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        三種大豆分離蛋白的比較研究和物化特性相關(guān)性分析

        2012-02-09 03:04:44馬永強(qiáng)袁美玲
        大豆科技 2012年4期
        關(guān)鍵詞:二硫鍵巰基緩沖液

        范 媛,馬永強(qiáng),袁美玲,李 丹

        (1.哈爾濱米旗食品有限公司,哈爾濱 150060;2.哈爾濱商業(yè)大學(xué)食品工程學(xué)院,哈爾濱 150076;3.黑龍江省普通高等學(xué)校食品科學(xué)與工程重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,哈爾濱 150076)

        大豆分離蛋白(soybean protein isolate,SPI)是以低溫脫溶大豆粕為原料生產(chǎn)的一種全價(jià)大豆蛋白,其蛋白質(zhì)含量在90%以上,是植物蛋白中為數(shù)不多的可替代動(dòng)物蛋白的品種之一。大豆分離蛋白除具有營養(yǎng)價(jià)值外,還具有許多重要的功能特性,如凝膠性、溶解性、乳化性、乳化穩(wěn)定性、粘性等,這些特性可有效地改善食品的口感,增加食品的彈性、保水性、吸油性,提高貯存性等[1]。大豆分離蛋白組成和結(jié)構(gòu)是決定其功能性的重要因素,近幾十年來備受國內(nèi)外研究者的關(guān)注[2]。相關(guān)研究與工業(yè)化實(shí)踐的資料都顯示,不同生產(chǎn)企業(yè)的大豆分離蛋白在功能特性方面具有顯著差異,而這些差異主要是由于加工工藝條件的差異導(dǎo)致的[3]。

        本研究選取了不同生產(chǎn)企業(yè)的大豆分離蛋白樣品,通過對(duì)其基本化學(xué)組成、表面基團(tuán)和功能性的研究,了解前2方面因素對(duì)功能性的影響,以期為進(jìn)一步探討上述影響奠定理論基礎(chǔ)。

        1 實(shí)驗(yàn)材料與方法

        1.1 實(shí)驗(yàn)材料

        1.1.1 實(shí)驗(yàn)原料 3種大豆分離蛋白樣品分別由吉林省、黑龍江省和山東省的大豆蛋白生產(chǎn)企業(yè)提供。

        1.1.2 實(shí)驗(yàn)儀器 TGL-16G-B型臺(tái)式高速離心機(jī):湖南星科科學(xué)儀器有限公司;722E型可見分光光度計(jì):上海光譜儀器有限公司;DZF-6020真空干燥箱:上海一恒科技有限公司;NDJ-8S型數(shù)顯粘度計(jì):上海精密科學(xué)儀器有限公司;202型電熱恒溫干燥箱:余姚市東方電工儀器廠;KDN-F自動(dòng)定氮儀:上海纖檢儀器有限公司;FSH-2可調(diào)高速勻漿機(jī):常州國華電器有限公司;TA-XT2i質(zhì)構(gòu)儀:英國Stable Micro Systems Ltd公司。

        1.1.3 試劑 硫酸銅、硫酸鉀、氫氧化鈉、甲基紅、亞甲基藍(lán)、十二烷基磺酸鈉、尿素、亞硫酸鈉等均為分析純。

        1.2 實(shí)驗(yàn)方法

        1.2.1 原料的基本組成分析

        (1)水分測(cè)定 水分含量測(cè)定采用直接干燥法。

        (2)灰分測(cè)定 灰分測(cè)定采用干法灰化法。

        (3)蛋白質(zhì)測(cè)定 采用凱氏定氮法。

        (4)粗脂肪測(cè)定 采用索氏提取法。

        1.2.2 蛋白表面基團(tuán)的測(cè)定

        (1)蛋白表面巰基的測(cè)定 采用分光光度法測(cè)定[4]。

        ①溶液配制方法:

        緩沖液A:8mol/L尿素,3mmol/L EDTA,l%SDS和0.2mol/L Tris-HC1(pH8.0);

        緩沖液B:10mmol/L DTNB,0.2mol/L Tris-HC1(pH8.0);

        緩沖液C:8mol/L尿素,3mmol/L EDTA,1%SDS,0.1mol/L Na2SO3,10mL/L NTSB和0.2mol/L Tris-HC1(pH9.5);

        緩沖液D:8mol/L尿素,3mmol/L EDTA,1%SDS,0.1mol/L Na2SO3,0.2mol/L Tris-HC1(pH 8.0);

        NTSB的制備:100mg的Ellment試劑溶解到10mL 1mol/L的亞硫酸鈉中,在38℃下通入氧氣直到亮紅色溶液變成淡黃色,就表明NTSB已經(jīng)生成。

