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        新型骨顯像劑99Tcm-HBIDP的制備與初步生物學(xué)性質(zhì)

        2012-01-04 03:30:53王立勤林建國南蓓蓓羅世能馬海霞
        核化學(xué)與放射化學(xué) 2012年2期
        關(guān)鍵詞:雙膦顯像劑緩沖液

        王立勤,邱 玲,林建國,南蓓蓓,羅世能,馬海霞,黃 潔

        1.西北大學(xué) 化工學(xué)院,陜西 西安 710069;2.江蘇省原子醫(yī)學(xué)研究所,衛(wèi)生部核醫(yī)學(xué)重點實驗室,江蘇省分子核醫(yī)學(xué)重點實驗室,江蘇 無錫 214063

        放射性核素骨顯像已成為臨床診斷和研究骨質(zhì)病變最為普遍的技術(shù)手段之一[1]。20世紀70年代中期,骨掃描代替了X射線用以研究骨質(zhì)病變,它能夠比X射線提早幾個月探測到某些骨質(zhì)病變的發(fā)生。Subramanian等[2]對99Tcm-MDP和其它99Tcm標記的骨顯像劑進行了詳細的對比,認為99Tcm-MDP用于骨顯像效果最佳。然而99Tcm-MDP作為骨顯像劑也存在不足之處,比如給藥后2~6 h,骨掃描效果才比較好[3]??s短給藥后掃描等待時間可以減輕病人的負擔(dān),這就要求放射藥物對骨質(zhì)有更高的親和力。在其后30多年里,科研工作者不斷將雙膦酸結(jié)構(gòu)優(yōu)化后進行99Tcm標記,以發(fā)展性能優(yōu)異的新型骨顯像劑[1,3-4]。

        雙膦酸以含P—C—P鍵為特征,側(cè)鏈由R1和R2構(gòu)成。改變兩個側(cè)鏈R1和R2的結(jié)構(gòu),極大地豐富了雙膦酸的結(jié)構(gòu),為尋求更優(yōu)秀的雙膦酸提供了可能。側(cè)鏈R1和R2決定了雙膦酸的藥理特性[5-7]。R1為羥基,提高了雙膦酸對骨質(zhì)的親和力。R2的性質(zhì)對于提高雙膦酸抑制骨再吸收能力至關(guān)重要。R2為含氮氨烷基或含氮雜環(huán)、R1為羥基的雙膦酸的治療效果更好。帕米膦酸(pamidronate)的烷基鏈上有1個伯胺氮原子,其效能是不含氮原子的依替膦酸(etidronate)效能的10到100倍[6]。大多數(shù)的第三代雙膦酸R2為含有1個或2個氮原子的雜環(huán)。唑來膦酸(1-羥基-2-(1H-咪唑-1-基)乙烷-1,1-雙膦酸,Zoledronic acid)是目前綜合治療效果最佳的雙膦酸,它的效能至少是帕米膦酸的100倍或者是依替膦酸的1 000倍[8]。

        為了尋找新型品優(yōu)雙膦酸骨顯像劑,本課題組進行了大量嘗試,陸續(xù)制備了99Tcm標記的雙膦酸,包括99Tcm-ZL[9]、99Tcm-MIDP[10]、99Tcm-EIDP[11]、99Tcm-PIDP[12]和99Tcm-EMIDP[13],探索了它們作為骨顯像劑的可能性。結(jié)果表明,這些標記物有良好的生物學(xué)性質(zhì),注射藥物后1~2 h可以給出清晰的全身兔骨顯像,是潛在的骨顯像劑。為了尋找新型性能更加優(yōu)異的骨顯像劑,本工作擬合成一種新型雙膦酸,即1-羥基-2-(1-丁基-1H-咪唑-2-基)亞乙基-1,1-雙膦酸(HBIDP),并用99Tcm進行標記,測定99Tcm-HBIDP的脂水分配系數(shù)和血漿蛋白結(jié)合率,比較99Tcm-HBIDP與99Tcm-ZL小鼠體內(nèi)分布的差異。

