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        96-II喜樹葉片高頻率植株再生體系建立1)

        2012-08-09 11:08:42董鳳麗祖元剛王慧梅
        關(guān)鍵詞:生長素生根分化

        董鳳麗 祖元剛 王慧梅

        (黑龍江生態(tài)工程職業(yè)學(xué)院,哈爾濱,150025) (森林植物生態(tài)學(xué)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室(東北林業(yè)大學(xué)))

        喜樹(Camptotheca acuminata Decne.)為我國特有樹種,廣泛分布于長江流域及南方各省區(qū)。其生長速度快、冠形完美,材質(zhì)優(yōu)良,是良好的用材樹種及園林綠化樹種。該樹種因體內(nèi)含有抗癌和抗逆轉(zhuǎn)錄病毒的生物堿:喜樹堿、10-羥基喜樹堿等而聞名,深受植物學(xué)界和醫(yī)藥學(xué)界的青睞。臨床上用于治療肝癌、胃癌、腸癌、膀胱癌卵巢癌、食道癌、早期白血病等,其療效顯著。但是由于喜樹堿在植物組織中含量低、尤其是在成熟的喜樹葉片中含量急劇下降[1],且目前野生狀態(tài)下喜樹資源不穩(wěn)定,隨著市場上喜樹堿需求量的增加,生產(chǎn)上消耗的喜樹也越來越多。因此開發(fā)優(yōu)良品種、擴(kuò)大栽種面積已勢在必行。

        到目前為止,對喜樹的研究多集中在苗木的生長狀況,喜樹堿的藥理作用及合成,細(xì)胞懸浮培養(yǎng)獲得喜樹堿等方面,對喜樹的組織培養(yǎng)方面研究報道還很少。目前有關(guān)于利用喜樹的莖段[2-4]、莖尖[5-6]、種胚[7]等作為外植體建立再生體系的報道,而葉片的再生僅有一例報道[8]。

        東北林業(yè)大學(xué)森林植物生態(tài)學(xué)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室在1996年從美國引入喜樹新品種——96-II,并在我國南方栽種后達(dá)到引種目的。本研究從96-II喜樹離體培養(yǎng)入手,探討離體葉片再生條件,旨在建立高頻率葉片再生體系,為今后加速96-II喜樹的人工繁殖、藥用林培育及遺傳轉(zhuǎn)化提供一條新途徑。

        1 材料與方法

        植物材料為96-II喜樹無菌苗葉片。培養(yǎng)溫度為22~25℃,光/暗周期16/8 h,光照強(qiáng)度1 000~1 500 lx。繼代周期為30 d。

        96-II喜樹無菌苗的獲得:剪取3 a生96-II喜樹新生、未木質(zhì)化的莖段,每段含有1個側(cè)芽,用洗滌劑漂洗30 min,再經(jīng)流水沖洗1 h后,于超凈工作臺內(nèi),將莖段在70%的乙醇中浸泡30 s,再用3%次氯酸鈉消毒5 min,期間不斷搖動,然后用無菌水漂洗3~5遍,用無菌濾紙吸干,接種在WPM+6-BA1.0 mg/L培養(yǎng)基中,置于培養(yǎng)室培養(yǎng)。25 d后,切取莖段葉腋處長出的新枝,接入繼代培養(yǎng)基中進(jìn)行擴(kuò)繁。

        葉片愈傷組織誘導(dǎo)及分化培養(yǎng)基篩選:以WPM、MS和B5為基本培養(yǎng)基,將無菌苗葉片切成1.0 cm×1.0 cm大小,分別接種于附加不同質(zhì)量濃度的6-BA、NAA和2,4-D培養(yǎng)基上,蔗糖3%,瓊脂0.7%,調(diào)節(jié)pH值5.9左右。每個組合重復(fù)處理3次,每次處理10葉片,30 d后將愈傷組織轉(zhuǎn)入分化培養(yǎng)基,誘導(dǎo)不定芽分化。根據(jù)愈傷組織誘導(dǎo)率和不定芽誘導(dǎo)率大小確定最適培養(yǎng)基。