        ②測(cè)定方法:直接用緩沖液A 20mL溶解0.100g大豆粉(1#),緩沖液D 20mL溶解0.100g大豆粉(2#),振蕩并使其全溶。用緩沖液A 20mL溶解一份處理過的豆?jié){(1#),緩沖液D 20mL溶解另一份處理過的豆?jié){(2#),震蕩并使其全溶。取1#溶液于紙型管中,分別測(cè)3次后取平均,在紙型管中分別加入0.1mL的緩沖液B,震蕩30min后加緩沖液A稀釋至3mL再測(cè)吸光度。以加緩沖液B而不加樣品為空白。取2#溶液于紙型管中,分別測(cè)3次,在紙型管中加入相同量的緩沖液C振蕩30min后加緩沖液D稀釋至3mL再測(cè)吸光度。以加緩沖液C而不加樣品為空白。

        計(jì)算公式如下:

        SH(μmol/g)=A412nm×D×10-6/C×V×13600

        A412nm——吸光度;

        D——稀釋倍數(shù)(對(duì)游離SH,D=(3/所取樣品溶液體積)×20;對(duì)總巰基,D=(3/所取樣品體積)×20);

        C——豆?jié){固形物含量,5mg/mL;

        V——所取豆?jié){或牛奶的體積mL;

        SS(μmol/g)=(總巰基含量-游離巰基含量)/2。

        (2)表面疏水性的測(cè)定 采用SDS結(jié)合法測(cè)定蛋白質(zhì)表面疏水性。

        ①用尿素對(duì)大豆分離蛋白進(jìn)行改性,對(duì)改性SPI進(jìn)行冷凍干燥,研磨,過100目篩,測(cè)其表面疏水性。

        改性方法:室溫配制8mol/L的尿素溶液。將SPI以1g 1003d110mL的比例加入到尿素溶液中,室溫?cái)嚢?h后冷凍干燥,制得常溫尿素變性大豆分離蛋白[5]。

        ②測(cè)定方法:取改性大豆分離蛋白,溶解于SDS溶液中,靜置30min,在pH為8的磷酸緩沖液中透析24h后取0.5mL透析液,加入10mL CHCl3,混勻后在CHCl3層中加入0.0024%的亞甲基藍(lán)溶液,充分混合,2500r/min離心15min,取底層SDS與亞甲基藍(lán)混合物,于波長(zhǎng)655nm處測(cè)其吸光度[6]。

        ③標(biāo)準(zhǔn)曲線制作:已知含量的SDS按上述測(cè)定方法測(cè)其吸光度,用1mg蛋白質(zhì)結(jié)合的SDS的微克數(shù)來表示蛋白質(zhì)的疏水性。

        1.2.3 大豆分離蛋白物化特性的測(cè)定

        (1)測(cè)定大豆蛋白質(zhì)溶液粘度 將25g SPI樣品分散到500mL蒸餾水中,分散均勻后,靜置1h,再攪拌2min,80℃水浴60min,冷卻至25℃,再次攪拌2min,立即用旋轉(zhuǎn)粘度計(jì)測(cè)定粘度。將旋轉(zhuǎn)粘度計(jì)安裝于固定支架上,校準(zhǔn)水平,用直徑不小于70mm的直筒式燒杯盛裝樣液,并保持樣液恒溫,根據(jù)估計(jì)的被測(cè)樣液的最大粘度值選擇適當(dāng)?shù)霓D(zhuǎn)子及轉(zhuǎn)速,裝好轉(zhuǎn)子,調(diào)整儀器高度,使轉(zhuǎn)子浸入樣液直至液面達(dá)到標(biāo)志處為止。接通電源,使轉(zhuǎn)子在樣液中旋轉(zhuǎn),經(jīng)多次旋轉(zhuǎn)后指針趨于穩(wěn)定時(shí)或按規(guī)定的旋轉(zhuǎn)時(shí)間指針達(dá)到恒定值時(shí),壓下操縱桿,同時(shí)中斷電源,讀取指針?biāo)甘镜臄?shù)值。如讀數(shù)值過高或過低,應(yīng)改變轉(zhuǎn)速或轉(zhuǎn)子,以使讀數(shù)在20~90之間,選擇4號(hào)轉(zhuǎn)子,0.6轉(zhuǎn)/min。

