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        骨髓間充質(zhì)干細胞移植對大鼠腦缺血再灌注損傷的修復作用

        2011-04-12 22:53:37許長春郭云霞許科鵬
        實用醫(yī)藥雜志 2011年2期
        關(guān)鍵詞:神經(jīng)細胞腦缺血骨髓

        許長春,郭云霞,許科鵬

        腦卒中已成為人類致死、致殘的重要原因之一。其發(fā)病率有逐年上升的趨勢。其中以缺血性卒中最為常見。傳統(tǒng)觀念認為腦缺血引起缺血區(qū)神經(jīng)元不可逆死亡。梗死區(qū)周邊的成熟神經(jīng)元不能再生來彌補死亡的神經(jīng)元,因此導致腦缺血預后不佳。最近的研究表明,骨髓間充質(zhì)干細胞(MSCs)在某些內(nèi)在機制和微循環(huán)影響下具有類似胚胎干細胞的高度分化能力,具有取材簡單,來源豐富,可從患者自身獲得而不存在組織相容性的問題,治療時可避免長期應用免疫抑制劑對患者的損害,這為細胞移植治療腦缺血損傷提供了可能。

        1 材料與方法

        1.1 動物及分組 成年雄性SD大鼠(上海實驗動物中心提供)34只,質(zhì)量270~320 g,模型制作過程中淘汰4只,30只腦缺血模型大鼠隨機分為MSCs移植組,缺血對照組各15只。

        1.2 MSCs的分離培養(yǎng)及鑒定 采用文獻[1]方法,麻醉狀態(tài)下取SD大鼠雙側(cè)股骨和脛骨,用DHank’s液沖洗骨髓腔收取骨髓,以密度為1.082 g/L的percoll淋巴細胞分離液密度梯度離心法分離出骨髓單個核細胞,移到含10%FBS的DMEM-LG培養(yǎng)基中,結(jié)合貼壁法以1.0×104個/ml的細胞密度接種培養(yǎng),按 1∶2進行擴增傳代(1~3代)。選取生長良好的原代及1、2、3代細胞,用0.25%胰蛋白酶室溫消化、離心,收集培養(yǎng)好的大鼠MSCs,將Hoeschst 33342加入大鼠MSCs培養(yǎng)基混懸液中,終質(zhì)量濃度為50 μg/ml,于37℃培養(yǎng)箱中避光共同培養(yǎng)24 h,然后用 D-Hank’s液洗滌 3次以去除未結(jié)合的Hoeschst33342,并收集已結(jié)合Hoeschst33342的細胞,用不含胎牛血液的細胞培養(yǎng)液DMEM-LG將細胞制成細胞懸液。

        1.2.1 大鼠腦缺血再灌注(MCAO)模型制作 參照文獻[2]的方法,用直徑0.32 nm的尼龍線插入大鼠右側(cè)頸動脈,深度為20~22 mm,阻斷右側(cè)大腦中動脈,120 min后將尼龍線拔出。

        1.2.2 MSCs移植 建立MCAO模型24 h后移植組于頸內(nèi)動脈給予MSCS,懸浮液200 μl,細胞數(shù)為2×106個,對照組頸內(nèi)動脈給與MSCs移植組同等體積的生理鹽水作為對照。

        1.2.3 神經(jīng)損害嚴重程度評分(NSS) 參照文獻[3]的方法,分別于移植后1、7、14、21 d對MSCs移植組及缺血對照組大鼠進行NSS,主要是運動,感覺功能,平衡能力及生理反射;總分為18分,正常為0分,分值越高其神經(jīng)損害越嚴重。

        1.2.4 免疫組化驗測 于MSCs移植后1、7、14、21 d各組隨機處死2只大鼠,4%多聚甲醛500 ml左心室灌注后,斷頭取腦,置4%多聚甲醛后固定24 h,冠狀位切取以缺血區(qū)域為中心的包括側(cè)腦室室管膜下區(qū)、基底節(jié)區(qū)的厚度2 mm的腦組織標本,石蠟包埋,連續(xù)切片,片厚5 μm,進行HE染色后鏡檢。

        1.2.5 統(tǒng)計學方法 檢測數(shù)據(jù)先求出組內(nèi)均數(shù)±標準差,組間比較采用t檢驗。

        2 結(jié) 果

        2.1 MSCs的鑒定方法與分化 將所培養(yǎng)細胞經(jīng)流式細胞儀檢測。發(fā)現(xiàn)MSCs表面標記物CD29、CD44呈陽性表達,而CD14、CD34呈陰性表達,說明試驗中分離培養(yǎng)的細胞非造血干細胞而為MSCs。經(jīng)免疫組化分析,各代細胞90%表達Nestin陽性進一步證實是MSCs(胞質(zhì)中出現(xiàn)大量的標黃色顆粒物)。

