王媛 魏紅 中國醫(yī)科大學(xué)附屬盛京醫(yī)院, 遼寧沈陽
毛囊干細(xì)胞在毛發(fā)生長發(fā)育中的作用
王媛 魏紅 中國醫(yī)科大學(xué)附屬盛京醫(yī)院, 遼寧沈陽
毛發(fā)是由毛囊隆突區(qū)的毛囊干細(xì)胞分化而來的。在這個(gè)分化過程中,毛囊干細(xì)胞會(huì)受到一些信號的調(diào)節(jié),進(jìn)而影響毛發(fā)的生長發(fā)育或再生。本文大致介紹了影響毛囊干細(xì)胞的一些信號是如何影響了這個(gè)過程,從而導(dǎo)致了毛發(fā)數(shù)量的改變。
毛囊干細(xì)胞;毛發(fā)生長發(fā)育;Wnt;TERT;E-cadherin;TGF—β
成熟毛囊由屬于上皮部分的外根鞘(outer root sheath,ORS)與內(nèi)根鞘(inner root sheath,IRS)和屬于真皮部分的毛乳頭(dermal papilla)與真皮鞘組成。在毛囊的隆突區(qū)(Bulge)有一個(gè)干細(xì)胞池,是角質(zhì)形成細(xì)胞、黑素細(xì)胞和間質(zhì)真皮細(xì)胞的干細(xì)胞庫。毛發(fā)的再生和之后進(jìn)入循環(huán)周期就是由此開始的。毛囊下段結(jié)構(gòu)退化、破壞后,下游信號驅(qū)使毛囊降低并攜帶真皮乳頭細(xì)胞到達(dá)隆突部,使隆突部的微環(huán)境改變,激活隆突部的1-2個(gè)毛囊干細(xì)胞迅速增殖分化形成新的毛囊和毛發(fā)[1]。(圖1)
毛囊是人體少有的一生都具有退化和再生能力的器官。毛囊的循環(huán)周期分三個(gè)期:生長期(毛發(fā)生長初期anagen)、退行期(毛發(fā)生長中期catagen)及休眠期(毛發(fā)生長末期telogen)?;|(zhì)細(xì)胞有時(shí)又被稱為移行增殖(transit-amplifying)細(xì)胞,因?yàn)樗鼈冎淮婊钣谏L期。在對小鼠的研究中發(fā)現(xiàn),出生后兩周的小鼠,其最初供應(yīng)的基質(zhì)細(xì)胞已經(jīng)有所減少,發(fā)軸和IRS的分化速度減慢,毛囊進(jìn)入退行期[2]。在這段大約維持3~4天的時(shí)間里,毛囊因細(xì)胞凋亡而形成表皮strand。這使真皮乳頭上移至上部永遠(yuǎn)沒有周期循環(huán)的毛囊附近,進(jìn)入休眠期。[1]
皮膚間質(zhì)細(xì)胞與重疊的上皮細(xì)胞相互作用,可誘導(dǎo)毛發(fā)基板的生成。外胚層的Wnt信號在基板形成過程中起主導(dǎo)作用。Wnt信號與早期真皮信號聯(lián)合,誘使表皮細(xì)胞向下移行形成新生毛發(fā)或基板。這些早期真皮信號包括成纖維細(xì)胞生長因子(fibroblast growth factors ,F(xiàn)GFs)[3][4],骨形態(tài)蛋白(bone morphogenetic proteins ,BMPs)抑制因子[5][6]等。當(dāng)BMP過度表達(dá)或缺少BMP抑制物noggin或FGF10/FGF7受體FGFRⅢb時(shí),毛囊密度有所下降[4][7][8]。隆突細(xì)胞對Wnt應(yīng)答,證據(jù)是這些細(xì)胞表達(dá)TCF3、TCF4和一些Wnt受體蛋白(FZDs)。隆突部高水平的Wnt信號有助于毛囊干細(xì)胞發(fā)育成毛發(fā)結(jié)構(gòu),當(dāng)抑制Wnt信號時(shí)毛囊干細(xì)胞就會(huì)向皮脂腺和表皮分化。
在毛發(fā)發(fā)育的過程中,角蛋白是最主要的結(jié)構(gòu)蛋白,角蛋白家族在毛囊的不同細(xì)胞層中有不同的表達(dá)。在研究其原因的過程中研究者發(fā)現(xiàn),發(fā)軸Ha/Hb角蛋白基因是真正的Wnt靶基因,而且Wnt信號在沿著發(fā)軸的基質(zhì)細(xì)胞的分化中起著重要作用[9]。激活的β-連環(huán)蛋白(β-catenin)起著非常關(guān)鍵的毛囊發(fā)育起始誘導(dǎo)作用,可在人和老鼠身上導(dǎo)致pilomatricoma—毛發(fā)腫瘤[10][11]。而位于其下游的分泌型蛋白Sonichedgehog(Shh)在表皮一間質(zhì)信號中起主要作用,調(diào)節(jié)毛囊表皮增生和進(jìn)一步向間質(zhì)生長及毛乳頭形成。