        (2)乳化性與乳化穩(wěn)定性 在0.05mol/L pH7.0磷酸鈉緩沖液中配置1%的大豆分離蛋白溶液,加入大豆油(0.25L/L),均質(zhì)(10000r/min×10s)2次,形成均一的乳化液。均質(zhì)后,分別在0min和10min取1mL新制備的乳化液,用蒸餾水稀釋100倍,然后再取1mL被稀釋的乳化液,用0.1%SDS稀釋10倍,將最后溶液在500nm下進(jìn)行吸光值測(cè)定[7]。

        A0——均質(zhì)后0min時(shí)被稀釋的乳化液的吸光值;

        A10——均質(zhì)后10min時(shí)被稀釋的乳化液的吸光值;

        t——時(shí)間(10min)。

        (3)大豆分離蛋白凝膠性質(zhì)分析

        ①凝膠的制備:將蛋白質(zhì)溶于去離子水中,濃度為12%(w/v), 攪拌均勻, 用分散器(Ultra-TURRAXT25)分散1min(12500r/min),均質(zhì)20MPa,將此蛋白質(zhì)溶液裝于100mL的燒杯中,蓋以鋁箔,將此燒杯置于90℃的水浴中加熱保溫30min,然后用冰浴冷卻至室溫,在4℃的冰箱中保存24h,從冰箱中取出立即測(cè)定其凝膠強(qiáng)度[8]。

        ②凝膠強(qiáng)度的測(cè)定:選用TA.XT2物性儀進(jìn)行測(cè)定,物性儀主要參數(shù)設(shè)定如下[9]:

        運(yùn)行模式:TPA

        數(shù)據(jù)采集速率:200pps

        探頭:10mm圓柱型(P/0.5)

        1.2.4 物化特性與蛋白組成及表面基團(tuán)的相關(guān)性分析 采用SPSS11.0軟件進(jìn)行線性回歸分析。

        2 數(shù)據(jù)分析與討論

        2.1 原料的基本組成分析

        大豆分離蛋白基本組成分析見表1。

        2.2 蛋白表面基團(tuán)的測(cè)定

        不同大豆分離蛋白巰基、二硫鍵含量及疏水性見表2。

        計(jì)算公式如下:

        表1 大豆分離蛋白基本組成分析 %

        表2 不同大豆分離蛋白巰基、二硫鍵含量及疏水性

        2.3 大豆分離蛋白物化特性的測(cè)定

        2.3.1 大豆分離蛋白粘度測(cè)定 相關(guān)數(shù)據(jù)見表3。

        2.3.2 大豆分離蛋白乳化性及乳化穩(wěn)定性測(cè)定 相關(guān)數(shù)據(jù)見表4。

        表3 不同大豆分離蛋白的粘度值

        表4 不同大豆分離蛋白的乳化性與乳化穩(wěn)定性

        2.3.3 大豆分離蛋白凝膠強(qiáng)度測(cè)定 測(cè)定結(jié)果見附圖,相關(guān)數(shù)據(jù)見表5。

        表5 凝膠性質(zhì)測(cè)定數(shù)據(jù)

        2.4 數(shù)據(jù)相關(guān)性分析

        根據(jù)SPSS軟件分析顯示:

        (1)建立粘度(Y)與各測(cè)定指標(biāo)之間的相關(guān)性,得到線性回歸方程為:

        X1—水分;X2—灰分;X3—脂肪;X4—蛋白質(zhì)含量;X5—游離巰基;X7—二硫鍵含量。

        根據(jù)軟件分析得出:粘度與蛋白質(zhì)含量、二硫鍵含量、游離巰基含量具有顯著的相關(guān)性。粘度與蛋白質(zhì)含量之間具有正相關(guān)性,大豆分離蛋白的粘度隨著蛋白質(zhì)含量增加而增加。大豆分離蛋白的表觀粘度隨蛋白質(zhì)濃度的增加呈指數(shù)型增加。這是因?yàn)榇蠖狗蛛x蛋白的主要成分是大豆球蛋白和伴球蛋白,而球蛋白的軸比近于1,要使分子排列平行于流動(dòng)方向所需的能量遠(yuǎn)小于具有較高軸比的纖維狀蛋白質(zhì)。在后一種情況下,與流體流動(dòng)方向垂直的某些分子的取向增加流動(dòng)時(shí)的摩擦力。在較高濃度的蛋白質(zhì)溶液中即有類似的效應(yīng)發(fā)生。在這種情況下,一個(gè)分子周圍流動(dòng)模式的紊亂將會(huì)與另一個(gè)分子周圍的流動(dòng)模式紊亂發(fā)生相互作用或重疊,從而增加流動(dòng)時(shí)的摩擦力。大豆分離蛋白粘度隨濃度呈指數(shù)型增長(zhǎng)的現(xiàn)象,是由上述效應(yīng)引起的。