        1 實驗部分

        1.1 試劑和儀器

        1-丁基咪唑(純度為99%),上海邦成化工有限公司;其他試劑均為分析純,無需提純,可直接使用,國藥集團上海化學(xué)試劑有限公司。

        Yanaco MP-500熔點儀,日本島津公司;Elementar Varil EL Ⅲ型元素分析儀,德國Elementar公司;TENSOR27型傅里葉變換紅外光譜儀,德國Bruker光譜儀器公司;Waters Platform ZMD4000型質(zhì)譜儀,美國Waters公司;Bruker DRX-500型核磁共振儀,德國Bruker光譜儀器公司;Waters 600型高效液相色譜儀,美國Waters公司;HPLC柱,SinoChrom ODS-BP,PN:E2117215-080108,4.6 mm×250 mm×10 μm,大連依利特分析儀器有限公司,Cd(Te)檢測器,美國Perkin Elmer公司;PackardCobra型自動γ計數(shù)器,美國Victoreen公司。

        ICR小鼠,18~20 g,上海斯萊克實驗動物有限公司。

        1.2 1-羥基-2-(1-丁基-1H-咪唑-2-基)亞乙基-1,1-雙膦酸(6)(HBIDP)的合成

        按圖1所示,原料1-丁基咪唑(1)經(jīng)五步反應(yīng),合成了目標化合物1-羥基-2-(1-丁基-1H-咪唑-2-基)亞乙基-1,1-雙膦酸(6)。詳細合成方法參見文獻[14-15]。

        圖1 HBIDP的合成路線

        1.3 99Tcm-HBIDP的制備

        配體溶液的配制:將250 mg HBIDP加入到5 mL 0.02 mol/L NaOH溶液中使之溶解,其質(zhì)量濃度為50 g/L,pH≈6。

        SnCl2·2H2O溶液的配制:準確稱量10 mg SnCl2·2H2O置于干凈的西林瓶中,加入0.5 mol/L HCl 10 mL,將其溶解完全,其質(zhì)量濃度為1 g/L。此溶液需現(xiàn)配現(xiàn)用。

        向10 mL西林瓶中依次加入一定體積的50 g/L雙膦酸鈉鹽溶液、一定體積的1 g/L SnCl2·2H2O鹽酸溶液,一定量的Na99TcmO4溶液,再加入pH=6的磷酸鹽緩沖溶液(PBS),控制總體積為2 mL,渦旋振蕩器充分振蕩混勻,室溫(25±1)℃下反應(yīng)一定時間即標記完畢。

        1.4 標記率和放化純的測定方法

        1.5 最佳標記條件的選擇

        1.5.1pH值對放化純的影響 向12個西林瓶中各加入100 μL 50 g/L HBIDP的鈉鹽溶液、100 μL 1 g/L SnCl2·2H2O的鹽酸溶液、55.5 MBq新鮮淋洗的Na99TcmO4洗脫液,分別用pH為1至12的磷酸鹽緩沖液將其定容至2 mL,渦旋混合器充分混勻后開始計時,室溫(25±1)℃下反應(yīng)20 min用TLC法測定各個體系的放化純。

        1.5.4配體用量對放化純的影響 向10個西林瓶中分別加入含有2.0、2.5、3.0、3.5、4.0、4.5、5.0、6.0、8.0、10.0 mg HBIDP的鈉鹽溶液,再逐個加入100 μL 1 g/L SnCl2·2H2O的鹽酸溶液,新鮮淋洗的Na99TcmO4洗脫液55.5 MBq,用pH=6的磷酸鹽緩沖液將其定容至2 mL,渦旋混合器充分混勻后開始計時,室溫(25±1)℃下反應(yīng)20 min后用TLC法測定各個體系的放化純。

