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        斜紋夜蛾核多角體病毒感染甜菜夜蛾細(xì)胞的研究*

        2011-07-24 12:03:18
        關(guān)鍵詞:桿狀病毒病毒感染引物

        余 倩

        (1.仲愷農(nóng)業(yè)工程學(xué)院輕工食品學(xué)院,廣東 廣州 510225 2.中山大學(xué)有害生物控制與資源利用國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,廣東 廣州 510275)

        桿狀病毒是一類節(jié)肢動(dòng)物專一性的病毒,它們帶有桿狀的核衣殼,基因組是由大小約為80~180 kb雙鏈環(huán)狀DNA所構(gòu)成[1]。桿狀病毒的宿主范圍窄,大部分桿狀病毒只能感染幾種昆蟲甚至是專一性的一種。

        桿狀病毒生活周期主要分為以下幾步:進(jìn)入細(xì)胞、早期基因表達(dá)、DNA的復(fù)制、晚期基因表達(dá)、極晚期基因表達(dá)、芽生型病毒(budded virus, BV)的組裝和釋放、核多角體蛋白包含體(occlusion-derived virus, ODV)的形成。

        斜紋夜蛾核多角體病毒(Spodopteralituranucleopolyhedrovirus,SpltNPV)和甜菜夜蛾核多角體病毒(Spodopteraexiguamultiple nucleopolyhedrovirus,SeMNPV)的全基因組已完成測(cè)序[2-3],兩者的基因組相似性程度高,經(jīng)研究發(fā)現(xiàn)兩者不能交叉感染各自宿主,SeMNPV感染SpLi-221細(xì)胞會(huì)引起細(xì)胞凋亡[4],而SpltNPV感染Se301細(xì)胞的研究還未見報(bào)導(dǎo)。為了了解SpltNPV感染Se301細(xì)胞的進(jìn)程并尋找病毒感染失敗的原因,本研究對(duì)SpltNPV感染后的Se301細(xì)胞進(jìn)行了生化分析,發(fā)現(xiàn)病毒蛋白表達(dá)受阻是SpltNPV感染Se301細(xì)胞失敗的主要原因。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        1.1.1 昆蟲細(xì)胞與病毒 野生型SpltNPV中山大學(xué)分離株(ZSU strain)由本實(shí)驗(yàn)室保存。SeMNPV-SeUS1引自美國(guó)加州大學(xué)Riverside分校B.A.Federici教授實(shí)驗(yàn)室。甜菜夜蛾細(xì)胞Se301由荷蘭Wageningen大學(xué)J.M.Vlak教授惠贈(zèng),用w=10 %胎牛血清的Grace′s培養(yǎng)基 (Invitrogen) 27 ℃培養(yǎng)。

        1.1.2 供試?yán)ハx 斜紋夜蛾、甜菜夜蛾幼蟲由本實(shí)驗(yàn)室養(yǎng)蟲室提供,為人工飼料飼養(yǎng)的健康幼蟲。人工飼料配方見參考資料[5],飼養(yǎng)溫度 27~28 ℃。

        1.2 方法

        1.2.1 病毒多角體擴(kuò)增 將病毒多角體涂布于人工飼料表面喂飼感染4齡初的昆蟲幼蟲,感染4~5 d后收集呈現(xiàn)典型病毒感染癥狀的幼蟲(蟲體倒掛,身體腫脹,呈灰白色),置室溫下靜置2至3天讓其自然發(fā)酵(病毒進(jìn)一步成熟和蟲體進(jìn)一步液化)。用10倍的PBS懸浮發(fā)酵的蟲尸,經(jīng)四層紗布過濾,濾液經(jīng)3 000 r/min離心10 min,沉淀物重懸于適量PBS中,600 r/min離心5 min,收集上清。如此重復(fù)3~4次,直至多角體懸浮液呈乳白色,光學(xué)顯微鏡檢查在多角體懸液中雜質(zhì)很少,即為較純的病毒多角體。