重要的發(fā)軸轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)蛋白HOXC13和FOXN1發(fā)生突變時(shí)可導(dǎo)致毛發(fā)缺陷[12][13]。相反的,編碼GATA-結(jié)合因子(Gata-3)和CCAATdisplacement蛋白(Cdp)發(fā)生突變會(huì)導(dǎo)致原發(fā)性內(nèi)根鞘(IRS)缺陷,進(jìn)而導(dǎo)致發(fā)軸的改變[14][15]。(圖3)
毛囊發(fā)育過程中關(guān)鍵的一步是上皮干細(xì)胞的重排。通過兩條信號傳導(dǎo)通路Wnt和noggin的相互作用,從而減少一種介導(dǎo)細(xì)胞之間連接的粘連蛋白—E-cadherin的生成,在此過程中起了重要的作用[6]。(圖4)毛囊干細(xì)胞要分化形成毛囊,首先要打破與相鄰細(xì)胞和基質(zhì)的連接,然后干細(xì)胞重排,形成胚芽。調(diào)節(jié)基因表達(dá)的轉(zhuǎn)錄因子,特別是Lef1轉(zhuǎn)錄復(fù)合物誘導(dǎo)了毛囊干細(xì)胞胚芽的形成[17-19]。過度表達(dá)Lef1的小鼠身上長出了多余的毛囊,即使本來少毛的組織也是如此;相反的,未表達(dá)Lef1的小鼠則出現(xiàn)毛發(fā)生成受損的情況。Wnt通路通過穩(wěn)定Lef1激活蛋白—β-catenin來作用于Lef1[18],之后Lef1轉(zhuǎn)錄復(fù)合物下調(diào)E-cadherin在胚芽的表達(dá)[20]。毛囊發(fā)育需要許多蛋白家族的協(xié)同作用,包括FGF,BMP,Shh和Notch家族以及一些轉(zhuǎn)錄因子[17]。然而,當(dāng)編碼BMP抑制物的noggin基因被敲除時(shí),毛發(fā)的生長發(fā)育嚴(yán)重受損。[21]
TERT,端粒酶中維持端粒功能的蛋白質(zhì)[23][24],在90%的人類癌癥中有再激活現(xiàn)象;它也可以表達(dá)于正常組織中的干細(xì)胞和祖細(xì)胞(基質(zhì)細(xì)胞)[25]。研究發(fā)現(xiàn),在小鼠皮膚上皮有條件的轉(zhuǎn)化的TERT可使毛發(fā)從毛發(fā)生長后期(休眠期)迅速進(jìn)入毛發(fā)生長初期,因而促進(jìn)針毛的生長。TERT的過度表達(dá)通過引起毛囊隆突區(qū)干細(xì)胞增殖從而促進(jìn)了毛發(fā)的生長。TERT的這一功能不需要端粒酶RNA的參與,因此是通過一種不依賴合成端粒重復(fù)序列活性的機(jī)制。TERT通過一種非常規(guī)的通路促進(jìn)休眠干細(xì)胞的增殖。
為了測定TERT是否可以調(diào)節(jié)成人組織中干細(xì)胞和祖細(xì)胞的功能,KavitaY.Sarin等人以小鼠為實(shí)驗(yàn)對象用四環(huán)素調(diào)節(jié)的方法[26]建立了一個(gè)有條件的TERT轉(zhuǎn)錄的模型。這種老鼠被稱為被誘導(dǎo)的TERT(i-TERT)老鼠。為了誘導(dǎo)TERT的表達(dá),i-TERT老鼠被注射含有四環(huán)素類似物多西環(huán)素(doxycycline)的飲用水。經(jīng)過幾周的多西環(huán)素注射,i-TERT老鼠發(fā)生可以影響毛囊循環(huán)的突變,皮毛明顯出現(xiàn)了變化。為了進(jìn)一步測定在毛囊循環(huán)中發(fā)生的異常是否影響毛發(fā)表型的改變,研究者在實(shí)驗(yàn)開始21天后分析了皮膚切片。第28天,無論是否注射多西環(huán)素的i-TERT老鼠,其毛囊細(xì)胞均在生長期。第50天,未注射多西環(huán)素的i-TERT老鼠和非轉(zhuǎn)錄老鼠已經(jīng)進(jìn)入出生后第二個(gè)休眠期;而注射了多西環(huán)素的i-TERT老鼠仍然在生長期。這個(gè)結(jié)果具有多西環(huán)素依賴性,且發(fā)生率100%。實(shí)驗(yàn)結(jié)果證明有條件誘導(dǎo)的TERT可以促進(jìn)毛囊進(jìn)入生長期(圖5)。