        1.5.5反應(yīng)時間對放化純的影響 向西林瓶中加入100 μL 50 g/L HBIDP的鈉鹽溶液,100 μL 1 g/L SnCl2·2H2O的鹽酸溶液,新鮮淋洗的Na99TcmO4溶液(55.5 MBq),用pH=6的磷酸鹽緩沖液將其定容至2 mL,渦旋混合器充分混勻后開始計時,室溫(25±1)℃下反應(yīng),在30 min之內(nèi),每5 min取樣1次測定不同時間下的放化純。

        1.6 脂水分配系數(shù)

        將磷酸鹽緩沖液與正辛醇超聲振蕩混合,使兩相互相飽和后分離貯存?zhèn)溆谩?/p>

        取2支放敏管,編為1號與2號,向二者均加入飽和的1.0 mL正辛醇和1.0 mL磷酸鹽緩沖溶液,其中向1號管所加磷酸鹽緩沖液pH=7.0,向2號管所加磷酸鹽緩沖液pH=7.4,然后向兩支管中均加入100 μL99Tcm-HBIDP溶液(約1.85 MBq),室溫下渦旋混合器混合振蕩2 min,然后離心5 min(4 000 r/min),以保證兩相完全分離,兩相各取100 μL測其放射性計數(shù)。計算脂水分配系數(shù)lgP=lg(有機相放射性計數(shù)/水相放射性計數(shù))。

        1.7 血漿蛋白結(jié)合率

        分別配制質(zhì)量濃度為100 g/L和250 g/L的三氯乙酸;取新鮮肝素抗凝血漿2 mL(江蘇省原子醫(yī)學(xué)研究所附屬江原醫(yī)院提供),于4 ℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

        取3支放敏管,各加入100 μL血漿和100 μL99Tcm-HBIDP溶液(約55.5 kBq),37 ℃水浴孵育2 h。給每管加入250 g/L三氯醋酸1 mL,以使血漿蛋白沉淀。上層清液和沉淀離心分離5 min(2 000 r/min),收集上清液。向沉淀中加入100 g/L的三氯醋酸1 mL,渦旋混合器混勻,離心5 min(2 000 r/min),收集上清液。此步驟重復(fù)操作3次。分別測定沉淀的放射性計數(shù)和上清液的放射性計數(shù),計算血漿蛋白結(jié)合率=沉淀物放射性計數(shù)/(沉淀物放射性計數(shù)+上清液放射性計數(shù))×100%。

        1.8 99Tcm-HBIDP在小鼠體內(nèi)分布實驗

        ICR小鼠35只,隨機分為7組,每組5只,每只小鼠尾靜脈注射200 μL新配制的99Tcm-HBIDP(約7.4 MBq),分別于注射后5、10、15、30、60、120、240 min時斷頸處死,先用一次性定量采血管取200 μL頸動脈血液,后解剖取心、肝、脾、肺、腎、大腿骨、關(guān)節(jié)、肌肉、腦等組織,稱重,用γ計數(shù)儀測定放射性計數(shù),同時測定標準液的放射性計數(shù),分別計算各臟器每克組織的攝取量(%ID/g)。

        2 結(jié)果與討論

        2.1 HBIDP的合成

        HBIDP的合成反應(yīng)前半步屬于膦?;磻?yīng),三氯化磷對于反應(yīng)的順利進行十分必要,沒有三氯化磷反應(yīng)不能進行[16]。該反應(yīng)是一個強烈的放熱反應(yīng),同時放出大量氯化氫氣體。當三氯化磷加入速度過快時,體系內(nèi)溫度快速升高,反應(yīng)異常劇烈,瞬間產(chǎn)生大量氣體,容易造成危險,同時造成產(chǎn)物產(chǎn)率低下。通過控制三氯化磷的滴加速度和加料時油浴溫度(70~80 ℃),既可以使反應(yīng)較快進行,又不致因反應(yīng)劇烈放熱和放出氣體使體積迅猛膨脹而發(fā)生危險,從而保證了反應(yīng)平穩(wěn)順利進行。由于該反應(yīng)是非均相反應(yīng),產(chǎn)率一般在40%~60%[7]。據(jù)文獻[17]報道,若用甲磺酸做溶劑,整個反應(yīng)過程保持均相反應(yīng),收率可達到90%,但后處理不如用氯苯簡單方便,且后者更廉價。