        1.2.2 病蟲血淋巴制備 用多角體喂飼感染四齡初昆蟲幼蟲,感染3 d后經(jīng)鏡檢有極少量多角體出現(xiàn)即取血淋巴。用φ=70 %乙醇將病蟲表面消毒,剪開腹足,血淋巴滴入含w=0.1 %苯基硫脲的Grace′s 培養(yǎng)基中,3 000 r/min離心10 min,除去血淋巴細(xì)胞,取上清經(jīng)過濾滅菌保存,供細(xì)胞感染用。

        1.2.3 在離體培養(yǎng)細(xì)胞中增殖病毒 吸盡單層培養(yǎng)細(xì)胞中培養(yǎng)液,按感染復(fù)數(shù)(MOI)大約為1的接種量接種病毒血淋巴,室溫吸附1 h,吸棄病毒液,以無抗生素?zé)o血清Grace′s培養(yǎng)基洗2次,然后加入新鮮Grace′s培養(yǎng)基,27 ℃培養(yǎng)72 h~96 h左右,收集細(xì)胞上清,4 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.2.4SpltNPV 病毒感染細(xì)胞 在35 mm培養(yǎng)皿中以0.5×106個(gè)細(xì)胞/孔密度接種對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的Se301細(xì)胞;貼壁1 h后,移出培養(yǎng)基,SpltNPV病毒以MOI為1感染細(xì)胞,27 ℃培養(yǎng)1 h并間隔搖動(dòng)培養(yǎng)板;1 h后棄感染液,以無抗生素?zé)o血清Grace′s培養(yǎng)基洗2次,然后加入Grace′s培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng),加入病毒即開始計(jì)時(shí),于感染后不同時(shí)間收集取樣,3 000 r/min離心10 min,棄上清,細(xì)胞沉淀先放入液氮速凍30 min,再放入-70 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.2.5 Dot Blotting 收取感染后細(xì)胞樣品提取總DNA融于8 mmol/L NaOH,調(diào)整至終濃度100 μg/mL,測(cè)定吸光度。每個(gè)樣品取10 μL,100 ℃煮5 min,冰上迅速冷卻。于Dot Blotting裝置上點(diǎn)樣轉(zhuǎn)膜。方法參照Bio-Dot SF Microfiltration Apparatus(Bio-Rad, Inc)操作手冊(cè)。主要步驟包括:DNA固定,探針制備和標(biāo)記,地高辛雜交,雜交后洗膜,檢測(cè)和顏色反應(yīng)。

        1.2.6 RT-PCR RT-PCR反應(yīng)按TaKaRa RNA PCR Kit(AMV)Ver.3.0操作手冊(cè)進(jìn)行。 取反應(yīng)液5 μL進(jìn)行凝膠電泳,確認(rèn)反應(yīng)產(chǎn)物。以RNA為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增,以檢測(cè)模板是否存在DNA污染。所用引物序列見表1,引物由上海英駿生物工程公司合成。

        1.2.7 SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE) 收集細(xì)胞上清,加等量的2×蛋白上樣緩沖液,于沸水中煮5~10 min,按常規(guī)方法在Bio-Rad小型蛋白電泳儀上進(jìn)行恒流電泳。電泳結(jié)束后,用考馬斯亮藍(lán)染色后用脫色液進(jìn)行脫色,觀察蛋白帶型。

        1.2.8 Western blotting 收集病毒感染后細(xì)胞,PBS緩沖液洗2次,細(xì)胞裂解后進(jìn)行蛋白電泳,轉(zhuǎn)膜,蛋白封閉,以制備的POLYHEDRIN多克隆抗體為一抗1∶500稀釋后進(jìn)行western blotting檢測(cè),觀察蛋白表達(dá)情況。

