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        GBEE對荷瘤小鼠 IL-2、IL-12、TNF-α及 TGF-α水平的影響①

        2012-09-12 10:54:46傅恩賜許愛華陳華圣揚州大學醫(yī)學院揚州225001
        中國免疫學雜志 2012年5期
        關(guān)鍵詞:荷瘤懸液多糖

        李 俊 傅恩賜 許愛華 陳華圣 (揚州大學醫(yī)學院,揚州225001)

        銀杏外種皮提取物(Ginkgo biloba exocarp extracts,GBEE)的主要成分是蛋白多糖,具有較好的抗腫瘤及免疫調(diào)節(jié)作用[1-3]。本文研究GBEE對荷瘤小鼠 IL-2、IL-12、TNF-α 及 TGF-α 水平的影響,以探討其可能的抗腫瘤作用機制。

        1 材料與方法

        1.1 動物及瘤株 C57BL/6J小鼠及ICR小鼠,6~7周齡,18~22克,雌雄兼用,由揚州大學比較醫(yī)學中心提供[動物生產(chǎn)許可證號:SCXK(蘇)2007-0001]。S180腫瘤細胞,由中國科學院上海細胞研究所提供。

        1.2 GBEE的制備 按發(fā)明專利方法(專利號:201010251050.9)用水煮乙醇沉淀法制備銀杏外種皮提取物(GBEE),采用高效液相色譜法對GBEE進行定性分析,提示不含單糖;采用紅外光譜分析顯示其含有糖苷鍵及多糖吸收特征峰,提示GBEE主要成分為蛋白多糖,并經(jīng)薄層層析法測得其多糖由葡萄糖、果糖、半乳糖及鼠李糖等單糖鏈接而成;采用苯酚硫酸法及考馬斯亮藍法分別檢測GBEE的多糖及蛋白含量,二者之和即為GBEE中蛋白多糖含量,經(jīng)檢測,本研究所用GBEE蛋白多糖含量為66.4%。

        1.3 主要試劑 小鼠IL-12及TNF-α定量酶聯(lián)檢測試劑盒由上海森雄科技實業(yè)有限公司提供;碘[125I]轉(zhuǎn)化生長因子 α(TGF-α)放射免疫分析藥盒由北京普爾偉業(yè)生物科技有限公司提供;新生牛血清購自杭州四季青生物工程材料公司;RPMI1640培養(yǎng)基為美國Gibco公司產(chǎn)品;四甲基偶氮唑藍(MTT)、刀豆蛋白A(ConA)及脂多糖(LPS)均為美國Sigma公司產(chǎn)品;注射用5-氟尿嘧啶(5-Fu,批號為1007042)購自上海旭東海普藥業(yè)有限公司;其余試劑均為國產(chǎn)分析純。

        1.4 造模、分組及給藥 取ICR小鼠,常規(guī)局部消毒后無菌環(huán)境下于每只小鼠的右前肢腋下方皮下注射 S180 細胞懸液0.2 ml,細胞濃度為5 ×107ml-1,建立S180移植瘤模型,接種24小時后將小鼠隨機分為模型對照組、陽性對照組以及GBEE治療組,另設(shè)不接種腫瘤的正常對照組,每組小鼠皆為10只。正常對照組及模型對照組灌胃(ig)生理鹽水(NS);陽性對照組ig 5-Fu 25 mg/(kg·d);治療組分別ig GBEE 50、100 和200 mg/(kg·d)。皆每日1 次,連續(xù)給藥16天。第17天進行各項指標檢測。

        1.5 腫瘤抑制率的計算 放血處死小鼠,剝?nèi)×鰤K并稱重,按以下公式計算腫瘤抑制率。抑瘤率(%)=(模型組平均瘤重-給藥組平均瘤重)/模型組平均瘤重×100%。