        2.2 光鏡下觀察結(jié)果 各組均可見到明顯梗死灶,位于基底節(jié)、皮質(zhì)下白質(zhì)和皮層,缺血區(qū)神經(jīng)細胞明顯減少,可見神經(jīng)細胞變性、壞死呈胞體皺縮,核固縮碎裂溶解,胞漿濃縮紅染,神經(jīng)纖維輸送,間質(zhì)水腫明顯,炎癥細胞浸潤。根據(jù)標記發(fā)現(xiàn)MSCs主要存在于腦皮質(zhì)、皮質(zhì)下等處。通過標記發(fā)現(xiàn)MSCs移植后1d在海馬、皮質(zhì)及小腦等部位部分MSCs細胞即可表達神經(jīng)元標記物神經(jīng)元特異性核蛋白,且隨著移植時間的延長,標記的細胞數(shù)目增多。

        2.3 NSS變化 MSCs移植后,1、7 d NSS與對照組比較無顯著性差異 (7.8±1.4 vs 7.9±1.1,6.8±1.2 vs 6.9±1.2;P>0.05), 但 14、21 d 移植組 NSS 均明顯低于對照組 (5.0±1.2 vs 6.2±1.3,4.6±1.4 vs 5.9±1.0;P<0.05)。

        3 討 論

        骨髓間充質(zhì)干細胞是存在于骨髓中的一種非造血干細胞,具有多向分化潛能,可以分化為多種造血以外的組織細胞,特別是中胚層和外胚層來源的組織細胞。缺血性腦卒中現(xiàn)有的溶栓抗凝等治療手段仍存在很大的局限性,不能根本改善腦梗死的預后。新近的研究表明,骨髓間充質(zhì)干細胞可在一定的條件分化為神經(jīng)元樣細胞、星型膠質(zhì)細胞等[4]。從而為神經(jīng)系統(tǒng)疾病的治療提供新的手段。動物實驗證明神經(jīng)干細胞移植可以在一定程度上修復腦缺血損傷,使神經(jīng)功能得到明顯改善,這說明神經(jīng)干細胞移植是治療神經(jīng)功能損傷的有效手段,但由于神經(jīng)干細胞數(shù)量很少,體外培養(yǎng)很難擴增,并且存在移植變異排斥等問題,從而使其應用受到很大的限制。而MSCs從骨髓中分離得到取材容易,且對健康無害,體外分離培養(yǎng)能快速擴增,可以自體移植而且不存在免疫排斥反應等問題。因此,MSCs在神經(jīng)系統(tǒng)疾病的治療中占有越來越重要的地位。

        本實驗中,筆者用MSCs頸內(nèi)動脈移植治療大鼠缺血性損傷,大鼠的神經(jīng)功能恢復明顯優(yōu)于對照組,MSCs移植組神經(jīng)細胞變性、壞死數(shù)量明顯減少,炎癥細胞減少,水腫減輕,以上情況提供了行為學上和病理學上的實驗依據(jù),說明以MSCs治療缺血性腦損傷是切實有效的。

        一般認為MSCs對腦缺血再灌注損傷的保護主要有以下幾種機制:①作為干細胞,MSCs可能在腦組織中分化為神經(jīng)元樣細胞和神經(jīng)膠質(zhì)樣細胞,替代發(fā)生壞死和凋亡的神經(jīng)細胞,從而起到腦保護作用,但是分化的比率較低,分別為1%和8%,如此少量的分化細胞能發(fā)揮多大的神經(jīng)替代功能有待進一步的研究;②MSCs激活了存在于皮質(zhì)下區(qū)的神經(jīng)干細胞(NSC)[5],被激活的內(nèi)源性NSC進一步定向分化為神經(jīng)細胞起到腦保護作用;③MSCs進入腦組織內(nèi)部可分泌和(或)促進神經(jīng)細胞分泌神經(jīng)營養(yǎng)因子、血管內(nèi)皮生長因子、神經(jīng)生長因子和干細胞生長因子等[6],這一機制已得到公認。

        [1]Friedenstein AJ,Gorskaja JF,Kulagina NN.Fibroblast precursors in normal and irradiated mouse hematopoietic organs[J].Exploration of Haematol,1976,4(5):267-274.

        [2]Chen J,Sanberg PR,Li Y,et al.Intravenous administration of human umbilical cord blood reduces behavioral deficits after stroke in rats[J].Stroke,2001,32:2682.

        [3]Chen J,Li Y,Wang L,et al.Therapeutic benefit of intravenous administration of bone marrow stronal cells after cerebral ischemia in rats[J].Stroke,2001,32:1005-1011.

        [4]ZHANG Hua-biao,XU Yu-ming,ZHANG Su-ming.The experimental study on rat mesenchymal stem cells induced to differentiate into nerve-like cells in vitro[J]Chinese Journal of Neuroimmunology and Neurology,2003,10(4):276.

        [5]Sato K,Iwai M,Nagano I,et al.Temporal and spacial changes of BrdU immunoreactivity in amygdala kindling development.Neurol Res,2002,24:593.

        [6]Chen X,Li Y,Wang L,et al.Ischemic rat brain extracts induce human marrow stromal cell growth factor production.Neuropathology,2002,22:275.

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