用擴張性心肌病大鼠血清和5-氮胞苷誘導(dǎo)培養(yǎng)骨髓MSCs,為MSCs向心肌細(xì)胞分化選擇最適微環(huán)境提供實驗基礎(chǔ)和理論依據(jù)。
DMEM培養(yǎng)基(Gibaco),胎牛血清(杭州四季青生物技術(shù)公司);胰蛋白酶(Introvigen)、5-氮胞苷(Sigma);淋巴細(xì)胞分離液(密度:1.077,上海試劑二廠,中國),SD大鼠(吉林大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院醫(yī)學(xué)動物實驗中心),兔抗大鼠肌鈣蛋白(cTnT)單抗(丹麥DAKO公司),SP免疫組化染色試劑盒(福州邁新生物技術(shù)公司)。
選用8天SDE大乳鼠4只,斷頭處死,無菌分離股骨和脛骨,沖洗骨髓腔制成細(xì)胞懸液,淋巴細(xì)胞分離液密度梯度離心分離單個核細(xì)胞,接種2×106個單個核細(xì)胞于10cm培養(yǎng)皿中,37℃、5%CO2培養(yǎng)48h后換液,培養(yǎng)約10~14天細(xì)胞接近融合時按1∶4傳代,并標(biāo)記為Passage1(P1);重復(fù)以上操作,傳代培養(yǎng)。
取3代MSCs細(xì)胞1×104個/孔接種于24孔培養(yǎng)板中(孔中預(yù)先放置無菌蓋玻片),37℃、5%CO2培養(yǎng),待MSCs生長接近80%融合時,取出蓋玻片,PBS沖洗,4%多聚甲醛固定15min,蒸餾水沖洗,免疫細(xì)胞化學(xué)染色檢測MSCs細(xì)胞表面標(biāo)志CD44、CD29的表達(dá),嚴(yán)格按照說明書進(jìn)行操作。
按照參考文獻(xiàn)[6]方法建立擴張性心肌病大鼠模型,造模成功后無菌腹主動脈采血,分離血清,-80℃冰箱保存?zhèn)溆?。取?代大鼠MSCs,以細(xì)胞濃度2×105/孔接種于6孔板內(nèi)(孔內(nèi)預(yù)置無菌蓋玻片),過夜培養(yǎng)后實驗組采用5μmol/L 5-aza干預(yù)培養(yǎng)24h后棄去培養(yǎng)液,改用含20%擴張性心肌病大鼠血清的低糖DMEM繼續(xù)培養(yǎng);對照組始終采用常規(guī)培養(yǎng)基同等條件下培養(yǎng),每3~4天換液一次,于加入擴張性心肌病大鼠血清后1、2、3、4周取出蓋玻片,4%多聚甲醛固定,-20℃保存待檢。
取出已固定細(xì)胞爬片,室溫放置30min,PBS沖洗后,免疫細(xì)胞化學(xué)染色檢測cTnT的表達(dá)(兔抗大鼠肌鈣蛋白單抗1∶200稀釋),結(jié)果判定:MSCs胞漿內(nèi)出現(xiàn)棕褐色顆粒為陽性。顯微鏡下每組觀察計數(shù)5個低倍視野,計算陽性細(xì)胞百分率。
淋巴細(xì)胞分離液密度梯度離心后獲得的單個核細(xì)胞培養(yǎng)48小時后,部分細(xì)胞貼壁,并有少部分細(xì)胞已開始分裂增殖(圖1A、B),隨著培養(yǎng)時間的延長,細(xì)胞集落不斷增多,擴大,培養(yǎng)約10~14天細(xì)胞達(dá)80%融合。傳代骨髓MSCs很快貼壁,呈梭形,增殖迅速,約6~7天即可傳代培養(yǎng)。
圖1 Morphological features of rat BMSCs(×40)
骨髓MSCs具有特征性的表面標(biāo)志,其特點是不表達(dá)造血干細(xì)胞的表面標(biāo)志CD34和CD45,表達(dá)CD29、CD44、CD105和CD166等間充質(zhì)干細(xì)胞的特異性表面標(biāo)志[7],免疫細(xì)胞化學(xué)染色結(jié)果顯示表明:本研究分離培養(yǎng)的骨髓MSCs高表達(dá)CD44和CD29(圖2),不表達(dá)CD34。
圖2 The expression of CD44and CD29in rat BMSCs(×100)
對照組大鼠骨髓MSCs未發(fā)生形態(tài)改變,呈成纖維細(xì)胞樣整齊排列,培養(yǎng)第7天即長滿瓶底;擴張性心肌病大鼠模型血清+5-aza誘導(dǎo)培養(yǎng)組大鼠骨髓MSCs生長良好,7天后細(xì)胞形態(tài)即發(fā)生變化,體積變大,緊密平行排列生長,而且隨著培養(yǎng)時間的延長,梭形細(xì)胞的比例下降,細(xì)胞多呈桿狀,少數(shù)細(xì)胞呈不規(guī)則外形,相鄰細(xì)胞間的胞膜有接觸,逐漸相連呈肌管狀。
