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        藤茶植株葉果與組培物中二氫楊梅素含量的比較研究

        2012-01-29 11:28:12耀,豐來,周
        湖南農(nóng)業(yè)科學(xué) 2012年13期
        關(guān)鍵詞:藤條老葉懸浮液

        周 耀,豐 來,周 政

        (湖南農(nóng)業(yè)大學(xué),湖南 長沙 410128)

        藤茶,俗稱茅巖莓茶、端午茶、藤婆茶,學(xué)名顯齒蛇葡萄(A.grossedentata),為葡萄科,蛇葡萄屬木質(zhì)藤本。它是粵蛇葡萄(A.cantoniesi)的變種,主要分布于廣東、廣西、云南、貴州、湖南、湖北、江西、福建等省[1]。藤茶中主要活性成分二氫楊梅素在該植物幼嫩芽頭部位含量最高[2]。二氫楊梅素(3,5,7,3′4′5′-六羥基-2,3 雙氫黃酮醇 dihydromyricetin,DMY)是一種多酚羥基雙氫黃酮醇,又稱蛇葡萄素,屬黃酮類化合物[3]。二氫楊梅素除具有黃酮化合物的清除自由基、抗氧化、抗血栓、抗腫瘤、消炎抑菌等普通特性外,其在解除醇中毒、降低血脂和血糖水平,提高SOD活性以及保肝護(hù)肝等方面具有特殊功效,具有明顯拮抗Na和高K所致的兔胸主動(dòng)脈條收縮反應(yīng)及鈣拮抗作用,且毒性低,可作為抗心律失常、心肌缺血、高血壓的新型藥物[4]。試驗(yàn)采用高效液相色譜法(HPLC)測定藤茶嫩葉、葉片、老葉、果實(shí)、愈傷組織、懸浮培養(yǎng)液中二氫楊梅素的含量,重點(diǎn)探討了愈傷組織培養(yǎng)法生產(chǎn)二氫楊梅素的可行性。

        1 材料與方法

        1.1 試驗(yàn)材料

        1.1.1 儀 器 Agilent 1100 Series高效液相色譜儀,L 27420紫外可見光檢測器,BF22002色譜工作站,AL204萬分電子天平(梅特勒-托利多儀器上海有限公司)。

        1.1.2 試 劑 二氫楊梅素對(duì)照品(色譜級(jí),純度>98%);甲醇(色譜純);超純水;其它試劑均為分析純。

        1.1.3 材 料 供試材料藤條,春天采自湖南省張家界,移栽到湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)實(shí)驗(yàn)基地。9月中旬采集3種葉片,10月底采集果實(shí),均于48℃烘干,粉碎過60目篩備用。

        愈傷組織培養(yǎng)選擇植株生長健狀,無病蟲害的藤茶葉片、葉柄、莖段、莖尖等作為外植體。取長勢(shì)良好、無染菌、黑斑較少的愈傷組織,48℃烘干粉碎,過60目篩備用。

        懸浮細(xì)胞培養(yǎng)選擇愈傷培養(yǎng)繼代3次后,狀態(tài)疏松、生長速度快的愈傷組織轉(zhuǎn)入到液體培養(yǎng)基中[5]。選擇鏡檢有一定活細(xì)胞數(shù)量的同批懸浮液過濾,液體混合備用。

        1.1.4 培養(yǎng)基 愈傷誘導(dǎo)培養(yǎng)基:MS+6-BA 2.5 mg/L+NAA 0.15 mg/L+蔗糖2%+瓊脂 0.7%;繼代培養(yǎng)基:MS+2,4-D 2mg/L+蔗糖 2%+瓊脂 0.7%;懸浮培養(yǎng)基:MS+6-BA 1.5 mg/L+NAA 0.2 mg/L+蔗糖2%。

        1.2 試驗(yàn)方法

        1.2.1 液相色譜條件 參照周雪仙等[5-6]方法,C18柱,流動(dòng)相為甲醇∶水(36∶64),應(yīng)用前經(jīng)過 0.45 μm微孔濾膜抽濾,超聲脫氣,流速為1.0 mL/min;進(jìn)樣時(shí)為 20 μL,柱溫 30℃;檢測波長 291 nm。

