顧曉東,梁慶威
(中國醫(yī)科大學附屬第一醫(yī)院骨科,沈陽110001)
如何理想的修復骨缺損一直是骨科領域的難題和研究熱點。自體骨及異體骨移植都存在難以克服的缺點。組織工程技術的發(fā)展為解決這一難題提供了新的思路和方法。目前,支架材料和成骨活性因子聯(lián)用修復骨缺損也成為組織工程中的一個研究熱點。納米羥基磷灰石/膠原復合骨模仿天然骨的成分及結構特征,具有良好的生物相容性、優(yōu)異的骨傳導性,可為細胞提供與天然骨相類似的微環(huán)境,這有助于骨系細胞的黏附、增殖及功能發(fā)揮[1~4]。血管內(nèi)皮生長因子能促進人工骨的早期血管化和成骨,本實驗聯(lián)合應用納米羥基磷灰石/膠原蛋白復合骨(nanohydroxyapatite/collagen,NHAC)和血管內(nèi)皮生長因子(vascular endothelial growth factor,VEGF) 修復大鼠橈骨缺損,采用10 ng、100 ng、300 ng的劑量梯度復合NHAC修復骨缺損,初步探討不同劑量VEGF修復骨缺損效果的差異以及VEGF用于骨缺損修復的適宜劑量。
1.1.1 動物:雄性Wistar大鼠30只,體質(zhì)量180~220 g,購自中國醫(yī)科大學實驗動物部。
1.1.2 試劑:納米羥基磷灰石粉末購自南京埃普瑞納米材料有限公司,膠原蛋白粉末購自湖州珍露生物制品有限公司。VEGF購自沈陽博爾美公司,由美國PeproTech公司生產(chǎn)。CD31抗體,購自武漢博士德生物科技有限公司。
1.2.1 制備NHAC以及含有不同劑量VEGF的人工骨,人工骨制成后環(huán)氧乙烷消毒,無菌袋封存?zhèn)溆茫?]。
1.2.2 動物分組、骨缺損模型的制備及材料植入:30只Wistar大鼠隨機數(shù)字表法分為5組:空白組、單純 NHAC 植 入 組 、NHAC/10 ngVEGF、NHAC/100 ngVEGF、NHAC/300 ngVEGF,每組 6只(12側(cè)橈骨),其中前兩組為對照組,后3組為實驗組。制備大鼠橈骨中段5 mm骨缺損模型,依據(jù)分組情況分別植入相應材料,空白組不植入任何材料,關閉切口,不做內(nèi)外固定。術后肌注青霉素8萬U,連續(xù)3 d。
1.2.3 大體觀察:術后觀察動物飲食、日?;顒幽芰靶g后傷口愈合情況。
1.2.4 組織學檢查:術后2、4、8周各組隨機選取2只動物處死,截取橈骨缺損區(qū)骨段,常規(guī)制作石蠟標本。每個標本做厚度為5 μm的縱向切片,行蘇木精-伊紅(HE)染色,光鏡下觀察骨形成及塑型情況,并采用Lane-Sandhu法組織學評分標準評分。
1.2.5 免疫組織化學血管染色及血管計數(shù):石蠟切片脫蠟水化后,一抗采用CD31抗體,常規(guī)ABC法行免疫組織化學染色。陽性染色表現(xiàn)為棕黃色或棕褐色顆粒著色于血管內(nèi)皮細胞胞質(zhì),每張切片隨機選取3個100倍視野計數(shù),取平均值。
術后各組大鼠活動及進食可,雙前肢腫脹,約1周左右腫脹消退,2周左右切口愈合,無感染化膿等不良反應,實驗過程中無大鼠死亡。
術后2周:空白組骨斷端為纖維結締組織,NHAC組及各實驗組有較多炎性細胞浸潤,有新生的島狀骨組織,各實驗組軟骨細胞生成較NHAC組多,其中NHAC/300 ngVEGF組的量在各實驗組最多。4周:各組骨缺損斷端均可見軟骨成骨過程,并可見大量的成骨細胞,其中NHAC/300 ngVEGF組軟骨細胞量最高,NHAC組、各實驗組的人工骨材料少量降解,部分區(qū)域有規(guī)則排列的骨小梁生成,骨小梁周圍可見類骨組織。術后8周:實驗組的人工骨材料大部分已經(jīng)降解,新生骨組織的形成量實驗組明顯高于NHAC組和空白組,其中NHAC/300 ngVEGF組的新骨形成量在各實驗組中最多。實驗組中可見大量成熟的板層狀骨組織,有規(guī)則的骨小梁形成,NHAC組新生骨的改建較各實驗組少??瞻捉M增生不活躍。見圖1。
除2周時NHAC組和NHAC/10 ngVEGF組織學評分差異無統(tǒng)計學意義外,各時間點血管內(nèi)皮生長因子/納米羥基磷灰石組組織學評分均高于納米羥基磷灰石組及空白組,其中以NHAC/300 ngVEGF組的評分在各組中最高,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。見表1。
復合VEGF人工骨組在早期(2周)即有大量的血管生成,明顯多于NHAC組(P<0.05);隨著人工骨的降解,新生血管逐漸增多,因此在4周內(nèi)各組血管逐漸增多(P<0.05);而隨著新生骨的改造,不成熟的毛細血管逐漸被少數(shù)主要血管取代,血管數(shù)量減少,所以復合VEGF人工骨組在第8周時血管數(shù)量減少。其中NHAC/300 ng VEGF組血管數(shù)量在各實驗組各時間點最多。見表2。