擴張性心肌病大鼠模型血清+5-aza誘導(dǎo)組MSCs誘導(dǎo)培養(yǎng)7、14、21、28天cTnT均呈陽性表達(dá),其表達(dá)陽性率分別為(18.4±3.2)%、(24.5±4.8)%、(50.8±6.7)%和(75.4±10.5)%,結(jié)果表明隨時間延長表達(dá)陽性率增高,不同時間點陽性率比較差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);未經(jīng)5-aza誘導(dǎo)的B MSCs中未見cTnT表達(dá)(圖3)。
圖3 Morphological features and cTnT expressiojn of rat BMSCs in DCM rat serum group(×100)
MSCs在骨髓中的含量極少,僅占骨髓細(xì)胞的0.001%-0.01%[8],需要在體外進(jìn)行分離擴增培養(yǎng)才能滿足細(xì)胞移植的需要。分離骨髓MSCs的分離方法主要有4種:密度梯度離心法貼、壁培養(yǎng)法、流式細(xì)胞儀分選法和免疫磁珠分選法。本研究采用淋巴細(xì)胞分離液密度梯度離心和貼壁培養(yǎng)法相結(jié)合分離培養(yǎng)大鼠骨髓MSCs,研究結(jié)果顯示,密度梯度離心獲得的單個核細(xì)胞培養(yǎng)48h后部分細(xì)胞貼壁,并呈集落式生長,傳代細(xì)胞再形成集落式生長,呈均勻有序的成纖維細(xì)胞樣細(xì)胞生長,傳代周期為6-7天。主要從細(xì)胞的形態(tài)和培養(yǎng)特性、表面細(xì)胞標(biāo)志的表達(dá)以及分化潛能3個方面鑒定MSCs,本研究采用免疫細(xì)胞化學(xué)染色檢測大鼠骨髓MSCs的表型,結(jié)果表明分離培養(yǎng)的細(xì)胞高表達(dá)CD44和CD29,CD34表達(dá)陰性。結(jié)果顯示本研究獲得較純化,高活性的BMSCs,與文獻(xiàn)報道一致,為進(jìn)一步實驗奠定了基礎(chǔ)。
MSCs可以分化為心肌細(xì)胞和血管內(nèi)皮細(xì)胞,目前MSCs已經(jīng)成為治療心血管疾病的種子細(xì)胞[9],成為心血管疾病領(lǐng)域的研究熱點,5-aza是目前公認(rèn)的可以誘導(dǎo)MSCs向心肌細(xì)胞分化的藥物,但有文獻(xiàn)報道5-aza在誘導(dǎo)MSCs分化為心肌細(xì)胞的同時,其可以誘導(dǎo) MSCs的凋亡[10-12]。同時大量研究結(jié)果表明,體外模擬心肌微環(huán)境,可高效誘導(dǎo)MSCs分化為心肌細(xì)胞。cTnT是心肌肌鈣蛋白中具有較高特異性的亞型,是鑒定心肌源性細(xì)胞的特異性標(biāo)志物[13],本研究在體外采用擴張型心肌病大鼠模型血清+5-aza對MSC進(jìn)行誘導(dǎo),并采用免疫細(xì)胞化學(xué)染色方法鑒定cTnT的表達(dá),結(jié)果顯示擴張型心肌病大鼠模型血清+5-aza誘導(dǎo)培養(yǎng)組BMSCs生長狀態(tài)良好,7天后細(xì)胞的形態(tài)即發(fā)生明顯變化,并隨著培養(yǎng)時間的延長呈桿狀,排列具有方向性,逐漸相連呈肌管狀,免疫細(xì)胞化學(xué)染色結(jié)果顯示誘導(dǎo)組 MSCs的cTnT呈陽性表達(dá),而未經(jīng)5-aza誘導(dǎo)BMSCs中未見cTnT表達(dá),本研究在體外找到更適宜誘導(dǎo)BMSCs向心肌細(xì)胞分化的條件,為進(jìn)一步實驗奠定了基礎(chǔ),相關(guān)研究正在深入進(jìn)行中。
[1]Richardson P,Mckenna W,Bristow M,et al.Report of the 1995 world health organization/in—ternational society and federation of cardiology task force on the definition and classification of cardiomyopathies[J].Circulation,1996,93(5):841.