        愈傷組織誘導(dǎo)率=(誘導(dǎo)出愈傷組織的外植體個數(shù)/接種外植體的總數(shù))×100%;

        芽誘導(dǎo)率=(誘導(dǎo)出芽的外植體個數(shù)/接種外植體總數(shù))×100%。

        生根培養(yǎng)基篩選:切取96-II喜樹誘導(dǎo)出的1.5 cm以上的不定芽,接入附加不同質(zhì)量濃度NAA及IBA的WPM生根培養(yǎng)基上,置于培養(yǎng)室內(nèi)進(jìn)行根的誘導(dǎo)。每個處理10個不定芽,3次重復(fù)。30 d后統(tǒng)計不定芽的生根情況,計算生根率,篩選出96-II喜樹根誘導(dǎo)最適培養(yǎng)基。

        生根率=(生根幼芽個數(shù)/接種幼芽總數(shù))×100%。

        煉苗移栽:將煉苗3~5 d后的組培苗,移栽到消毒處理過的泥炭土和細(xì)沙混合的基質(zhì)中(V(泥炭土)∶V(細(xì)沙)=1∶1),30 d后統(tǒng)計成活率。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 96-II喜樹葉片愈傷組織及芽誘導(dǎo)

        2.1.1 不同培養(yǎng)基對葉片愈傷組織誘導(dǎo)效果的影響

        應(yīng)用WPM、MS和B53種基本培養(yǎng)基,并用6-BA1.0 mg/L+NAA0.5 mg/L激素組合進(jìn)行誘導(dǎo)愈傷組織效果比較,結(jié)果見表1和圖1。研究表明,葉片培養(yǎng)在MS培養(yǎng)基上,生長受到抑制,不能利用培養(yǎng)基中的營養(yǎng)成分,逐漸死亡。MS培養(yǎng)基中鹽質(zhì)量濃度高,96-II喜樹的葉片不能吸收利用,反而被毒害致死。即使能夠存活,葉片也干枯,生長明顯受到抑制。WPM培養(yǎng)基上葉片愈傷組織誘導(dǎo)率(97.6%)明顯高于在B5培養(yǎng)基(56.9%)。愈傷組織體積大,結(jié)構(gòu)致密,分化率高。由此,確定WPM為誘導(dǎo)葉片愈傷組織的最佳基本培養(yǎng)基。

        表1 3種培養(yǎng)基對葉片愈傷組織誘導(dǎo)的效果

        圖1 不同培養(yǎng)基對葉片愈傷組織的誘導(dǎo)效果

        2.1.2 不同激素組合對96-II喜樹葉片愈傷組織誘導(dǎo)和分化的影響

        從表2可以看出,只有細(xì)胞分裂素與生長素同時使用時,葉片才能被誘導(dǎo)脫分化形成愈傷組織,但只有二者達(dá)到適合比例時所形成的愈傷組織才具有再分化出不定芽的能力。單獨(dú)施加6-BA時對96-II喜樹葉片誘導(dǎo)愈傷組織不起作用,只有同時加入生長素后才能誘導(dǎo)形成愈傷組織。加入NAA、2,4-D都能很好誘導(dǎo)形成愈傷組織,但2,4-D與6-BA組合時,無論2,4-D質(zhì)量濃度高低,愈傷組織誘導(dǎo)率都很高,長勢快,但所形成的愈傷組織為白色,質(zhì)地疏松,20 d后所形成的愈傷組織完全覆蓋了整個葉片,隨著培養(yǎng)時間的延長,愈傷組織表面會由白色轉(zhuǎn)為紅色,所形成的愈傷組織都不能分化出芽(圖2)。說明2,4-D作用較強(qiáng),使愈傷組織一直保持脫分化狀態(tài),很能轉(zhuǎn)入分化狀態(tài)。

