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        油棕猝倒病菌實時熒光PCR檢測方法

        2012-09-28 01:44:06張慧麗王建峰段維軍高姍姍陳先鋒
        植物保護 2012年6期
        關(guān)鍵詞:油棕探針真菌

        張慧麗, 王建峰, 段維軍, 徐 瑛, 高姍姍, 陳先鋒*

        (1.寧波出入境檢驗檢疫局,寧波 315012;2.寧波大學(xué),寧波 315211)

        華麗腐霉(Pythium splendens Braun)引起的油棕猝倒病是油棕上的一種重要真菌病害[1],該病菌寄主范圍很廣,除侵染油棕苗以外,還能危害上百種經(jīng)濟作物,引起寄主幼苗整株失水萎蔫[2]。它主要分布在比利時、法國、德國、意大利、荷蘭、日本、坦桑尼亞、剛果和美國的夏威夷、佛羅里達、賓夕法尼亞州,國內(nèi)臺灣、海南曾有報道[2-4],但其他地區(qū)未見發(fā)生報道。該病菌通過帶菌土壤、生長介質(zhì)和營養(yǎng)繁殖材料傳播。在2007年被列入中華人民共和國進境植物檢疫性有害生物名錄。針對P.splendens的檢 測 已 有 特 異 性 引 物[5]、PCR-RFLP[6]、核 糖 體DNA序列分析[4]等方法。隨著分子生物學(xué)技術(shù)的發(fā)展,實時熒光PCR以其具有的高特異性、高靈敏度以及快速的優(yōu)點越來越多地應(yīng)用于疫病的檢測。

        真核生物核糖體 DNA(rDNA)由18S、ITS1(internal transcribed space)、5.8S、ITS2 和 28S構(gòu)成,頭尾串聯(lián)形成重復(fù)序列,一個基因組內(nèi)有60~200個拷貝。ITS1和ITS2常被合稱為ITS,并且5.8SrDNA基因也被包括在ITS之內(nèi)。rDNA上5.8S、18S和28SrDNA基因序列進化緩慢而相對保守,但這三個基因序列之間的ITS序列的進化則相當(dāng)迅速,因而rDNA序列廣泛用于真菌各級水平的系統(tǒng)學(xué)研究[7]。本研究通過對病原菌及相關(guān)種的rDNA ITS序列進行比較分析,設(shè)計了針對P.splendens的引物和探針,建立了P.splendens實時熒光PCR檢測方法,為口岸檢驗檢疫提供快速、準(zhǔn)確的檢測技術(shù)。

        1 材料和方法

        1.1 菌株

        供試菌株包括了腐霉屬12種、疫霉屬2種以及一些常見真菌、細(xì)菌共17種21個菌株。菌株編號和來源見表1。

        表1 參試菌株及來源

        1.2 DNA提取

        將供試真菌菌株采用CTAB法提取總DNA[8],細(xì)菌菌株采用TaKaRa minibest bacterial genomic DNA extraction kit ver.2.0 試 劑 盒 提 取 DNA,-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.3 PCR檢測

        1.3.1 引物及探針的設(shè)計與合成

        使用Bioedit軟件對GenBank中的病原菌及相關(guān)種的rDNA ITS序列進行比較分析,找出保守序列,應(yīng)用 Primer Express 5.0設(shè)計P.splendens的引物和探針。實時熒光PCR引物pyspF序列為5′-TTAAATGGACAGGGTCTTTCTAT-3′, pyspR序 列 為 5′-TGCCGAAGTCGCCAAAAG-3′,Taqman探針 pyspT 序列為5′-CGAGCACCACACTTCACACAG-3′,探針5′端標(biāo)記的熒光報告基團為FAM,3′端標(biāo)記的熒光猝滅基團為TAMRA。熒光探針與引物由寶生物工程(大連)有限公司合成。

        1.3.2 實時熒光PCR反應(yīng)體系和程序

        PCR反應(yīng)總體積為25μL,各成分為:1×Premix Ex TaqTM(大連寶生物),引物0.5μmol/L,探針0.2μmol/L,校正熒光 ROX 0.2μmol/L。在ABI 7900定量PCR儀(美國ABI)上進行PCR反應(yīng)。反應(yīng)條件為:50℃預(yù)熱2min;95℃預(yù)變性10min;95℃15s,60℃1min,40個循環(huán)。實時熒光PCR利用ABI 7900型熒光定量PCR儀自帶軟件SDS3.0(版本號)進行結(jié)果分析,根據(jù)陰性對照結(jié)果設(shè)定閾值線,擴增曲線及樣品Ct值由軟件自動生成。