        表1 PCR擴(kuò)增所用引物

        2 結(jié) 果

        2.1 SpltNPV感染Se301細(xì)胞后DNA復(fù)制情況

        本實(shí)驗(yàn)室研究發(fā)現(xiàn)SpltNPV不能成功感染Se301細(xì)胞,而是誘導(dǎo)Se301細(xì)胞產(chǎn)生凋亡(資料未顯示)。為研究SpltNPV在Se301凋亡細(xì)胞中的感染進(jìn)程以及病毒感染失敗的原因,首先進(jìn)行dot blotting分析檢測(cè)病毒復(fù)制,正常Se301樣品為陰性對(duì)照,SpltNPV感染SpLi-221細(xì)胞為陽性對(duì)照,雜交探針為DIG標(biāo)記的病毒polyhedrin基因(polyhedrin-dig), 標(biāo)準(zhǔn)樣品(Marker)為polyhedrin的PCR產(chǎn)物。檢測(cè)結(jié)果顯示:陽性對(duì)照樣品在感染后12 h能檢測(cè)到有病毒復(fù)制,且隨著時(shí)間的延長(zhǎng)病毒量越來越多;SpltNPV感染Se301細(xì)胞樣品中從12 ~72 h也能檢測(cè)到病毒復(fù)制,但病毒復(fù)制的速度明顯低于SpltNPV感染SpLi-221細(xì)胞的復(fù)制速度,此結(jié)果說明SpltNPV感染Se301細(xì)胞后完成了病毒的復(fù)制但復(fù)制速度受到一定影響。

        圖1 SpltNPV感染SpLi-221或Se301細(xì)胞的Dot blotting分析

        2.2 SpltNPV在Se301細(xì)胞中的轉(zhuǎn)錄時(shí)相

        病毒基因的轉(zhuǎn)錄分為極早期、早期、晚期和極晚期。極早期基因在感染后1h就能檢測(cè)到轉(zhuǎn)錄,感染后6 h之前轉(zhuǎn)錄的基因?yàn)樵缙诨颍腥竞?h之后轉(zhuǎn)錄的基因?yàn)橥砥诨?,且感染?2 h之后轉(zhuǎn)錄的基因?yàn)闃O晚期基因。SpltNPV病毒在Se301細(xì)胞中進(jìn)行了病毒的復(fù)制,可以推測(cè)病毒的早期基因應(yīng)該進(jìn)行了轉(zhuǎn)錄表達(dá),下一步需了解病毒的晚期基因是否得到了轉(zhuǎn)錄及表達(dá),從而可進(jìn)一步驗(yàn)證早期基因是否得到了轉(zhuǎn)錄和表達(dá),現(xiàn)采取RT-PCR分析病毒在Se301細(xì)胞中的基因轉(zhuǎn)錄情況。設(shè)計(jì)3對(duì)引物以SpltNPV基因組為模板進(jìn)行PCR反應(yīng),首先需鑒定引物是否正確(圖2),結(jié)果顯示3對(duì)引物都能擴(kuò)增出相應(yīng)大小的條帶,說明設(shè)計(jì)引物無誤。

        圖2 ieo、DNA polymerase、chitnase基因的PCR擴(kuò)增產(chǎn)物

        為確定SpltNPV病毒在Se301細(xì)胞中是否完成了轉(zhuǎn)錄,以及各基因的轉(zhuǎn)錄時(shí)間與SpltNPV病毒在受納細(xì)胞SpLi-221細(xì)胞中的轉(zhuǎn)錄時(shí)間是否一致,進(jìn)行病毒基因的轉(zhuǎn)錄時(shí)相分析。結(jié)果如圖3顯示:SpltNPV感染Se301細(xì)胞1 h后能檢測(cè)到很微弱的ieo轉(zhuǎn)錄本,從4 h至48 h均能檢測(cè)到ie0的強(qiáng)轉(zhuǎn)錄本;DNApolymerase基因從6~48 h能檢測(cè)到強(qiáng)轉(zhuǎn)錄本;從8~48 h能檢測(cè)到chitnase的強(qiáng)轉(zhuǎn)錄本??偟膩碇v,SpltNPV感染Se301細(xì)胞的基因轉(zhuǎn)錄時(shí)相與SpltNPV感染SpLi-221細(xì)胞的基因轉(zhuǎn)錄時(shí)相基本一致,只是極早期基因ie0至晚期也有轉(zhuǎn)錄。