        當(dāng)NAA與6-BA組合時,愈傷組織誘導(dǎo)率與二者的質(zhì)量濃度都相關(guān),且所形成的愈傷組織,綠色,結(jié)構(gòu)致密,幾乎都能分化出芽。當(dāng)6-BA質(zhì)量濃度不變時,愈傷組織誘導(dǎo)率隨著NAA質(zhì)量濃度升高而升高,愈傷組織的大小與NAA質(zhì)量濃度也成正比。但是6-BA的質(zhì)量濃度不與愈傷組織的體積成正比,6-BA為1.0 mg/L時愈傷組織形成明顯好于6-BA0.5 mg/L時,但是當(dāng)質(zhì)量濃度達(dá)到1.5 mg/L時,愈傷組織形成受到了抑制,形成較晚,且體積小。這是因?yàn)檫@種生長素與細(xì)胞分裂素的配比,不適合96-II喜樹葉片誘導(dǎo)愈傷組織。當(dāng)NAA質(zhì)量濃度達(dá)到0.5 mg/L時,所誘導(dǎo)的愈傷組織形成早,長勢好,體積大,所以認(rèn)為6-BA1.0 mg/L+NAA0.5 mg/L 的組合好于其它組合。

        當(dāng)6-BA、NAA和2,4-D3種激素同時使用時,愈傷組織形成明顯快于其它激素的組合。但是當(dāng)2,4-D質(zhì)量濃度增高時愈傷組織呈現(xiàn)白色,分化率降低。當(dāng)2,4-D質(zhì)量濃度為0.1 mg/L時,誘導(dǎo)愈傷組織快,體積大,芽分化率很高。所以認(rèn)為誘導(dǎo)葉片愈傷組織的最好的激素組合為6-BA1.0 mg/L+NAA0.5 mg/L+2,4-D0.1 mg/L。

        表2 不同激素組合對葉片愈傷組織誘導(dǎo)和分化效果的影響

        圖2 不同的激素組合誘導(dǎo)的96-II喜樹葉片的愈傷組織

        2.1.3 激素6-BA對愈傷組織分化的影響

        在研究中發(fā)現(xiàn),愈傷組織在含有細(xì)胞分裂素濃度過高而生長素質(zhì)量濃度過低的培養(yǎng)基上誘導(dǎo)分化,會形成過于細(xì)密的嫩芽,雖然提高了增值速度,但苗多而弱,降低了芽的質(zhì)量,不適宜作為生根或移栽用苗,甚至還會出現(xiàn)抑制分化的情況。只有轉(zhuǎn)入沒有生長素,低水平的細(xì)胞分裂素的培養(yǎng)基上,才能分化,抽枝、展葉,形成叢生芽。將愈傷組織轉(zhuǎn)入含有不同質(zhì)量濃度6-BA的培養(yǎng)基上,愈傷組織分化的情況見表3。當(dāng)6-BA為0.2 mg/L時,苗健壯,但是分化率低;當(dāng)6-BA0.8 mg/L時愈傷組織分化率高,但是芽的狀態(tài)弱小,不利于生根等其他用途;在6-BA1.0 mg/L時愈傷組織分化受到抑制,分化率低且芽弱小;當(dāng)6-BA0.5 mg/L時,愈傷組織分化率高,且苗健壯。所以,確定6-BA為0.5 mg/L是誘導(dǎo)96-II喜樹愈傷組織分化最適合的激素質(zhì)量濃度。

        表3 不同6-BA質(zhì)量濃度對愈傷組織分化及不定枝增值的影響

        圖3 愈傷組織分化的再生苗

        2.2 96-II喜樹根誘導(dǎo)