        1.3.3 特異性檢測

        以表1中菌株的基因組DNA為試驗材料,用P.splendens的種特異性引物PyspF/PyspR及探針PyspT行實時熒光PCR檢測,并設(shè)置空白對照。

        1.3.4 靈敏度檢測

        為確定油棕猝倒病菌實時熒光PCR的檢測限度,將菌株 ATCC96757 的 DNA 稀 釋 成12、1.2、0.12、0.012、0.001 2、0.000 12、0.000 012、0.000 001 2ng/μL 8個不同濃度,分別用引物PyspF/PyspR及探針PyspT進行實時熒光PCR檢測。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 華麗腐霉的特異性檢測

        對表1所列供試菌株進行實時熒光PCR檢測結(jié)果表明,只有P.splendens的5個菌株的模板檢測到信號增加,擴增反應(yīng)呈陽性,而其他參試菌株及空白對照在40個擴增周期內(nèi)未見信號增長,擴增反應(yīng)呈陰性(圖1)。實時熒光PCR特異性良好。

        圖1 油棕猝倒病菌實時熒光PCR特異性擴增結(jié)果

        2.2 靈敏度檢測試驗

        對不同稀釋度的P.splendens DNA樣品,采用實時熒光PCR檢測,結(jié)果表明,實時熒光PCR方法對低至0.012pg/μL的DNA樣品有明顯擴增(圖2),系列稀釋的擴增曲線的Ct值在12~38之間,擴增曲線典型。方法的重復(fù)性良好。同時,DNA稀釋度與Ct值呈良好的相關(guān)性,其相關(guān)系數(shù)0.999 5,相鄰10倍稀釋度的Ct值差為3.58左右(圖3),結(jié)果可靠。

        3 討論

        一直以來,形態(tài)學(xué)分類在腐霉分類中占主要地位,近年來隨著分子生物學(xué)技術(shù)的發(fā)展,生物技術(shù)已經(jīng)逐漸成為腐霉屬菌物分類的一種重要的輔助工具,應(yīng)用于P.splendens的分子方法包括特異性引物、PCR-RFLP、核糖體DNA序列分析等。形態(tài)學(xué)鑒定有經(jīng)驗性強、耗時長等缺點;已有的分子生物學(xué)方法中特異性引物的靈敏度不高,在研究過程中我們采用 Wang等[6]設(shè)計的特異性引物對DNA濃度為12ng/μL的樣品進行檢測,結(jié)果無擴增。PCRRFLP需要PCR擴增后再進行后續(xù)檢測,耗時較長;核糖體DNA序列分析,擴增好的PCR產(chǎn)物需要送到專業(yè)公司進行測序,雖然獲得的信息量大,但是耗時更長。而實時熒光PCR檢測方法正好克服了以上的缺點,利用熒光信號的積累實時監(jiān)測整個PCR過程,具有檢測周期短、特異性與靈敏度高以及無需PCR后處理等優(yōu)點。目前,還未見P.splendens實時熒光檢測方法的報道。本研究建立的實時熒光PCR檢測方法特異性強、靈敏度高。符合口岸檢測快速、準(zhǔn)確的要求。

        [1] Aderungboye F O,Esuruoso O F.Ecological studies on Pythium splendens Braun in oil palm(Elaeis guineensis Jacq.)plantation soils[J].Plant and Soil,1976,44(2):397-406.

        [2] CMI.Descriptions of pathogenic fungi and bacteria[M].Commonwealth Mycological Institute,Kew,United Kingdom,1966,No.120.

        [3] Fu C H,Chen C M,Hsieh H J.First report of formosan michelia seedling root rot caused by Pythium splendens in Taiwan[J].Plant Disease,2005,89(12):1361.

        [4] 陳秀賢,曾會才,何漢興,等.海南腐霉新記錄種Pythium splendens的鑒定及其對油棕苗的致病性測定[J].云南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2008,23(3):321-324.

        [5] Wang P H,Wang Y T,White J G.Species-specific PCR primers for Pythiumdeveloped from ribosomal ITS1region[J].Letters in Applied Microbiology,2003,37(2):127-132.

        [6] Wang P H,White J G.Molecular characterization of Pythium species based on RFLP analysis of the internal transcribed spacer region of ribosomal DNA[J].Physiological and Molecular Plant Pathology,1997,51(2):129-143.

        [7] 陳劍山,鄭服叢.ITS序列分析在真菌分類鑒定中的應(yīng)用[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2007,35(13):3785-3786.

        [8] 易潤華,朱西儒,周而勛.簡化CTAB法快速微量提取絲狀真菌DNA[J].湛江海洋大學(xué)學(xué)報,2003,23(6):72-73.

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