        2.3 SpltNPV在Se301細(xì)胞中的蛋白表達(dá)

        SpltNPV感染Se301細(xì)胞后病毒的所有基因都得到了轉(zhuǎn)錄,病毒蛋白的表達(dá)情況又如何?采取SDS-PAGE和Western blotting分析檢測(cè)病毒感染Se301細(xì)胞后其蛋白的表達(dá)情況。由于光鏡觀察SpltNPV感染Se301細(xì)胞48 h時(shí)有明顯病理癥狀(資料未顯示),所以收取Se301細(xì)胞樣品和SpltNPV感染Se301細(xì)胞48 h樣品進(jìn)行SDS-PAGE分析比較;Se301細(xì)胞為SpltNPV的非受納細(xì)胞,感染進(jìn)程可能與SpltNPV感染受納細(xì)胞SpLi-221不同,所以收取SpltNPV感染SpLi-221細(xì)胞24、48和72 h (圖4所示)樣品與SpltNPV感染Se301細(xì)胞48 h樣品進(jìn)行SDS-PAGE分析比較。結(jié)果顯示:SpltNPV感染SpLi-221細(xì)胞無論在24、48和72 h樣品中很明顯都有一條29 700的POLYHEDRIN條帶,且總蛋白表達(dá)條帶在24、48和72 h沒有明顯區(qū)別;而正常的Se301細(xì)胞和SpltNPV感染Se301細(xì)胞48 h樣品中沒有此條帶;對(duì)正常Se301細(xì)胞和SpltNPV感染Se301細(xì)胞48 h樣品的總蛋白帶型進(jìn)行比較,觀察不到蛋白帶型明顯的區(qū)別。所以SpltNPV感染Se301細(xì)胞后蛋白表達(dá)受到了一定程度的限制,極晚期基因polyhedrin的表達(dá)受阻。

        圖3 RT-PCR分析ieo、DNA polymerase、 chitnase基因的轉(zhuǎn)錄

        圖4 SpltNPV感染Se301細(xì)胞SDS-PAGE分析

        用極晚期基因polyhedrin的多克隆抗體對(duì)SpltNPV感染Se301細(xì)胞24、48、72 h樣品進(jìn)行Western blotting分析,結(jié)果如圖5表明細(xì)胞被感染24,48,72 h極晚期基因polyhedrin沒有表達(dá)。總的來講SpltNPV感染Se301細(xì)胞后其蛋白表達(dá)受阻,以至于不能完成整個(gè)的病毒復(fù)制。

        圖5 SpltNPV感染Se301細(xì)胞polyhedrin基因Western blotting分析

        3 討 論

        SpltNPV和SeMNPV基因組相似性很高,但這兩種病毒不能交叉感染各自宿主。先前研究表明細(xì)胞凋亡是限制桿狀病毒感染昆蟲的主要原因之一,早有關(guān)于桿狀病毒誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡從而導(dǎo)致病毒感染失敗的報(bào)導(dǎo),如HycuNPV誘導(dǎo)的Ld652Y細(xì)胞凋亡[6];HaSNPV誘導(dǎo)的Hi5和s1-zsu-1細(xì)胞凋亡[7-8];SeMNPV感染SpLi-221細(xì)胞會(huì)引起細(xì)胞凋亡;SpltNPV感染Se昆蟲也可誘導(dǎo)昆蟲體液細(xì)胞凋亡[9],且本實(shí)驗(yàn)室研究發(fā)現(xiàn)SpltNPV感染Se301細(xì)胞也誘導(dǎo)了細(xì)胞凋亡。