        1.6 細胞因子檢測

        1.6.1 TNF-α含量的檢測 小鼠摘眼球取血,分離血清,采用雙抗體夾心ABC-ELISA法測定血清TNF-α含量,參考說明書步驟操作,于492 nm處檢測吸光度值,根據(jù)標準曲線計算樣品中TNF-α含量。

        1.6.2 IL-12活性的檢測 放血處死小鼠,于無菌條件下取出脾臟,常規(guī)方法制備脾細胞懸液,溶解紅細胞后用Hanks液洗滌,再用含5%小牛血清的RPMI1640培養(yǎng)液調(diào)整細胞數(shù)為1×107ml-1。分別取1 ml脾細胞懸液加入24孔培養(yǎng)板中,再加入適量LPS(終濃度為5 mg/L),將培養(yǎng)板置于37℃,含5%CO2的孵箱中培養(yǎng)24小時,收集上清,采用雙抗體夾心ABC-ELISA法測定上清中IL-12含量,參考說明書步驟操作,于492 nm處檢測吸光度值,根據(jù)標準曲線計算樣品中IL-12含量。

        1.6.3 IL-2活性的檢測 荷瘤小鼠脾細胞懸液制備及培養(yǎng)方法同1.6.2,在脾細胞懸液中加入Con A(終濃度為5 mg/L),培養(yǎng)24小時后收集上清,即IL-2粗制品,置于 -20℃保存,待測活性。取C57BL/6J小鼠6只,按前述方法制備脾細胞懸液、計數(shù)并調(diào)整細胞濃度。分別取100 μl脾細胞懸液加入96孔培養(yǎng)板中,將待測IL-2按1∶4稀釋后分別取100 μl加入培養(yǎng)板中,再加入亞適量ConA(終濃度為2.5 mg/L),常規(guī)培養(yǎng)44小時后加入MTT,繼續(xù)培養(yǎng)4小時后取出并加入異丙醇,于492 nm處檢測OD值,其OD值高低與IL-2活性成正相關(guān)。

        1.7 TGF-α含量的檢測 取血及分離血清方法同前,按照檢測試劑盒說明書采用放射免疫分析法測定血清TGF-α的含量。由自動γ計數(shù)器預先編制程序,直接給出有關(guān)參數(shù)、標準曲線及樣品中TGF-α濃度。

        1.8 統(tǒng)計學分析 采用SPSS15.0統(tǒng)計軟件分析。計量資料用x±s表示,組間比較采用 F檢驗及Dunnett-t檢驗進行統(tǒng)計學處理。

        2 結(jié)果

        2.1 GBEE對S180移植瘤抑瘤率的影響 結(jié)果顯示,GBEE 3個劑量組均可顯著抑制小鼠S180移植瘤的生長,與模型組、對照組比較具有極顯著性差異(表1)。

        2.2 GBEE對荷瘤小鼠血清 TNF-α含量的影響 結(jié)果顯示,模型對照組小鼠血清TNF-α含量明顯低于正常對照組;GBEE 100、200 mg/(kg·d)兩個劑量組均可提高荷瘤小鼠血清TNF-α含量,與模型組比較具有顯著性差異(表2)。

        表1 GBEE對S180移植瘤抑瘤率的影響(n=10,x±s)Tab.1 Influence of GBEE on S180 transplantable tumor inhibitory rate(n=10,x±s)

        表2 GBEE對荷瘤小鼠血清TNF-α含量的影響(n=6,x±s)Tab.2 Influence of GBEE on serum content of TNF-α in tumor bearing mice(n=6,x±s)

        表3 GBEE對荷瘤小鼠脾淋巴細胞IL-12含量和IL-2活性的影響(n=6,x±s)Tab.3 Influence of GBEE on serum content of IL-12 and activity of IL-2 from splenic lymphocytes in tumor bearing mice(n=6,x±s)

        表4 GBEE對荷瘤小鼠血清TGF-α含量的影響(n=6,x±s)Tab.4 Influence of GBEE on serum contents of TGF-α in tumor bearing mice(n=6,x±s)

        2.3 GBEE對荷瘤小鼠脾細胞IL-12含量和IL-2活性的影響 結(jié)果顯示,模型對照組小鼠脾細胞分泌IL-12顯著減少,T淋巴細胞IL-2活性也明顯受抑制,GBEE 3個治療組皆可明顯促進荷瘤小鼠脾細胞分泌IL-12,并增強荷瘤小鼠脾臟T淋巴細胞IL-2活性,皆具有統(tǒng)計學意義(表3)。

