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        高效液相色譜法分析胞內S-腺苷-L-甲硫氨酸含量及其合成酶活性的優(yōu)化研究

        2011-07-25 12:36:10姚高峰秦秀林錢江潮
        化學與生物工程 2011年6期
        關鍵詞:甲硫氨酸胞內腺苷

        姚高峰,秦秀林,儲 炬,錢江潮

        (華東理工大學 生物反應器工程國家重點實驗室,上海 200237)

        S-腺苷-L-甲硫氨酸(S-Adenosyl-L-methionine,簡稱SAM)是一種重要的中間代謝物,廣泛存在于微生物、動物、植物體內,可作為甲基、亞甲基、氨基、核糖、氨丙基的供體,參與體內的各種生化反應[1~3]。作為一種具有重要生理活性的物質,SAM在治療肝炎、肝功能紊亂、關節(jié)炎、抑郁癥、心血管等疾病以及抗衰老、防癌[4]等方面發(fā)揮著重要作用[5,6],市場需求日益增大。

        生物反應器工程國家重點實驗室通過在重組畢赤酵母(Pichiapastoris)中高效表達SAM合成酶,獲得了能大量積累SAM的重組菌G/DS16[7]。但利用HPLC方法定量分析胞內SAM含量及SAM合成酶活性時存在保留時間長或峰寬、分離效果不佳的問題[8~10]。

        針對胞內SAM抽提液及SAM合成酶測定體系中SAM的分離,作者對HPLC方法的流動相和洗脫程序進行優(yōu)化,以建立一種分離效果好、精確度高、重復性好、保留時間適中的SAM定量分析方法,用于測定胞內SAM含量與SAM合成酶活性。

        1 實驗

        1.1 材料、試劑與儀器

        SAM標準品,Sigma公司;ATP、L-Met,上海生工生物工程有限公司;高氯酸、甲酸銨、甲酸均為分析純;水為雙蒸水。

        Agilent HP1100型高效液相色譜儀,Thermo Scientific型冷凍離心機,QT-1型漩渦混合器,電子天平,恒溫水浴鍋,0.22 μm水相濾頭等。

        1.2 菌種

        菌種G/DS16,自行構建保藏[7]。G/DS16為基因工程改造菌,甲醇誘導并補加甲硫氨酸后胞內SAM合成酶活性增大,SAM含量較高。

        1.3 色譜條件

        Thermo-BioBasic SCX色譜柱(4.6 mm×250 mm,5 μm),流動相為甲酸銨溶液(pH值4.0),流速1 mL·min-1,檢測波長254 nm,柱溫25 ℃,進樣量10 μL。

        1.4 流動相的配制

        準確稱取31.5 g甲酸銨溶于水中,定容至1000 mL,配制成濃度為0.5 mol·L-1的甲酸銨溶液,用甲酸調pH值4.0左右。取0.5 mol·L-1甲酸銨溶液適量,稀釋至終濃度為5 mmol·L-1,用甲酸調pH值4.0左右。流動相現(xiàn)配現(xiàn)用,0.22 μm水相濾頭過濾。

        1.5 標準溶液的配制

        準確稱取SAM標準品25 mg,加水溶解,定容,配制成濃度為1.0 g·L-1的標準品儲備液。取適量標準品儲備液加水稀釋,得濃度分別為0.5 g·L-1、0.35 g·L-1、0.25 g·L-1、0.15 g·L-1、0.05 g·L-1的標準溶液。進樣前用0.22 μm水相濾頭過濾。

        1.6 樣品制備

        1.6.1 胞內SAM抽提樣品

        取G/DS16發(fā)酵液1 mL,12 000 r·min-1離心2 min,去上清,加入1 mL10%三氯乙酸(TCA)重懸,于4 ℃靜置抽提2 h,離心后取上清液,用0.22 μm水相濾頭過濾,待測。

        1.6.2 SAM合成酶活性測定樣品

        發(fā)酵過程中SAM合成酶的酶活水平是通過測定體外酶促反應液的SAM含量來監(jiān)控的。取1 mL G/DS16發(fā)酵液,離心去上清,加1 mL緩沖溶液和等體積的酸洗玻璃珠,按冰水浴30 s、振蕩破碎30 s交替進行8次,12 000 r·min-1、4 ℃離心7 min以上,上清即為粗酶液。SAM合成酶活性測定反應體系見表1。

        表1 SAM合成酶活性測定反應體系

        反應體系在37 ℃反應1 h,加500 μL 20%高氯酸,4 ℃放置0.5 h以上終止反應,12 000 r·min-1、4 ℃離心10 min以上,取上清,用0.22 μm水相濾頭過濾,待測。以不加粗酶液、ATP或L-Met的反應體系作為對照。

        2 結果與討論

        2.1 流動相與洗脫程序的優(yōu)化

        首先以普遍使用的0.5 mol·L-1(pH值4.0)甲酸銨作為流動相進行HPLC測定,結果見圖1。

        ★—SAM —雜質(a)SAM標準品 (b)SAM合成酶活性測定對照組 (c)SAM合成酶活性測定樣品 (d)胞內SAM抽提樣品

        由圖1可知,對于SAM合成酶活性測定反應體系,0.5 mol·L-1甲酸銨溶液作為流動相的分離效果不佳。SAM合成酶活性測定對照組分離時在SAM峰相應處出現(xiàn)一個雜質峰(圖1b),這可能是由于其中含有ATP、L-Met以及反應生成的一些雜質,這些物質的保留時間與SAM相同,造成了對SAM測定的干擾。而檢測SAM合成酶活性測定樣品時,雜質峰與SAM峰重疊(圖1c),嚴重影響了測定結果的準確性。而且,采用0.5 mol·L-1甲酸銨為流動相,5 min之內可完成洗脫過程,SAM保留時間過短,即使在胞內抽提樣品中,也存在保留時間相近的其它物質(圖1d),嚴重影響了分離效果。

