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        犬γ干擾素多克隆抗體的制備及生物活性檢測

        2012-08-08 12:23:34李一經(jīng)唐麗杰葛俊偉喬薪瑗姜艷平

        李一經(jīng),吳 昱,唐麗杰,葛俊偉,喬薪瑗,崔 文,姜艷平

        (東北農(nóng)業(yè)大學(xué)動物醫(yī)學(xué)學(xué)院,哈爾濱 150030)

        IFN-γ為II型干擾素或免疫干擾素,主要由活化T淋巴細胞和NK細胞產(chǎn)生,是一種具有廣譜抗病毒、抗腫瘤和免疫調(diào)節(jié)功能的分泌性蛋白,相對于IFN-α和IFN-β,IFN-γ相關(guān)研究較少。Hiummler等率先開始犬IFN-α基因的研究[1],隨后Devos等克隆了犬IFN-γ基因[2],夏春、汪明等也克隆過德國牧羊犬和拉布拉多犬IFN-α基因序列[3]。2002年楊琪等克隆了犬IFN-γ cDNA并在鼠骨髓瘤細胞(SP20)中進行了表達[4]。IFN-γ具有抑制病毒復(fù)制、抑制細胞分裂以及免疫調(diào)節(jié)作用[5]。主要表現(xiàn)在:①促進MHCI類及II類抗原的加工提呈,提升CD4+T細胞的肽特異性活性[6-7]。②介導(dǎo)T細胞對巨噬細胞的激活,增強巨噬細胞殺傷微生物的能力。③活化NK細胞,提高NK細胞的殺傷活性,同時活化的NK細胞也能分泌IFN-γ。④促進NO的合成,是IFN-γ殺傷胞內(nèi)病原體、抗腫瘤以及抑制病毒復(fù)制的分子機制之一[8]。

        本研究構(gòu)建了含有CaIFN-γ基因原核表達載體,并實現(xiàn)高效表達;進一步對復(fù)性后的包涵體進行干擾素抗病毒活性檢測;并將切膠純化后的包涵體免疫家兔,制備兔抗犬IFN-γ的多克隆抗血清,為開發(fā)新型基因工程苗、新型免疫佐劑及免疫治療劑奠定基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        大腸桿菌DH5α,E.coliRosetta,MDCK細胞,原核表達載體pET30a由東北農(nóng)業(yè)大學(xué)預(yù)防獸醫(yī)學(xué)微生物教研室保存,重組pJLA605-CaIFN-γ質(zhì)粒由東北農(nóng)業(yè)大學(xué)預(yù)防獸醫(yī)學(xué)微生物教研室構(gòu)建并經(jīng)序列鑒定;水皰性口炎病毒(Vesicular stomatitis virus,VSV)為哈爾濱獸醫(yī)研究所惠贈;IPTG(購自TaKaRa公司);弗氏完全佐劑和弗氏不完全佐劑(購自Sigma公司);限制性內(nèi)切酶SalI、EcoR I及DNA Marker、T4DNA ligase、Taq酶(購自寶生物工程(大連)有限責(zé)任公司);小量質(zhì)粒DNA提取試劑盒與小量膠回收試劑盒均購自中科瑞泰生物有限公司;MTT購自Fluka公司,其他試劑均為國產(chǎn)分析純。實驗動物為2月齡家兔(購自哈爾濱獸醫(yī)研究所實驗動物中心)。

        1.2 方法

        1.2.1 引物設(shè)計合成

        根據(jù)2005年張海峰[9]發(fā)表的CaIFN-γ基因序列設(shè)計引物用于重組載體的構(gòu)建。P1:5'AGATCTTTCTTTAAAGAAATTG 3',P2:5'GTCGA CTCACTATTTACTTGCTCTA 3'。

        1.2.2 CaIFN-γ原核表達載體的構(gòu)建及工程菌的誘導(dǎo)表達

        pJLA605-CaIFNγ質(zhì)粒和pET30a載體經(jīng)EcoR I、SalI雙酶切,通過瓊脂糖凝膠電泳得到的酶切產(chǎn)物在T4DNA連接酶作用下16℃連接過夜,轉(zhuǎn)化到DH5a感受態(tài)中,挑菌落過夜培養(yǎng)后提取質(zhì)粒,雙酶切與PCR鑒定[10]。陽性重組質(zhì)粒命名為pET30a-caIFNγ。將陽性質(zhì)粒熱轉(zhuǎn)到E.coliRosetta感受態(tài)中,挑陽性克隆菌于含卡那霉素(30 μg·mL-1)的LB培養(yǎng)液,37℃過夜振蕩培養(yǎng)后,將菌液按1:50接種于含有卡那霉素的 100 mL錐形瓶中,37℃培養(yǎng)至OD600約為0.4,加入IPTG至終濃度為2 mmol·L-1,繼續(xù)誘導(dǎo)培養(yǎng)并每小時取樣。