        2.4 GBEE對荷瘤小鼠血清 TGF-α含量的影響 結(jié)果顯示,模型對照組小鼠血清TGF-α含量明顯升高,與正常對照組比較具有極顯著性差異;GBEE 3個劑量組均可顯著降低荷瘤小鼠血清中TGF-α的含量(表4)。

        3 討論

        TGF-α是一類多肽生長因子,可在多種腫瘤細胞中過度表達[4],TGF-α與 EGFR結(jié)合可促進腫瘤細胞增殖,而過度增殖的腫瘤細胞又可分泌更多的TGF-α,使腫瘤細胞無限增殖、快速生長而不受機體控制。本研究結(jié)果顯示GBEE對S180移植性肉瘤的生長具有顯著抑制作用,在50~200 mg/(kg·d)劑量范圍內(nèi),其抑制率與劑量呈現(xiàn)正相關(guān)關(guān)系,在200 mg/(kg·d)劑量時其抑制率可達38.36%,與對照組比較具有統(tǒng)計學意義。GBEE在發(fā)揮抗腫瘤作用的同時可明顯降低荷瘤小鼠血清TGF-α水平,提示其抗腫瘤作用機制與其抑制癌細胞中TGF-α的高表達具有一定相關(guān)性。

        調(diào)節(jié)機體的免疫防御功能是腫瘤預防及綜合治療的重要環(huán)節(jié)。在機體抗腫瘤免疫防御中,T淋巴細胞介導的細胞免疫占有重要地位。T淋巴細胞產(chǎn)生的IL-2可刺激T細胞分化為細胞毒性T細胞,并增強其對腫瘤細胞的細胞毒性,還能刺激單核細胞殺傷腫瘤細胞[5]。淋巴因子IL-12,又稱自然殺傷細胞刺激因子,既可增強NK細胞活性,也可通過增強細胞毒性T細胞以及IFN-γ分泌性T細胞的功能而抑制腫瘤生長[6]。本研究結(jié)果顯示,GBEE三個給藥組脾細胞IL-2及IL-12誘生水平明顯高于荷瘤對照組,提示GBEE可通過改善荷瘤小鼠的免疫失衡狀態(tài)而提高機體的抗腫瘤能力。

        TNF-α主要由單核-巨噬細胞產(chǎn)生,是一種能夠直接殺傷腫瘤細胞而對正常細胞無明顯毒性的細胞因子,是迄今為止所發(fā)現(xiàn)的直接殺傷腫瘤作用最強的生物活性因子之一。同時,TNF-α也可通過抑制腫瘤血管生成等間接途徑影響腫瘤細胞生長,還可誘導多種腫瘤細胞凋亡[7]。本研究結(jié)果顯示,GBEE中、高劑量灌胃給藥可明顯提高荷瘤小鼠血清中TNF-α含量,這對防癌、抗癌以及抗腫瘤轉(zhuǎn)移皆具有重要意義。

        1 許愛華,陳華圣,孫步蟾.銀杏外種皮多糖對HL-60細胞的體外實驗研究[J].中藥材,2004;27(5):361-362.

        2 陳華圣,許愛華,王 翊 et al.銀杏外種皮多糖對免疫功能低下小鼠IL-2活性及sIL-2R的影響[J].中藥藥理與臨床,2001;17(4):17-18.

        3 吳 倩,許愛華,楊 茜 et al.銀杏外種皮提取物有效部位GBEE-2對胃癌SGC-7901細胞凋亡及其通路的影響[J].中藥新藥與臨床藥理,2011;22(3):270-273.

        4 Keiji Kikuchi,Xiaohan Li,Yang Zheng et al.Invasion of breast cancer cells into collagen matrix requires TGF-α and Cdc42 signaling[J].FEBS Letters,2011;585(2):286-290.

        5 湯釗猷.現(xiàn)代腫瘤學[M].上海:上海醫(yī)科大學出版社,2000:293-294.

        6 Kiyokazu Kawabe,Daniel Lindsay,Manjit Braitch et al.IL-12 inhibits glucocorticoid-induced T cell apoptosis by inducing GMEB1 and activating PI3K/Akt pathway[J].Immunobiology,2011;6:1-6.

        7 Kruglov A A,Kuchmiy A,Grivennikov S I et al.Physiological functions of tumor necrosis factor and the consequences of its pathologic overexpression or blockade:Mouse models[J].Cytokine & Growth Factor Reviews,2008;19:231-244.

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