為了測定TERT的表達(dá)是否足夠誘導(dǎo)毛囊從休眠期進(jìn)入生長期,然后使毛發(fā)生長,研究者又作了進(jìn)一步的實(shí)驗(yàn)。i-TERT老鼠在第45天注射含多西環(huán)素的飲用水,在第55天拔毛。拔毛后14天,注射有多西環(huán)素的i-TERT老鼠有明顯的毛發(fā)生長現(xiàn)象,而未注射多西環(huán)素的i-TERT老鼠和非轉(zhuǎn)錄老鼠此時(shí)均沒有長出毛發(fā)。實(shí)驗(yàn)結(jié)果證明,誘導(dǎo)的TERT有足夠能力促使休眠期的毛囊進(jìn)入生長期,促進(jìn)新生毛發(fā)生長。(圖6)
(四)轉(zhuǎn)化生長因子(TGF)—β超家族
轉(zhuǎn)化生長因子(TGF)—β超家族對調(diào)控毛囊的形態(tài)學(xué)發(fā)生和周期性循環(huán)起著非常重要的作用。
1、形態(tài)學(xué)發(fā)生
在表皮中過度表達(dá)TGF-β1的轉(zhuǎn)基因小鼠,出生時(shí)毛囊數(shù)量減少約70%,提示TGF-β1抑制毛囊的形態(tài)學(xué)發(fā)生[27]。Foitzik K[28]等人通過對敲除了TGF-β基因的小鼠模型的研究發(fā)現(xiàn),TGF-β1敲除的小鼠毛囊形態(tài)學(xué)發(fā)生明顯延遲,毛囊數(shù)量減少50% ,TGF-β2敲除的小鼠毛囊輕微增加。在胚胎小鼠皮膚體外培養(yǎng)時(shí),加入TGF-β2可以誘導(dǎo)毛囊的形態(tài)學(xué)發(fā)生, 而TGF-β1則抑制毛囊的形態(tài)學(xué)發(fā)生。研究提示,TGF-β2對毛囊的形態(tài)學(xué)發(fā)生有促進(jìn)作用,而TGF-β1對毛囊的形態(tài)學(xué)發(fā)生有雙向作用。
2、周期性循環(huán)
TGF-β1敲除的小鼠生長期向退行期的轉(zhuǎn)變明顯延遲[29],給小鼠背部皮膚局部注射TGF-β1,毛囊提前進(jìn)入退行期,因此TGF-β1通過抑制細(xì)胞增殖和促進(jìn)細(xì)胞凋亡而誘導(dǎo)小鼠毛囊由生長期向退行期轉(zhuǎn)變。雄激素能夠上調(diào)共培養(yǎng)的毛乳頭細(xì)胞合成與分泌TGF-β1,而且TGF-β1的中和性抗體能夠?qū)剐奂に貙才囵B(yǎng)的角質(zhì)形成細(xì)胞的生長抑制作用。所以,在雄激素脫發(fā)中,雄激素通過誘導(dǎo)毛乳頭細(xì)胞表達(dá)TGF-β1而抑制了毛囊角質(zhì)形成細(xì)胞的增殖。即TGF-β1可能參與了雄激素性脫發(fā)的發(fā)生。[30]
TGF-β2可以抑制體外培養(yǎng)的人頭皮毛囊毛干的延長,誘導(dǎo)毛囊發(fā)生退行期樣的形態(tài)學(xué)改變[31][32],它可能通過活化半胱天冬酶(caspase)網(wǎng)絡(luò)而誘導(dǎo)毛囊上皮細(xì)胞發(fā)生凋亡[33]。
由于TGF-β1和TGF-β2能夠誘導(dǎo)毛囊由生長期向退行期轉(zhuǎn)變,因此如果局部應(yīng)用TGF-β1、TGF-β2或TGF-β受體拮抗劑將有望治療雄激素性脫發(fā)等與退行期提前發(fā)生有關(guān)的毛發(fā)疾病。相反,應(yīng)用其激動(dòng)劑則可以治療多毛癥等一些與生長期延長有關(guān)的毛發(fā)疾病。[35]
(五)影響毛發(fā)循環(huán)周期的其他物質(zhì)
有一些分子調(diào)節(jié)物質(zhì)參與了毛發(fā)的周期調(diào)控。最近被發(fā)現(xiàn)的物質(zhì)是K17[35]。K17與一個(gè)依賴腫瘤壞死因子受體1(TNFR1)信號的死亡配體(death adaptor)蛋白結(jié)合,誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡進(jìn)入退化期。在對相關(guān)基因的研究中發(fā)現(xiàn)一個(gè)包含了維生素D-類維生素A的X受體-α轉(zhuǎn)錄因子(vitamin D-retinoid X receptor- transcription factor)和共同作用的抑制蛋白hairless的轉(zhuǎn)錄復(fù)合物。當(dāng)這個(gè)復(fù)合物有缺陷時(shí),就會(huì)減弱毛發(fā)生長中期在上皮strand中的相關(guān)缺陷,隔開真皮乳頭,阻礙新的毛發(fā)生長[36]。