骨的血供十分豐富,血管生成對骨修復至關重要,新生血管不僅是氧氣、營養(yǎng)物質(zhì)和生長因子的運輸通道,而且可為骨修復提供所需的間充質(zhì)細胞及成骨細胞。缺乏良好的血供將導致骨愈合不良[6]。許多研究表明,在骨折愈合過程中,血管的生成要先于新骨形成[7,8]。血管內(nèi)皮生長因子不僅能誘導血管內(nèi)皮細胞生長、增殖,抑制血管內(nèi)皮細胞凋亡,誘導血管平滑肌細胞遷移,促進血管生成[9]。而且,VEGF能促進成骨細胞分化、遷移、擴增[10]。
局部單純應用VEGF因缺乏可吸附的支撐物而被迅速降解或隨體液擴散,從而不能均勻持久地分布在骨缺損部位,不但不能保證局部作用的發(fā)揮,而且還會產(chǎn)生異位成骨或血管瘤等并發(fā)癥。本實驗采用的NHAC是生長因子的良好載體,可以對附著的VEGF提供緩釋作用,從而使VEGF進入體內(nèi)后不會快速擴散和分解。
本實驗免疫組織化學染色表明,各實驗組在2周時血管生長旺盛,為快速血管化階段,在4周時,血管數(shù)量達到高峰。隨著骨組織的成熟和改建,不成熟的毛細血管逐漸被少數(shù)主要血管取代,血管數(shù)量減少,在8周時,各實驗組血管數(shù)量下降。在各時間段,NHAC/300 ngVEGF組的血管數(shù)量最多,與其它各組相比,差異有統(tǒng)計學意義。而空白組和NHAC組的血管數(shù)量在8周時最多。這表明VEGF能促進人工骨的早期血管化過程,并且隨著VEGF劑量的增加,血管的生成也增加。組織學表明各實驗組對骨缺損的修復效果要優(yōu)于單純應用NHAC,且隨著VEGF劑量的增加,骨缺損的修復效果增加。組織學評分以NHAC/300 ng VEGF組最高,和其它組相比差異有統(tǒng)計學意義。本實驗表明,復合了血管內(nèi)皮生長因子的NHAC比單純的納米羥基磷灰石/膠原蛋白復合骨的骨修復能力更強。另外,血管化程度與新骨形成的數(shù)量呈正相關。正是由于血管的大量長入,使人工骨再血管化,從而為骨修復提供所需的間充質(zhì)細胞及成骨細胞,進而促進新生骨組織的形成。
[1]馮慶玲,崔福齋,張偉.納米羥基磷灰石/膠原骨修復材料[J].中國醫(yī)學科學院學報,2002,24(2):124-128.
[2]Kikuchi M,Itoh S,Ichinose S,et al.Self-organization mechanism in a bone-like hydroxyapatite/collagen nanocomposite synthesized in vitro and its biological reaction in vivo [J].Biomaterials,2001,22(13):1705-1711.
[3]Itoh S,Kikuchi M,Koyama Y,et al.Development of an artificial vertebral body using a novel biomaterial,hydroxyapatite/collagen composite[J].Biomaterials,2002,23(19):3919-3926.
[4]廖素三,崔福齋,張偉.組織工程中膠原基納米骨復合材料的研制[J].中國醫(yī)學科學院學報,2003,25(l):36-38.
[5]宋坤修,何愛詠,謝求恩.納米羥基磷灰石/膠原復合材料結合血管內(nèi)皮生長因子修復兔橈骨缺損[J].中國組織工程研究與臨床康復,2009,13(34):6624-6628.
[6]Carano RA,F(xiàn)ilvaroff EH.Angiogenesis and bone repair[J].Drug Discov Today,2003,8(21):980-989.
[7]Chen M,Song K,Rao N,et al.Roles of exogenously regulated bFGF expression in angiogenesis and bone regeneration in rat calvarial defects[J].Int J Mol Med,2011,27(4):545-553.
[8]Sojo K,Sawaki Y,Hattori H,et al.Immunohistochemical study of vascular endothelial growth factor (VEGF)and bone morphogenetic protein-2,-4(BMP-2,-4)on lengthened rat femurs[J].J Craniomaxillofac Surg,2005,33(4):238-245.
[9]Ho QT,Kuo CJ.Vascular endothelial growth factor:biology and therapeutic applications [J].Int J Biochem Cell Biol,2007,39(7-8):1349-1357.
[10]Mayr-Wohlfart U,Waltenberger J,Hausser H,et al.Vascular endothelial growth factor stimulates chemotactic migration of primary human osteoblasts[J].Bone,2002,30(3):472-477.