[2]Maron BJ,Towbin JA,Thiene G,et al.Contemporary definitions and classification of the cardiomyopathies:an American Heart Association Scientific Statement from the Council on Clinical Cardiology,Heart Failure and Transplantation Committee;Quality of Care and Outcomes Research and Functional Genomics and Translational Biology Interdisciplinary Working Groups;and Council on Epidemiology and Prevention[J].Circulation,2006,113(14):1807.
[3]Slack JM,Tosh D.Transdifferentiation and metaplasia-switching cell types[J].Curr Opin Genet Dev,2001,11(5):581.
[4]Bianco P,Riminucci M,Gronthos S,et al.Bone marrow stromal stem cells:Nature,biology,and potential applications[J].Stem cells,2001,19:180.
[5]Luk A,Ahn E,Soor GS,Butany J.Dilated cardiomyopathy:a review[J].J Clin Pathol,2009,62(3):219.
[6]Noriteshi Nagaya,Kenji Kngawa,el a1.Transplantation of Mesenchymal Stem Cells lmpmves Cardiac Function in a Rat Model of Dilated Cardiomyopathy[J].Circulation,2005,112(8):1128.
[7]呂璐璐,宋永平,魏旭東,等.人臍帶和骨髓源間充質(zhì)干細(xì)胞生物學(xué)特征的對比研究[J].中國實驗血液學(xué)雜志,2008,16(1):140.
[8]Granero-Molto F,Weis JA,Longobardi L,et al.Role of mesenchymal stem cells in regenerative medicine:application to bone and cartilage repair[J].Expert Opin Biol Ther,2008,8(3):255.
[9]In't Anker PS,Scherion SA,Kleijburg-van der Keur C,et al.Amniotic fluid as a novel source of mesenchymal stem cells for therapeutic transplantation[J].Blood,2003,102(4):1548.
[10]Iwase T,Nagaya N,F(xiàn)ujii T,et al.Comparison of angiogenic potency between mesenchymal stem cells and mononuclear cells in a rat model of hindlimb ischemia[J].Cardiovasc Res,2005,66(3):543.
[11]Moscoso I,Centeno A,Lopez E,et al.Differentiation“in vitro”of primary and immortalized porcine mesenchymal stem cells into cardiomyocytes for cell transplantation[J].Transplant Proc,2005;37(1):481.
[12]方志成,王 瑋,劉志祥,等.5一氮胞苷誘導(dǎo)對骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞凋亡影響的實驗研究[J].心血管康復(fù)醫(yī)學(xué)雜志,2006,15(2):111.
[13]Panteghini M.Present is sues in the determination of troponins and other markers of cardiac damage[J].Clin Biochem,2000,33(3):161.