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        郫縣豆瓣高酶活米曲霉選育鑒定及復(fù)合菌制曲改善酶系組成研究——郫縣豆瓣高酶活米曲霉的選育鑒定

        2012-04-13 12:30:32周昌豹張蓓蓓
        中國釀造 2012年12期
        關(guān)鍵詞:郫縣菌種蛋白酶

        李 峰,趙 萍,周昌豹,宋 萍,張蓓蓓

        (四川省食品發(fā)酵工業(yè)研究設(shè)計院,四川 成都 611130)

        郫縣豆瓣是我國傳統(tǒng)特色發(fā)酵食品的典型代表,歷史悠久,為中華傳統(tǒng)生物食品產(chǎn)業(yè)之瑰寶,是源自中國本土的生物技術(shù)產(chǎn)業(yè),是全國著名的地理標(biāo)志產(chǎn)品。郫縣豆瓣因紅潤光亮、醬香濃郁、味辣香醇、瓣粒酥脆、黏稠絨實等優(yōu)點受到消費者青睞,堪稱川菜之魂。其依賴四川優(yōu)越的氣候、地理、環(huán)境、人文、飲食條件及獨創(chuàng)性的生產(chǎn)技藝,歷經(jīng)300多年的演變、沉淀、錘煉、升華,自成一家、長盛不衰,深受國內(nèi)外消費者喜愛和同行的廣泛關(guān)注與認同。非物質(zhì)文化遺產(chǎn)郫縣豆瓣于2000 年4 月21 日獲得國家工商總局商標(biāo)局批準(zhǔn)的“郫縣豆瓣”地理標(biāo)志證明商標(biāo),并獲得中國馳名商標(biāo)等榮譽稱號。目前郫縣豆瓣從傳統(tǒng)的烹飪調(diào)料發(fā)展到系列復(fù)合調(diào)味品:火鍋底料、燒菜調(diào)料、魚調(diào)料、飯掃光、佐料系列等新產(chǎn)品,銷售遍布全國各省、市,并出口美國、加拿大、新西蘭、日本等國家。

        1 材料和試劑

        豆瓣樣品:從郫縣豆瓣生產(chǎn)企業(yè)采集樣品。

        培養(yǎng)基:菌落分離采用PDA培養(yǎng)基;菌種鑒定采用察氏培養(yǎng)基。

        PDA培養(yǎng)基:馬鈴薯削皮,切成塊煮沸30min,然后用紗布過濾,再加糖及瓊脂,溶化后補足水至1000mL,pH值自然,121℃菌20min。

        察氏培養(yǎng)基:硝酸鈉3g,磷酸氫二鉀1g,氯化鉀0.5g,硫酸鎂(MgSO4·7H2O)0.5g,硫酸亞鐵0.01g,蔗糖30g,瓊脂20g,蒸餾水1000mL,加熱溶解,分裝后121℃滅菌20min。

        固體培養(yǎng)基:按照麩皮:豆粕為4:1的比例混勻,并加入干料量75%(v/w)的水,拌勻。121℃、0.1 MPa滅菌45min。

        主要試劑:福林試劑(Folin試劑)、二硝基水楊酸(DNS)試劑均為實驗室自配、Tris-HCl,EDTA,PCR擴增產(chǎn)物純化試劑盒等;蠶豆、麩皮、豆粕均購自農(nóng)貿(mào)市場;其他試劑均購自成都百旺化學(xué)試劑公司。

        2 儀器和設(shè)備

        主要儀器:752型紫外可見分光光度計,HH-600(0)型電子恒溫水浴鍋,LXJ-II離心沉淀機,PHS-3C型精密pH計,LRH-250A型生化培養(yǎng)箱,XS-18型光學(xué)顯微鏡,Bio-rad PCR儀,Thermo小型離心機,電泳儀,搖床,超凈工作臺。

        3 實驗內(nèi)容和方法

        3.1 米曲霉的分離純化

        無菌條件下,將曲搗碎,稱取適量樣品,選取適宜的稀釋度用生理鹽水稀釋,采用含青霉素100單位/mL的PDA培養(yǎng)基,采用稀釋涂布平板法。每個稀釋接種3個平板,放置于30℃的培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)至48h,進行觀察,將菌落形態(tài)不同的菌種分離,各自傳代培養(yǎng),至少進行3次傳代分離,得到純化菌種,保存菌種備用。