環(huán)孢素A(cyclosporin A)是另一種刺激毛發(fā)生長的物質(zhì),他可以促進(jìn)毛發(fā)生長初期,抑制毛發(fā)生長中期[2][36][37]。鑒于βcatenin的穩(wěn)定同樣具有促進(jìn)毛發(fā)生長初期,因此推斷cyclosporin A的作用方式可能是使β-catenin穩(wěn)定,而Wnt受體的活性主要反映了β-catenin/LEF/TCF調(diào)節(jié)基因的活化。[1]
參考資料
[1]Elaine Fuchs. Scratching the surface of skin development. NATURE. 2007; 445: 834-842.
[2]Schmidt-Ullrich, R. & Paus, R. Molecular principles of hair follicle induction and morphogenesis.Bio Essays. 2005; 27: 247-261.
[3]Davidson, D. The mechanism of feather pattern development in the chick. II. Control of the sequence of pattern formation. J. Embryol. Exp. Morphol.1983; 74: 261-273.
[4]Petiot, A. et al. A crucial role for Fgfr2-IIIb signalling in epidermal development and hair follicle patterning. Development. 2003; 130: 5493-5501.
[5]Jung, H. S. et al. Local inhibitory action of BMPs and their relationships with activators in feather formation: implications for periodic patterning. Dev Biol. 1998; 196: 11-23.
通過以上文獻(xiàn)分析,筆者認(rèn)為,在蘭克韋爾德(Lankveld,2016)等人得出的教師個(gè)體的增值感、與其他教師的關(guān)聯(lián)感、自我勝任感、對教育的承諾感和對未來職業(yè)道路的想象這五個(gè)教師專業(yè)身份發(fā)展過程中,教師個(gè)體的增值感、勝任感和與其他教師的關(guān)聯(lián)感,可歸于教師自我效能與教師工作滿意度的范疇,而教師的承諾感和對未來職業(yè)道路的想象,可歸于教師教學(xué)動(dòng)機(jī)和教師職業(yè)承諾的范疇,因而,本文認(rèn)為,教師的教學(xué)動(dòng)機(jī)、自我效能、工作滿意度和職業(yè)承諾是教師專業(yè)身份發(fā)展的重要環(huán)節(jié),也是判定教師專業(yè)身份形成的指標(biāo),四者之間相互關(guān)聯(lián)相互影響。
[6]Noramly, S. & Morgan, B. A. BMPs mediate lateral inhibition at successive stages in feather tract development. Development. 1998; 125: 3775-3787.
[7]Botchkarev, V. A. et al. Noggin is a mesenchymally derived stimulator of hair-follicle induction. Nature Cell Biol. 1999; 1: 158-164.
[8]Mou, C. et al. Generation of the primary hair follicle pattern. Proc. Natl Acad. Sci. USA. 2006;103: 9075-9080.