        生長素對不定根的形成起關(guān)鍵性作用。在無激素的條件下,再生苗也能生根,但是生根率很低,只有33.3%,而且根的平均數(shù)量為2條。加入生長素后,生根狀況都有了改善。IBA和NAA在高質(zhì)量濃度時都能很好的誘導(dǎo)生根,從表4可以看出生根率和平均生根數(shù)都分別隨兩種激素質(zhì)量濃度的增加而增長。而且生根的質(zhì)量也和兩種激素的質(zhì)量濃度成正比。但從圖4中可以看出二者的生根效果不同,IBA誘導(dǎo)的根細(xì)長,均勻;NAA誘導(dǎo)的根粗壯,但生根較晚。IBA誘導(dǎo)生根的苗,在其基部直接生出根,莖中的維管組織與根中的維管組織直接相連,移栽后容易成活;NAA誘導(dǎo)生根的苗開始在莖的基部形成愈傷組織,然后在所形成的愈傷組織上生出粗壯的根。隨著NAA質(zhì)量濃度的增高所形成的愈傷組織也增大,且根形成變晚。說明NAA先誘導(dǎo)莖基部脫分化,然后誘導(dǎo)愈傷組織分化生成根,這樣形成的根與莖之間并無維管組織的直接聯(lián)系,以致移栽后不能成活。從圖4看出,試管苗在IBA的誘導(dǎo)下植株生長正常,而在NAA的誘導(dǎo)下植株不生長,且葉片下垂。隨著NAA的質(zhì)量濃度的增加,這種現(xiàn)象越明顯,說明NAA抑制了植株的生長。由此,可以確定最佳的生根的激素為IBA,質(zhì)量濃度為0.8 mg/L。

        表4 不同的激素種類及質(zhì)量濃度對生根的影響

        圖4 不同激素對生根誘導(dǎo)的影響

        2.3 96-II喜樹煉苗和移栽

        將組培苗根長為1~2 cm時,去掉封口膜,在陽光充足的溫室內(nèi),煉苗3~5 d,用自來水洗凈根部培養(yǎng)基,移栽到經(jīng)消毒處理的混合的基質(zhì)中(V(泥炭土)∶V(細(xì)沙)=1∶1),在培養(yǎng)期間使用塑料膜小拱棚保溫、保濕。30 d后調(diào)查,96-II喜樹組培苗成活率為95%以上(圖5、6)。

        圖5 生根的96-II喜樹再生苗

        圖6 移栽的96-II喜樹組培苗

        3 討論

        本試驗(yàn)通過對96-II喜樹無菌苗葉片離體培養(yǎng),研究了不同基本培養(yǎng)基和不同質(zhì)量濃度的激素配合使用對96-II喜樹葉片愈傷組織誘導(dǎo)途徑再生的條件。結(jié)果表明96-II喜樹愈傷組織誘導(dǎo)需要生長素與細(xì)胞分裂素配合使用,單獨(dú)使用6-BA不能誘導(dǎo)愈傷組織。2,4-D與6-BA配合對于誘導(dǎo)愈傷組織作用明顯,愈傷組織形成早,速度快,但所誘導(dǎo)的愈傷組織不具有分化能力。NAA與6-BA配合,隨著NAA質(zhì)量濃度增加,愈傷組織誘導(dǎo)率明顯提高,且具有很高的分化潛力,但愈傷組織形成速度稍慢,所以配合低質(zhì)量濃度的2,4-D能提高愈傷組織誘導(dǎo)速率,但2,4-D質(zhì)量濃度過高,影響愈傷組織分化。所以篩選3種激素之間的質(zhì)量濃度比例是很重要的。組培苗移栽前,必須經(jīng)過外界環(huán)境馴化或鍛煉,才能適應(yīng)外界的溫度、濕度和強(qiáng)烈的自然光照。所以在移栽前要先去掉封口膜,在陽光充足的溫室內(nèi),鍛煉小苗3~5 d,有利于提高組培苗移栽成活率。其間可適當(dāng)增加光照強(qiáng)度,以提高小苗的木質(zhì)化程度。

        [1]張玉紅,王洋,閻秀峰.喜樹種子萌發(fā)和幼苗過程中喜樹堿含量的變化[J].植物生理學(xué)通訊,2002,38(6):575-577.

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        [4]Liu Z,Li Z.Micropropagation of camptotheca acuminata decaisne from axillary buds,shoot tips,and seed embryos in a tissue culture system[J].Vitro Cell Dev Biol Plant,2001,37:84-88.

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