        3.2 高酶活米曲霉的篩選

        將純化好的單個菌株接入到固體發(fā)酵培養(yǎng)基中,按照麩皮:豆粕為4:1的比例混勻,并加入干料量75%(v/w)的水,拌勻。121℃、0.1MPa滅菌45min,冷卻后分別接入菌種,在30℃恒溫培養(yǎng)72h。以酸性蛋白酶、中性蛋白酶和淀粉酶活力作為復(fù)篩的標(biāo)準(zhǔn),篩選出酶活相對較高的米曲霉菌株。

        3.3 菌種鑒定

        對篩選出的菌株采用劃線平板培養(yǎng)后進行培養(yǎng)特征的觀察。菌體特征及孢子結(jié)構(gòu)觀察從菌落上挑取菌絲及產(chǎn)孢結(jié)構(gòu),制普通玻片進行光學(xué)顯微鏡觀察;根據(jù)篩選菌株的菌落、菌絲、抱子形態(tài)顯微鏡照片特性進行鑒定。

        3.4 酶活力測定

        3.4.1 蛋白酶測定方法

        粗酶液制取方法:上述制得固體曲樣品中按重量加入1:20(w/v)的緩沖溶液,于40℃水浴中浸提1h,間歇攪拌,過濾得粗酶液。此粗酶液用于各種蛋白酶酶活性測定。

        酶活測定方法:采用福林酚法。

        3.4.2 淀粉酶測定

        樣品處理:酶液提取方法同蛋白酶測定,取5mL粗酶液,在7000r/min離心30min,吸取上清液測定酶活性。

        酶活測定方法:參照SOMOGYI M的方法進行測定。

        3.5 菌株DNA的提取

        (1)取適量菌絲,加入500mL 5×CTAB,再加適量的玻璃珠,漩渦振蕩器上高速振蕩4min~5min。

        (2)65℃保溫20min,每隔10min搖勻1次。

        (3)加入等體積氯仿:異戊醇(24:1,v/v),12000r/min離心10min。

        將上清液移入新的離心管中,重復(fù)此步驟。

        (4)在上清中加入2倍體積預(yù)冷的無水乙醇,-20℃靜置20min~30min,12000r/min離心10min。

        (5)倒掉上清,加70%vol的酒精200mL洗沉淀,室溫干燥。

        (6)加入100mL TE使DNA完全溶解;加入RNase A(10mg/mL),65℃保溫30min。

        (7)重復(fù)步驟4~6。最后DNA 溶于30mL超純水。

        3.6 PCR擴增

        根據(jù)真菌整個ITS區(qū)設(shè)計通用引物序列為:

        正向引物:ITS4:5‘-TCCTCCGCTTATTGATATGC-3’反向引物:ITS5:5‘-GGAAGTAAAAGTCGTAACAAGG-3’,以霉菌的DNA基因組為模板,擴增ITS序列。

        PCR擴增條件:94℃預(yù)變性5min,94℃變性30s,50℃退火1min,72℃延伸1min,進行35個循環(huán),最后72℃延伸10min。

        3.7 PCR產(chǎn)物的電泳

        進行1%的瓊脂糖凝膠電泳。90V電壓條件下,電泳40min。

        4 結(jié)果分析

        4.1 酶活力測定

        將篩選出的菌種ddQ-125和jcQ-93進行蛋白酶活力和淀粉酶活力測定,對照菌是市售曲精C結(jié)果見圖1。

        圖1 米曲霉菌種的酶活力Fig.1 Enzyme activity of the Aspergillus oryzae strain

        由圖1可知,菌株ddQ-125酸性蛋白酶活力最強,菌株jcQ-93的中性蛋白酶和淀粉酶的酶活力較菌株最強,酶活力均高于對照市售曲精C。

        4.2 菌種的形態(tài)學(xué)觀察

        經(jīng)平板篩選和分離純化,從郫縣豆瓣生產(chǎn)企業(yè)收集樣品中分離篩選出2株霉菌,編號為ddQ-125和jcQ-93。

        圖2 菌種的形態(tài)特征Fig.2 Morphological characteristics of strains

        菌株ddQ-125和jcQ-93的菌落、菌絲和抱子形態(tài)如圖2,在PDA培養(yǎng)基上,25℃培養(yǎng)7d,產(chǎn)出黃色或黃綠色孢子,菌落表面絮狀、邊緣白色絨毛狀。菌落蔓延迅速,初為白色,后變成黃綠色或黃褐色。背面無色或中央略帶黃褐色。分生抱子梗自基質(zhì)中伸出,分生孢子穗半圓形,小梗1層或2層;頂囊半球形、圓拱形以至球形;分生孢子球形。通過形態(tài)和顯微觀查結(jié)果,初步鑒定這兩株菌為米曲霉。