        粘度與二硫鍵含量之間具有正相關(guān)性,粘度隨二硫鍵含量增加而增強(qiáng)。二硫鍵含量增加導(dǎo)致分子間作用力加強(qiáng),增加了分子間的摩擦力,導(dǎo)致粘度增加。

        粘度與巰基含量之間具有負(fù)相關(guān)性,粘度隨巰基含量的增加而降低。巰基含量增加、二硫鍵含量減少導(dǎo)致分子間作用力減弱,減小了分子間的摩擦力,導(dǎo)致粘度降低。

        (2)建立乳化性與各測(cè)定指標(biāo)之間的相關(guān)性,得到線性回歸方程為:

        根據(jù)軟件分析得出:乳化性與蛋白質(zhì)含量具有顯著的相關(guān)性。

        乳化性與蛋白質(zhì)含量之間具有正相關(guān)性,大豆分離蛋白的乳化性隨著蛋白質(zhì)含量增加而增強(qiáng)。蛋白質(zhì)分子中由于同時(shí)含有親水基團(tuán)和親油基團(tuán)這種特征結(jié)構(gòu),因此具有乳化性,蛋白質(zhì)含量高時(shí)親水和親油基團(tuán)也隨之增加,因此乳化性也隨之增加。

        (3)建立乳化穩(wěn)定性與各測(cè)定指標(biāo)之間的相關(guān)性,得到線性回歸方程為:

        根據(jù)軟件分析得出:乳化穩(wěn)定性與各指標(biāo)之間相關(guān)性均不顯著。

        (4)建立凝膠性與各測(cè)定指標(biāo)之間的相關(guān)性,得到線性回歸方程為:

        根據(jù)軟件分析得出:凝膠性與蛋白質(zhì)含量、二硫鍵含量、游離巰基含量具有顯著的相關(guān)性。凝膠性與蛋白質(zhì)含量之間具有正相關(guān)性,大豆分離蛋白的凝膠性隨著蛋白質(zhì)含量增加而增加。大豆蛋白質(zhì)的濃度是凝膠能否形成的決定性因素之一。濃度為8.0%~16.0%的大豆蛋白質(zhì)溶膠,經(jīng)一定的加熱過程,冷卻后即可形成凝膠,濃度越高,凝膠強(qiáng)度越大。

        凝膠性與二硫鍵之間具有正相關(guān)性,凝膠強(qiáng)度及性能隨二硫鍵含量增加而增強(qiáng)。加熱導(dǎo)致大豆分離蛋白變性分子形成,由大豆蛋白內(nèi)的二硫鍵、氫鍵、疏水鍵作用使解鏈的肽鏈間重新交聯(lián)成網(wǎng)絡(luò)從而形成了凝膠網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)。因此高含量的二硫鍵傾向于形成凝膠,從而導(dǎo)致凝膠性較好。

        凝膠性與游離巰基含量之間具有負(fù)相關(guān)性,凝膠強(qiáng)度及性能隨巰基含量增加而減弱。巰基含量高時(shí),二硫鍵含量隨之減少,導(dǎo)致肽鏈間重新交聯(lián)減弱,從而使凝膠強(qiáng)度降低。

        3 結(jié)論

        由表面特性分析可知:3種大豆分離蛋白中的游離巰基和二硫鍵含量由多到少的順序均為:樣品1>樣品2>樣品3。樣品2的疏水值高于樣品1和樣品3,說明處理后得到的樣品2蛋白質(zhì)表面疏水鍵暴露較多,疏水基含量較高,疏水性較強(qiáng)。通過SPSS軟件分析可知:大豆分離蛋白中粘度與蛋白質(zhì)含量、二硫鍵含量呈正相關(guān)、與巰基含量呈負(fù)相關(guān);大豆分離蛋白的乳化性與蛋白質(zhì)含量、粘度、蛋白質(zhì)組成中7S組分含量呈正相關(guān);大豆分離蛋白的凝膠性與蛋白含量、二硫鍵含量呈正相關(guān),與巰基含量呈負(fù)相關(guān)。

        [1]李玉珍,肖懷秋,蘭立新.大豆分離蛋白功能特性及其在食品工業(yè)中的應(yīng)用[J].中國食品添加劑,2008(1):121-125.

        [2]謝良,王璋,蔡寶玉.大豆分離蛋白的組成與功能性質(zhì)[J].中國糧油學(xué)報(bào),2000(6):6-10.

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        [9]Zhang Lu,Sun Xiuzhi,SuSan.Effect of Sodium Bisulfite on Properties of Soybean Glycinin[J].Agriculture Food Chemistry,2008,56:11192-11197.

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