        桿狀病毒生活周期主要分為以下幾步:進(jìn)入細(xì)胞、早期基因表達(dá)、DNA的復(fù)制、晚期基因表達(dá)、極晚期基因表達(dá)、BV的組裝和釋放、核多角體蛋白包含體的形成。SpltNPV不能成功感染Se301細(xì)胞產(chǎn)生子代病毒,即Se301細(xì)胞為SpltNPV的非受納細(xì)胞。

        研究顯示SpltNPV感染Se301細(xì)胞后病毒完成了整個(gè)DNA復(fù)制過程,但DNA復(fù)制量明顯低于SpltNPV感染其原宿主細(xì)胞SpLi-221細(xì)胞的DNA復(fù)制量,分析其原因可能是由于病毒感染其非受納宿主細(xì)胞感染進(jìn)程受阻。DNA復(fù)制之前是病毒早期基因的表達(dá),研究證實(shí)桿狀病毒誘導(dǎo)的凋亡可由感染早期的事件所引起[10],先前研究表明病毒的極早期基因ie1能引起由AcMNPV誘導(dǎo)的Sf21細(xì)胞凋亡[11]。 本研究中ie0基因的表達(dá)也可能會(huì)引起細(xì)胞凋亡,使得大部分病毒感染失敗,只有少量病毒能完成DNA復(fù)制,所以觀察到病毒感染受納和非受納細(xì)胞DNA復(fù)制速度不同。

        病毒轉(zhuǎn)錄時(shí)相分析結(jié)果表明病毒的所有基因都完成了轉(zhuǎn)錄,且早期基因和晚期基因的轉(zhuǎn)錄時(shí)相與SpltNPV感染其原宿主的轉(zhuǎn)錄時(shí)相一致,符合桿狀病毒感染其原宿主的一般轉(zhuǎn)錄時(shí)相規(guī)律,但實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn)極早期基因ie0的轉(zhuǎn)錄在1 h時(shí)較正常原宿主感染量弱,且基因轉(zhuǎn)錄延遲到了感染后期即24 h以后。一般的極早期基因轉(zhuǎn)錄只在感染的早期出現(xiàn),到感染后期沒有極早期基因的轉(zhuǎn)錄,可能由于病毒感染進(jìn)程不一致,導(dǎo)致一部分病毒進(jìn)入感染晚期而一部分病毒還處于其它感染階段。

        經(jīng)檢測(cè)Se301細(xì)胞與SpltNPV感染Se301細(xì)胞的總蛋白表達(dá)情況沒有明顯不同,且與SpltNPV感染SpLi-221細(xì)胞總蛋白表達(dá)進(jìn)行比較,發(fā)現(xiàn)SpltNPV感染Se301細(xì)胞中無極晚期POLYHEDRIN蛋白的表達(dá),Western blotting檢測(cè)結(jié)果與上述結(jié)果一致,說明病毒的蛋白表達(dá)受到了一定程度的限制,極晚期基因的表達(dá)受阻。

        綜合以上分析結(jié)果,病毒進(jìn)入細(xì)胞首先進(jìn)行早期基因表達(dá),可能因?yàn)樵缙诨虻谋磉_(dá)誘導(dǎo)了細(xì)胞凋亡,所以大部分病毒感染失敗,只有少量病毒進(jìn)行DNA復(fù)制和轉(zhuǎn)錄,DNA復(fù)制后病毒隨即進(jìn)行晚期或極晚期基因表達(dá)[12],由于某種未知原因,也可能是其它因素誘導(dǎo)了細(xì)胞發(fā)生凋亡,病毒晚期基因的表達(dá)受到抑制以至不能完成BV的裝配和產(chǎn)生子代病毒??偟膩碚f,病毒蛋白表達(dá)受阻是SpltNPV在Se301細(xì)胞中無法形成子代病毒,完成整個(gè)病毒復(fù)制的主要原因,本研究為深入研究其感染失敗機(jī)理奠定了堅(jiān)實(shí)基礎(chǔ)。

        致謝本研究在中山大學(xué)龐義教授和楊凱教授的指導(dǎo)和幫助下完成,謹(jǐn)以感謝。

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