        本實驗所得目標物HBIDP,收率:50.0%;熔點:140~145 ℃;元素分析:實測值(理論值)C 32.89%(32.94%),H 5.61%(5.53%),N 8.49%(8.54%);IR(KBr,cm-1):3 155(s),2 962(s),2 875(s),2 318(br,w),1 598(m),1 520(m),1 467(w),1 164(s),985(s);ESI-MS,m/z(%):329(100)=M+1;1H NMR(400 MHz,D2O,δ):7.31(d,1H,ring-H),7.26(d,1H,ring-H),4.21(t,2H,N—CH2),3.58(t,2H,JH-P=12 Hz,CH2C—P),1.81(m,2H,N—CH2CH2),1.32(m,2H,—CH2CH3),0.91(t,3H,—CH3)。

        2.2 99Tcm-HBIDP的放射化學(xué)純度

        圖2 Na99TcmO4(a)和99Tcm-HBIDP(b)的HPLC譜圖分析

        2.3 最佳標記條件

        圖3 pH對99Tcm-HBIDP放化純的影響

        2.3.1pH值對放化純的影響結(jié)果 pH對放化純的影響示于圖3。從圖3可以看出,放化純對體系pH值變化很敏感。pH≈6時,放化純最高,達到95%以上;pH大于7或小于2時,放化純急劇下降,并小于90%。氯化亞錫在中性水溶液易分解生成沉淀,與堿作用生成水和氧化物沉淀,但堿量過剩時,生成能溶解的亞錫酸鹽,均會使還原性大大降低甚至消失。但酸性太強時,放化純也會明顯下降。這可能是因為強酸性條件下,大量質(zhì)子存在抑制了配位反應(yīng)的發(fā)生。據(jù)此,選擇pH=6作為標記反應(yīng)條件。

        圖4 氯化亞錫用量對99Tcm-HBIDP放化純的影響

        圖5 活度對99Tcm-HBIDP放化純的影響

        圖6 配體用量對99Tcm-HBIDP放化純的影響

        圖7 反應(yīng)時間對99Tcm-HBIDP放化純的影響

        2.3.5反應(yīng)時間對放化純的影響 反應(yīng)時間(treac)對放化純的影響示于圖7。從圖7可以看出,時間對放化純的影響較小。1 min內(nèi)放化純已達90%,說明此反應(yīng)十分迅速。15 min時RCP已達95%,時間再延長,標記率略有上升。為了縮短制備放射藥物的時間,15 min已經(jīng)可以滿足使用要求。

        2.4 99Tcm-HBIDP的體外穩(wěn)定性

        標記物良好的體外穩(wěn)定性是放射性藥物能被應(yīng)用的前提。將99Tcm-HBIDP置于室溫(25±1)℃下,分別于標記后1、2、3、4、5、6 h時取樣測定放化純。其結(jié)果示于圖8。由圖8可知,6 h時放化純大于90%,這說明99Tcm-HBIDP的體外穩(wěn)定性較好,滿足使用要求。

        圖8 99Tcm-HBIDP的體外穩(wěn)定性

        2.5 99Tcm-HBIDP的脂水分配系數(shù)

        99Tcm-HBIDP在pH為7.0和7.4時,脂水分配系數(shù)lgP分別為-2.17和-2.28,表現(xiàn)出很強的親水性。對骨顯像藥物而言,親水性越好,單位質(zhì)量的藥物在軟組織中的吸收將會相對下降,靶向組織(骨骼)中的攝取相對增加,有利于發(fā)揮藥物的顯像作用。