        1.2.2 對(duì)照品溶液的制備與計(jì)算[7]取二氫楊梅素對(duì)照品5 mg,加水溶解并定容至50 mL,搖勻,即得(0.1mg/1mL),0.45 μm 微孔濾膜過濾,取 20 μL 進(jìn)樣,面積外標(biāo)法定量。計(jì)算方法:

        X=[A樣×C標(biāo)×B樣/(A標(biāo)×M)]×100%

        式中:X——樣品中二氫楊梅素含量(%);A樣——樣品圖譜中二氫楊梅素對(duì)應(yīng)的峰面積;A標(biāo)——對(duì)照品圖譜中二氫楊梅素對(duì)應(yīng)的峰面積;C標(biāo)——二氫楊梅素對(duì)照品的濃度(mg/mL)為0.1;B樣——溶液稀釋倍數(shù);M——樣品量(mg或mL)

        1.2.3 供試液制備 嫩葉、葉片、老葉、果實(shí)、愈傷組織各稱取樣品粉末1 g,置250 mL三角燒瓶中,加20倍水于97℃水浴30 min,10 000 r/min離心5 min,取上清液備用,沉淀重復(fù)上述操作兩次,合并3次離心后的上清液,10倍95%乙醇沉淀,10 000 r/min離心5 min,留上清液,旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)濃縮至50 mL,精密量取濃縮液1 mL,根據(jù)預(yù)作試驗(yàn)分別定容到適當(dāng)體積。超聲30 min,取適量用0.45 μm微孔濾膜過濾即得樣品溶液,取20 μL進(jìn)樣分析。

        細(xì)胞懸浮液量取200 mL,10倍95%乙醇沉淀,10 000 r/min離心5 min,留上清液,旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)濃縮50 mL,精密量取濃縮液1 mL,定容到5 mL。超聲30 min,取適量用0.45 μm微孔濾膜濾過即得樣品溶液。取20 μL進(jìn)樣分析。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 二氫楊梅素對(duì)照品的測定

        由圖1可知,二氫楊梅素對(duì)照品大約在7.5 min開始出現(xiàn)峰,大約在8.5 min時(shí)出峰,響應(yīng)時(shí)間7.828 min,峰面積為 3 849 165,高度為 268 796。即A標(biāo)為3 849 165,C標(biāo)為0.1 mg/mL。

        圖1 二氫楊梅素對(duì)照品HPLC圖譜

        2.2 藤條嫩葉中二氫楊梅素含量的測定

        將1.2.3中量取的1 mL溶液定溶到10 mL,然后過膜上樣。由圖2可知,嫩葉二氫楊梅素響應(yīng)時(shí)間7.902 min,峰面積A樣為19 652 356,高度為1 102 075。稀釋倍數(shù)B樣為50×10=500,求得X,即嫩葉中二氫楊梅素含量為25.528%。

        圖2 藤條嫩葉二氫楊梅素HPLC圖譜

        2.3 藤條葉片中二氫楊梅素含量的測定

        將1.2.3中量取的1 mL溶液定溶到5 mL,然后過膜上樣。由圖3可知,葉子二氫楊梅素響應(yīng)時(shí)間7.944 min,峰面積A樣為21 106 641,高度為11 589 752。稀釋倍數(shù)B樣為50×5=250,求得X,即葉片中二氫楊梅素含量為13.709%。

        圖3 藤條葉片二氫楊梅素HPLC圖譜

        2.4 藤條老葉中二氫楊梅素含量的測定

        將1.2.3中量取的1 mL溶液定溶到50 mL,然后過膜上樣。由圖4可知,老葉二氫楊梅素響應(yīng)時(shí)間7.980 min,峰面積A樣為2 053 457,高度為144 301。稀釋倍數(shù) B 樣為 50×50=2 500,求得 X,即老葉中的二氫楊梅素含量為13.337%。