        為了獲得較好的分離效果,針對流動相和洗脫程序進行優(yōu)化。通過改變流動相中的甲酸銨濃度來調節(jié)保留時間,優(yōu)化的洗脫程序如下:以5 mmol·L-1的甲酸銨洗脫5 min,去除大量雜質;然后提高甲酸銨的濃度(0.5 mol·L-1甲酸銨∶5 mmol·L-1甲酸銨=9∶1)洗脫4 min;再用0.5 mol·L-1的甲酸銨洗脫3 min,將SAM洗脫;最后用5 mmol·L-1的甲酸銨重新平衡柱子。整個洗脫過程中,流動相的pH值為4.0,流速為1 mL·min-1。

        在優(yōu)化的流動相和洗脫程序下進行HPLC測定,結果見圖2。

        ★—SAM —雜質(a)SAM標準品 (b)SAM合成酶活性測定對照組 (c)SAM合成酶活性測定樣品 (d)胞內SAM抽提樣品

        由圖2可知,SAM標準品保留時間為10.1 min左右,峰形較好(圖2a);SAM合成酶活性測定對照組樣品中的雜質與SAM得到了很好的分離(圖2b);SAM合成酶活性測定樣品以及胞內SAM抽提樣品中SAM組分都得到了有效分離,峰寬、峰形較理想,沒有雜質峰的干擾(圖2c、d)。這說明適合的SAM保留時間排除了保留時間短可能造成的溶劑峰干擾,且相對于反相C18柱法較長的保留時間[11],該方法的檢測效率明顯提高。

        2.2 SAM的標準曲線

        取濃度為0.05~0.5 g·L-1的SAM標準溶液,采用優(yōu)化的流動相和洗脫程序進行HPLC分析,以峰面積(y)對SAM濃度(x)繪制標準曲線,見圖3。

        圖3 SAM的標準曲線

        由圖3可知,在0.05~0.5 g·L-1濃度范圍內,SAM的濃度和峰面積線性關系良好,標準曲線方程為y=25.5+7098.0x,R2為0.99996。

        2.3 精密度

        取10 μL 250 mg·L-1的SAM標準溶液進樣,平行測定5次,結果見表2。

        表2 精密度實驗結果(n=5)

        由表2可知,相對標準偏差為0.45%,表明該方法精密度良好。

        2.4 重復性

        分別取同一SAM合成酶活性測定樣品和胞內SAM抽提樣品10 μL進樣,平行測定5次,結果見表3。

        表3 重復性實驗結果(n=5)

        由表3可知,相對標準偏差分別為0.49%和0.59%,表明該方法重復性良好。

        2.5 回收率

        分別取已知濃度SAM合成酶活性測定樣品和胞內SAM抽提樣品各6份,3份一組,各添加2個不同濃度(100 mg·L-1、300 mg·L-1)的SAM標準品,按優(yōu)化色譜條件進樣,結果見表4。

        表4 加樣回收率實驗結果

        由表4可知,平均回收率為99.3%~100.5%,相對標準偏差為0.72%~0.98%,表明該方法回收率高,準確可靠。

        2.6 穩(wěn)定性

        取同一SAM合成酶活性測定樣品和胞內SAM抽提樣品,每隔2 h進樣測定,平行測定5次,結果見表5。

        表5 穩(wěn)定性實驗結果(n=5)

        由表5可知,相對標準偏差分別為0.76%和0.69%,表明該方法穩(wěn)定性良好,能夠適用于長時間、多樣品的測定。

        2.7 SAM合成酶活性測定對照組的考察

        在SAM合成酶活性測定過程中需要設置對照組以扣除本底水平的SAM,一般以不加ATP(對照組1)或不加L-Met(對照組2)為對照組。針對兩種情況進行考察,結果見表6。

        表6 SAM合成酶活性測定對照組的考察

        由表6可知,實驗組的SAM峰面積為4749.7,而對照組1為98.2、對照組2為33.1,兩對照組SAM峰面積差別較小,僅占實驗組測定值的1%左右,對測定結果的干擾有限。粗酶液中含有少量的胞內水平的ATP和L-Met,ATP作為一種活性物質,含量較低且穩(wěn)定性較差,而L-Met相比而言較為穩(wěn)定。推測用于酶活測定的粗酶液中殘留的L-Met參與了對照組1的反應,直接導致了兩對照組SAM含量的差異,因此,選擇不加ATP的對照組更能反映實際的酶活水平。

        3 結論

        分析了原有HPLC方法測定SAM存在的問題,針對流動相和洗脫程序進行優(yōu)化,建立了一種高效、穩(wěn)定、準確性高的SAM定量檢測方法。確定最佳HPLC條件為:254 nm吸收波長下,以5 mmol·L-1和0.5 mol·L-1的甲酸銨在不同時間段以1 mL·min-1的流速進行洗脫。在此色譜條件下,胞內SAM抽提樣品和SAM合成酶酶促反應樣品中的SAM都能夠得到有效分離。該方法簡單高效、重復性好、精確度高,并且性能穩(wěn)定,可以較長時間進行大量樣品的準確測定,能夠滿足發(fā)酵過程中菌體胞內SAM產量的測定以及SAM合成酶酶活的監(jiān)控要求。

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