        1.2.3 表達產(chǎn)物的SDS-PAGE分析和Western-blot鑒定

        將IPTG誘導(dǎo)前和誘導(dǎo)后每小時的1 mL菌液12 000 r·min-1離心1 min,棄上清,加入50 μL PBS和等量2 x SDS(含DTT),煮沸10 min,取10 μL經(jīng)15%SDS-PAGE分析。將表達量最大的誘導(dǎo)菌液的上清和沉淀分別處理,確定蛋白表達形式。用半干轉(zhuǎn)印儀經(jīng)50 mA、40 min轉(zhuǎn)印到硝酸纖維素(NC)膜上,再將NC膜在PBS配制的5%脫脂乳中封閉2 h,以1:1 000稀釋的his單抗室溫作用2 h,DAB顯色。

        1.2.4 目的蛋白的復(fù)性

        誘導(dǎo)的菌液,通過尿素梯度法進行包涵體粗提,采用切膠純化反復(fù)凍融的方法得到包涵體[11],分5次加入到pH為8.0,0.5 mmol·L-1精氨酸復(fù)性液中,使蛋白終濃度為0.15 mg·mL-1,4℃作用24 h,然后將復(fù)性液放入透析袋中,浸入pH 7.2,0.15 mmol·L-1PBS中充分透析,用PEG6000濃縮至1/10體積,然后以0.22 μm的濾膜進行過濾除菌,用于細胞檢測蛋白的生物活性[12]。

        1.2.5 抗病毒活性檢測

        在96孔板上長滿單層的MDCK細胞中,加入以培養(yǎng)基進行2倍倍比稀釋的重組干擾素復(fù)性蛋白作用24 h(蛋白初始濃度為1.5 mg·mL-1,每個梯度做4個平行孔,共8個梯度),棄液,加入100 TCID50的VSV作用24~30 h,同時做細胞和病毒對照組,當(dāng)細胞病毒組80%~90%病變時,進行結(jié)晶紫染色。通過細胞病變抑制法對重組干擾素抗病毒活性進行分析[12]。

        1.2.6 多克隆抗血清的制備

        取切膠純化濃度為2 mg·mL-1的重組蛋白1 mL加入1 mL弗氏完全佐劑,充分乳化后,頸部背部皮下多點注射2月齡家兔。首免后14和28 d分別用純化蛋白1 mL加入弗氏不完全佐劑,進行加強免疫,于末次免疫后10 d,采血并分離血清。用間接ELISA方法測定抗體水平[13]。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 重組表達質(zhì)粒的鑒定

        重組質(zhì)粒pET30a-caIFNγ經(jīng)EcoR I、SalI單、雙酶切和PCR鑒定。0.8%瓊脂糖凝膠電泳顯示,雙酶切和PCR檢測的插入片段長約440 bp,與預(yù)期結(jié)果相符。表明成功將編碼CaIFN-γ成熟蛋白的基因正確插入到原核表達載體的目的位點(見圖1)。

        圖1 重組質(zhì)粒pET30a-caIFNγ的酶切和PCR鑒定Fig.1 Enzyme digestion and PCR identification of recombinant plasmid of pET30a-caIFNγ

        2.2 融合蛋白的表達、鑒定

        15%SDS-PAGE分析表明,與誘導(dǎo)前比較,每小時誘導(dǎo)樣品均有一條明顯的蛋白帶,該蛋白的相對分子質(zhì)量約為23 ku,并且在誘導(dǎo)后5 h重組蛋白表達量達到最大,重組蛋白約占菌體總蛋白含量的63%。見圖2。

        將第5 h誘導(dǎo)的菌體沉淀進行超聲處理,分別進行上清和沉淀的SDS-PAGE分析表明,蛋白主要以包涵體的形式存在,見圖3。Western Blot檢測可見重組蛋白與抗His標(biāo)簽的單抗發(fā)生特異性反應(yīng),結(jié)果表明重組的犬γ干擾素蛋白在大腸桿菌中獲得了表達。見圖4。

        圖2 重組菌pET30a-CaIFN-γ/Rosetta不同時間的蛋白表達Fig.2 Expression of recombinant strains pET30a-CaIFN-γ/Rosetta in different Time

        圖3 重組蛋白CaIFN-γ的表達形式分析Fig.3 Expression of the inclusion body of recombinant protein CaIFN-γ

        圖4 重組蛋白CaIFN-γ的Western-blot分析Fig.4 Western blot analysis of recombinant protein CaIFN-γ

        2.3 重組蛋白CaIFN-γ的純化與復(fù)性

        結(jié)果見圖5。

        由圖5可知,經(jīng)尿素梯度法粗提的包涵體,進行切膠反復(fù)凍融之后濃縮平衡得到純度較高的目的蛋白。復(fù)性后,在約23 ku處有條清晰的重組CaIFN-γ目的蛋白帶。