[9]Merrill,B.J. et al. Tcf3 and Lef1 regulate lineage differentiation of multipotent stem cells in skin. Genes Dev. 2001; 15.
[10]Gat, U. et al. De novo hair follicle morphogenesis and hair tumors in mice expressing a truncated -catenin in skin. Cell. 1998; 95; 605-614.
[11]Chan, E. F. et al. A common human skin tumour is caused by activating mutations in -catenin. Nature Genet. 1999; 21: 410-413.
[12]Godwin, A. R. & Capecchi, M. R. Hoxc13 mutant mice lack external hair. Genes Dev. 1998;12: 11-20.
[14] Ellis, T. et al. The transcriptional repressor CDP(Cutl1) is essential for epithelial cell differentiation of the lung and the hair follicle. Genes Dev. 2001; 15:2307-2319.
[15] Kaufman, C. K. et al. GATA-3: an unexpected regulator of cell lineage determination in skin. Genes Dev. 2003; 17: 2108-2122.
[16]Yann Barrandon. A hairy situation. NATURE.2003; 422: 272-273.
[17]Fuchs, E. & Raghavan, S. Nature Rev.Genet. 2002; 3: 199-209.
[18]Eastman, Q. & Grosschedl, R. Curr. Opin. Cell Biol. 1999; 11: 233-240.
[19]Huelsken, J. et al. Cell. 2001; 105: 533-545.
[20]Jamora, C. et al. Nature. 2003; 422: 317-322.
[21]Botchkarev, V. A. et al. Nature Cell Biol.1999; 1: 158-164.
[22]KavitaY.Sarin, et al. Conditional telomerase induction causes proliferation of hair follicle stem cells.NATURE. 2005; 436: 1048-1052.
[23]Blackburn,E.H. Switching and signalling at the telomere. Cell. 2001; 106: 661-673.
[24]Smogorzewska,A. & DeLange,T. Regulation of telomerase by telomeric proteins. Annu.Rev.Biochem.2004; 73: 177-208.
[25]Morrison,S.J. et al. Telomerase activity in hematopoietic cells is associated with self-renewal potential. Immunity. 1996; 5: 207-216.
[26]Gossen,M. & Bujard,H. Tight control of gene expression in mammalian cells by tetracyclineresponsive promoters. Proc.Natl Acad.Sci.USA. 1992;89: 5547-5551.
[27]Sellheyer,K. et al. Inhibition of skin development by overexpression of transforming growth factor eta 1 in the epidermis of transgenic mice[J]. Proc Natl Acad Sci USA. 1993; 90 (11): 5237-5241.
[28]Foitzik K et al. The TGF--β2 isoform is both a required and sufficient inducer of murine hair follicle morphogenesis. Dev Biol. 1999; 212(2).
[29]Foitzik,K. et al. Control of murine hair follicle
regression (catagen) by TGF-beta1 in vivo[J].FASEB J. 2000; 14(5): 752-760.
[30]Inui, S. et al. Androgen-inducible TGF-β1 from balding dermal papilla cells inhibits epithelial cell growth: a clue to understand paradoxical effects of androgen on human hair growth. FASEB J. 2002;16(14): 1967-1969.
[31]Soma,T. et al. Involvement of transforming growth factor-beta2 in catagen induction during the human hair cycle [J]. J Invest Dermatol. 2002;118(6): 993-997.
[32]Soma,T. et al. Analysis of apoptotic cell death in human hair follicles in vivo and in vitro [J]. J Invest Dermatol. 1998; 111(6): 948-954.
[33]Tsuji,Y. et al. Apotential suppressor of TGF-beta delays catagen progression in hair follicles [J]. J Investig Dermatol Symp Proc. 2003; 8(1): 65-68.
[34]周乃慧,范衛(wèi)新. 轉(zhuǎn)化生長因子-β在毛囊生物學(xué)中的研究進(jìn)展. 臨床皮膚科雜志 2008; 37(1): 63-65.
[35] Tong, X. &Coulombe, P. A. Keratin 17 modulates hair follicle cycling in a TNF-dependent fashion. Genes Dev. 2006; 20.
[36] Potter, G. B. et al. The hairless gene mutated in congenital hair loss disorders encodes a novel nuclear receptor corepressor. Genes Dev. 2001; 15:2687-2701.
[37] Langbein, L. & Schweizer, J. Keratins of the human hair follicle. Int. Rev. Cytol. 2005; 243:1-78.
10.3969/j.issn.1001-8972.2011.07.130