        4.3 PCR反應(yīng)結(jié)果

        將反應(yīng)后的PCR產(chǎn)物于1.0%瓊脂糖緩沖系統(tǒng),90V電壓條件下,電泳40min,用凝膠成像系統(tǒng)觀察并攝影記錄。所有菌株都產(chǎn)生單一的明亮條帶,且所有的條帶均為所需條帶的長度,正好為目的片段的長度,見圖3。

        圖3 菌株ddQ-125和jcQ-93的rDNA-ITS部分序列的PCR擴增電泳圖Fig.3 Electropherogram of strain ddQ-125 and jcQ-93 partial sequences of rDNA-ITS PCR amplification

        4.4 菌株的ITS序列分析

        4.4.1 ddQ-125菌株擴增ITS部分基因序列

        CGAAGGACATTACCGAGTGTAGGGTTCCTAGCGAG CCCAACCTCCCACCCGTGTTTACTG TACCTTAGTT G CTTCGGCGGGCCCGCCATTCATGGCCGCCGGGG GCTCTCAGCCCCGGGC CCGCGCCCGCCGGAGACA CCACGAACTCTGTCTGATCTAGTGAAGTCTGAGTT GATTGTA TCGCAATCAGTTAAAACTTTCAACAATG GATCTCTTGGTTCCGGCATCGATGAAGAACGCAGC GAAATGCGATAACTAGTGTGAATTGCAGAATTCCG TGAATCATCGAGTCTTTGAACG CACATTGCGCCCC CTGGTATTCCGGGGGGCATGCCTGTCCGAGCGTCA TTGCTGCCCATC AAGCACGGCTTGTGTGTTGGGT CGTCGTCCCCTCTCCGGGGGGGACGGGCCCCAAAG GCA GCGGCGGCACCGCGTCCGATCCTCGAGCGTAT GGGGCTTTGTCACCCGCTCTGTAGGCCC GGCCGGC GCTTGCCGAACGCAAATCAATCTTTTTCCAGGTTGA CCTCGGATCAGGTAGGG ATACCCGCTGAACTTAAG CATATCAATAAG GGAGGAAA

        4.4.2 jcQ-93菌株擴增ITS部分基因序列

        CTACCTGATCCGAGGTCACCTGGAAAAAGGATGAT TTGCGTTCGGCAAGCGCCGGCCGGG CCTACAGAGC GGGTGACAAAGCCCCATACGCTCGAGGATCGGACG CGGTGCCGCCGCTGC CTTTGGGGCCCGTCCCCCCC GGAGAGGGGACGACGACCCAACACACAAGCCGTGC TTGAT GGGCAGCAATGACGCTCGGACAGGCATGCC CCCCGGAATACCAGGGGGCGCAATGTGCGT TCAAA GACTCGATGATTCACGGAATTCTGCAATTCACACTA GTTATCGCATTTCGCTGCG TTCTTCATCGATGCCGG AACCAAGAGATCCATTGTTGAAAGTTTTAACTGATT GCGATA AATCAACTCAACTTCACTAGAATCAGACA GAGTTCGTGGTGTCTCCGGCG GCGCGGGCCCGGGG CTGAGAGCCCCCGGCGGCCATGAATGGCGGGCCCG CCGAAGCAACTAAGGTACAG TAAACACGGGTGGG AGGTTGGGCTCGCTAGGAACCCTACACTCGGTAAT GATCCTTCCGC AGGTTCACCTACGGAAACCTTGTTA CG

        采用真菌通用R/F引物擴增米曲霉ITS部分序列。經(jīng)PCR擴增測序進一步鑒定其中ddQ-125和jcQ-93菌株確屬于Aspergillus oryzae;將測得的A、B菌株的ITS序列在Gen-Bank數(shù)據(jù)庫中進行同源序列比對。結(jié)果顯示,兩菌株與米曲霉的ITS序列相似性達到99%以上。

        5 結(jié)論

        從郫縣豆瓣中分離篩選出得到兩株優(yōu)勢菌,根據(jù)形態(tài)學(xué)和分子生物學(xué)的特性,鑒定為米曲霉,本研究采用真菌核糖體轉(zhuǎn)錄間隔區(qū)(ITS)的引物,進行PCR擴增,并將PCR產(chǎn)物進行ITS序列測序。測序結(jié)果與Genbank進行同源序列比對,結(jié)果顯示菌株ddQ-125和jcQ-93的序列與Genballk已知序列相似率可達99%以上。霉菌的序列分析結(jié)果與形態(tài)學(xué)鑒定基本一致。新分離的高酶活菌株將用于郫縣豆瓣復(fù)合菌制曲的研究。

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