        圖4 藤條老葉二氫楊梅素HPLC圖譜

        2.5 藤條果實(shí)中二氫楊梅素含量的測定

        將2.1.4中量取的1 mL溶液定溶到5 mL,然后過膜上樣。由圖5可知,果實(shí)二氫楊梅素響應(yīng)時(shí)間7.936 min,峰面積A樣為9 630 913,高度為649 830。稀釋倍數(shù)B樣為50×5=250,求得X,即果實(shí)中二氫楊梅素含量為6.255%。

        圖5 藤條果實(shí)二氫楊梅素HPLC圖譜

        2.6 藤條愈傷組織物中二氫楊梅素含量的測定

        將1.2.3中量取的1 mL溶液定溶到10 mL,然后過膜上樣。由圖6可知,愈傷二氫楊梅素響應(yīng)時(shí)間7.999 min,峰面積A樣為8 942 537,高度為592 680。稀釋倍數(shù)B樣為50×10=500,求得X,即愈傷中二氫楊梅素含量為11.616%。

        圖6 藤條愈傷組培物二氫楊梅素HPLC圖譜

        2.7 藤條細(xì)胞懸浮培養(yǎng)液中二氫楊梅素含量的測定

        由圖7可知,懸浮液二氫楊梅素響應(yīng)時(shí)間8.027 min,峰面積A樣為255 303,高度為11 440。稀釋倍數(shù)B樣為50×5=250,因?yàn)閼腋∫菏侨〉?00 mL,所以M是200,求得X,即懸浮液中二氫楊梅素含量為0.829%。

        圖7 藤條細(xì)胞懸浮液二氫楊梅素HPLC圖譜

        3 討論

        試驗(yàn)結(jié)果表明,愈傷組織中二氫楊梅素含量與葉子中二氫楊梅素含量接近,可能是生長力旺盛的組織合成二氫楊梅素能力強(qiáng),而懸浮液與愈傷組織中的二氫楊梅素含量相距很大,推測該次生代謝物的合成對(duì)組織的活性存在很大的依賴性,由于愈傷組織尚具備誘導(dǎo)分化的能力,而懸浮細(xì)胞已完全喪失細(xì)胞分化能力的潛力,推測二氫楊梅素的合成與促進(jìn)細(xì)胞分化的因素相關(guān)。試驗(yàn)說明愈傷組織誘導(dǎo)分化能力較強(qiáng)。利用愈傷組織培養(yǎng)生產(chǎn)二氫楊梅素值得進(jìn)一步深入研究。

        [1]Liu J X ,Zhou T O.A pharmacognostical study on“Tengcha”,Bigdentata Ampelopsis(Ampelopsis grossedentata).Chinese Tradition Herb Drugs,1999,30(6):459-463.

        [2]張友勝,楊偉麗,熊皓平.RP-HPLC法測定顯齒蛇葡萄植物中楊梅素的含量[J].中草藥,2001,32(11):983-985.

        [3]魏 捷.紫外分光光度法測定顯齒蛇葡萄各部分蛇葡萄素含量[J].海峽藥學(xué),2002,14(5):62.

        [4]何桂霞,裴 剛,周天達(dá),等.顯齒蛇葡萄中總黃酮和二氫楊梅素的含量測定[J].中國中藥雜志,2000,25(7):423-425.

        [5]王晶晶,蔡 赫,李然紅,等.非洲鳳仙花細(xì)胞懸浮培養(yǎng)條件的優(yōu)化[J].牡丹江師范學(xué)院學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2008,68(3):13-14.

        [6]何桂霞,裴 剛,楊偉麗,等.HPLC測定藤茶不同采收時(shí)期及不同部位的二氫楊酶素含量[J].中成藥,2004,26(3):210-212.

        [7]王春娥,潘振球,馮家力,等.HPLC法測定保健食品中二氫楊梅素的研究[J].中國衛(wèi)生檢驗(yàn)雜志,2006,16(6):694,732.

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