        圖5 重組CaIFN-γ蛋白的切膠純化和復(fù)性后的SDS-PAGE分析Fig.5 SDS-PAGE analysis of recombinant protein CaIFN-γ by gel isolation and renaturation

        2.4 重組CaIFN-γ蛋白復(fù)性后活性檢測

        2倍倍比稀釋的重組CaIFN-γ蛋白作用于MDCK細胞,在2-4稀釋度(蛋白終濃度為0.09 mg·mL-1)于24 h之內(nèi)對接種VSV病毒的MDCK細胞有完全保護作用,見圖6。超過24 h后有不同程度的細胞病變產(chǎn)生。通過細胞病變抑制法結(jié)果顯示犬γ干擾素的抗病毒比活性為5.71×105U·mg-1。

        圖6 重組CaIFN-γ對100TCID50VSV增殖24 h后的抑制作用Fig.6 Inhibition effect for the recombinant CaIFN-γ on replication of VSV after 24 h

        2.5 多抗血清效價間接ELISA結(jié)果

        以純化后濃度為1.25 μg·mL-1的重組蛋白包被ELISA反應(yīng)板,每孔100 μL,于4℃包被過夜,用1×PBS稀釋的5%脫脂乳于室溫封閉2 h,將待檢血清以2倍倍比稀釋后加入反應(yīng)板室溫作用2 h,對照采用未免疫健康兔血清并倍比稀釋,二抗1:5 000室溫作用2 h,計算結(jié)果。最后測定血清效價為1:12 800。

        圖7 血清抗體效價測定結(jié)果Fig.7 Titrations of the antiserum prepared from immunized rabbit by ELISA coated with recombinant protein CaIFN-γ

        3 討論與結(jié)論

        干擾素因干擾病毒復(fù)制而得名,大量研究表明,干擾素除抗病毒外,還具有重要的免疫調(diào)節(jié)作用[14]。干擾素的抗病毒作用是間接地通過自分泌或旁分泌途徑,與細胞膜上的相應(yīng)受體結(jié)合后,活化多條細胞信號傳導(dǎo)通路上的蛋白分子來調(diào)節(jié)細胞的生長、分化,產(chǎn)生抗病毒效應(yīng)及免疫反應(yīng)等效應(yīng)[15]。

        本試驗用前期獲得的犬γ干擾素基因與pET30a原核表達載體成功構(gòu)建重組質(zhì)粒,經(jīng)鑒定正確后,熱轉(zhuǎn)于大腸桿菌表達菌Rosetta中進行高效表達。通過對SDS-PAGE的分析表明,誘導(dǎo)5 h后,蛋白表達量達到峰值,同時上清和菌體的分別處理進一步確定蛋白以包涵體表達為主,這與大腸桿菌的結(jié)構(gòu)及強啟動子表達系統(tǒng)有關(guān)。一定程度上,利于蛋白的純化,防止被蛋白酶降解。

        雖然大腸桿菌表達的γIFN沒有糖基化修飾,但研究表明仍具有生物活性[16]。各種動物IFNγ的氨基酸同源性不同,但其基本的空間結(jié)構(gòu)類似。IFN的生物學(xué)效應(yīng)具有高度的種屬特異性,即人IFN對動物沒有生物學(xué)活性,反之亦然[17]。本試驗中,將復(fù)性后的蛋白進行生物活性檢測發(fā)現(xiàn),2-4倍稀釋的蛋白在24 h內(nèi)對細胞有較好的保護作用,但隨著時間變化,病毒的繁殖,24 h后會有不同程度的病變。而2-1,2-2,2-3稀釋度蛋白有一定的毒性作用,未接種病毒時,對細胞已經(jīng)造成損傷,這可能與加入目的蛋白濃度過高,大腸桿菌內(nèi)毒素以及細胞營養(yǎng)成分不充分有關(guān)。而2-5,2-6,2-7,2-8會有不同程度的細胞病變,這可能跟目的蛋白稀釋后濃度過低,抗病毒作用減弱有關(guān)。

        與昂貴而繁瑣的鎳柱純化相比,本試驗采用反復(fù)凍融切膠純化法純化蛋白,此方法適用于包涵體形式的高表達量蛋白純化,操作方便,試驗周期短,價格低廉,應(yīng)用范圍廣。而且采用KCl染色,不影響蛋白抗原性及后續(xù)純化。

        本研究獲得的具有體外抗病毒活性的重組γ干擾素蛋白和抗γ干擾素蛋白的多克隆抗體,為γ干擾素的深入研究和在生產(chǎn)應(yīng)用奠定基礎(chǔ)。

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