        2.6 99Tcm-HBIDP的血漿蛋白結(jié)合率

        99Tcm-HBIDP的血漿蛋白結(jié)合率為(31.41±1.25)%。99Tcm-ZL血漿蛋白結(jié)合率為17.40%[9]。前者血漿蛋白結(jié)合率高于后者,可能是分子中含有親脂性丁基,增加了其與蛋白的結(jié)合能力,從而使其血漿蛋白結(jié)合率增大。

        2.7 99Tcm-HBIDP在小鼠體內(nèi)分布實驗

        99Tcm-HBIDP小鼠體內(nèi)分布實驗結(jié)果列于表1。從表1可以看出,99Tcm-HBIDP主要集中在骨、關(guān)節(jié)和腎中,并且在骨中有高度選擇性的攝取。99Tcm-HBIDP在注射5 min后,在骨和關(guān)節(jié)中的攝取分別達到了(4.76±0.37)%ID/g和(11.55±0.85)%ID/g,并且逐漸增加,在30 min時達到最高,分別為(9.07±0.97)%ID/g和(30.12±2.36)%ID/g。隨著時間的延長,其在骨和關(guān)節(jié)中的吸收有所下降,但是在240 min時仍分別高達(6.83±0.14)%ID/g和(18.96±1.87)%ID/g,而藥物在心、肝、脾、肺等器官組織中已經(jīng)基本清除完畢。99Tcm-HBIDP在腎臟和血液中的攝取隨時間延長而快速下降,表明此藥物主要經(jīng)過腎臟代謝,經(jīng)由泌尿系統(tǒng)排出體外。隨著時間的延長,骨攝取與心、肝、脾、肺、血液中攝取的比值快速升高,有利于降低顯像本底,提高骨顯像質(zhì)量。圖9給出了99Tcm-HBIDP和99Tcm-ZL(其小鼠分布數(shù)據(jù)可參考文獻[9])不同時刻骨、心、肝和脾器官組織中的攝取值的對比。前者在骨中攝取60 min內(nèi)高于后者。在240 min內(nèi)99Tcm-HBIDP在心、肝和脾器官組織中的攝取遠低于99Tcm-ZL,表明99Tcm-HBIDP對這些重要臟器的傷害較小。總之,99Tcm-HBIDP有望成為新型骨顯像劑。

        表1 99Tcm-HBIDP小鼠體內(nèi)分布

        注(Note):1)量綱為1(Unit is 1)

        2)n=5

        圖9 99Tcm-HBIDP和99Tcm-ZL不同時刻的小鼠體內(nèi)分布

        3 結(jié) 論

        [1]Vbrbeke K,Rozenski J,Cleynhens B,et al.Deve-lopment of a Conjugate of99Tcm-EC With Aminomethylenediphosphosphonate in the Search for a Bone Tracer With Fast Clearance From Soft Tissue[J].Bioconjugate Chem,2002,13 (1): 6-22.

        [2]Subramanian G,Mcafee J G,Blair R J,et al.Technetium-99m-Methylene Diphosphonate-A Superior Agent for Skeletal Imaging: Comparison With Other Technetium Complexes[J].J Nucl Med,1975,16 (8): 744-755.

        [3]Ogawa K,Mukai T,Inoue Y,et al.Development of a Novel99Tcm-Chelate-Conjugated Bisphosphonate With High Affinity for Bone as a Bone Scintigraphic Agent[J].J Nucl Med,2006,47 (12): 2 042-2 047.

        [4]Fogelman I,Pearson D W,Bessent R G,et al.A Comparison of Skeletal Uptakes of Three Diphosphonates by Whole-Body[J].J Nucl Med,1981,22: 880-883.

        [5]Russell R G G,Croucher P I,Rogers M J.Bisphosphonates: Pharmacology,Mechanisms of Action and Clinical Uses[J].Osteoporosis Int Suppl,1999,2: S66-80.

        [6]Russell R G G,Rogers M J.Bisphosphonates: From the Laboratory to the Clinic and Back Again[J].Bone,1999,25 (1): 97-106.

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