種玉婷,李文哲,鄭國(guó)香,李成毅,劉 爽
(東北農(nóng)業(yè)大學(xué)工程學(xué)院,哈爾濱 150030)
隨著石油等化石燃料的枯竭,尋找可代替化石燃料的新能源成為世界各國(guó)科學(xué)家的首要任務(wù)。纖維素因其是地球上產(chǎn)量最大且經(jīng)濟(jì)環(huán)保的可再生能源物質(zhì),對(duì)于緩解未來(lái)的能源危機(jī)有著重要意義[1-3]。
近年來(lái),隨著纖維素生物降解機(jī)理研究的不斷深入,如何發(fā)揮降解過(guò)程中微生物之間的協(xié)同與微生物生態(tài)系統(tǒng)的穩(wěn)定性作用成為木質(zhì)纖維素類物質(zhì)降解的研究熱點(diǎn)[4-5]。因而充分利用自然界微生物間的協(xié)同關(guān)系,直接從自然環(huán)境中篩選能夠降解木質(zhì)纖維素的復(fù)合菌系成為一個(gè)新的研究趨勢(shì)[6]。王偉東等以高溫期的堆肥樣品為材料,篩選構(gòu)建了一組木質(zhì)纖維素分解菌復(fù)合系,該復(fù)合系在50℃培養(yǎng)條件3 d就可使濾紙崩潰率達(dá)到90%以上[7-8]。崔詩(shī)法等從腐爛的枯枝落葉中分離到一組分解能力較強(qiáng)的纖維素分解復(fù)合系St-13[9],該復(fù)合系5 d內(nèi)可使濾紙完全崩潰,液體培養(yǎng)到14 d時(shí)能夠分解玉米秸稈中85.27%的纖維素,總失重率為58.03%。這些都為加速?gòu)?fù)合系的研究以及天然纖維素資源的利用開(kāi)辟了新的道路。
本研究以較難降解的稻稈為碳源,并控制培養(yǎng)溫度為35℃的中溫條件,篩選出一組稻稈降解率較高的復(fù)合系,命名為L(zhǎng)ZF-12。并探索了其生長(zhǎng)特性和生長(zhǎng)條件,為該菌系的進(jìn)一步優(yōu)化提供了重要理論依據(jù)。
1.1.1 土樣來(lái)源
分別從森林、沼澤邊等多處不同地點(diǎn)采取土樣24份,分別命名為樣品1-24號(hào),進(jìn)行篩選。
1.1.2 培養(yǎng)基
稻稈的預(yù)處理:先將稻稈浸泡在1%NaOH溶液中24 h,再用清水反復(fù)沖洗干凈,于50℃烘箱烘干后將其剪成長(zhǎng)度約為1 cm左右。
分離培養(yǎng)基:NaCl 0.5%,酵母粉0.1%,蛋白胨0.5%,CaCO30.3%,經(jīng)處理的稻稈1%,pH自然,121℃滅菌20 min。
1.2.1 纖維素分解菌群生長(zhǎng)曲線的測(cè)定
用250 mL的錐形瓶裝入200 mL分離培養(yǎng)基,接入20 mL種子液,35℃靜置培養(yǎng),每隔12 h取樣,用752型分光光度計(jì)測(cè)定600 nm時(shí)的吸光度,以未接菌的培養(yǎng)基作對(duì)照。
1.2.2 稻稈失重的測(cè)定
將發(fā)酵結(jié)束后的發(fā)酵液用八層紗布過(guò)濾,然后用鹽酸和硝酸的混合液沖洗紗布中剩余物,以除去殘留的菌體和碳酸鈣,再用清水反復(fù)沖洗多次,最后置于烘箱中烘至恒重[10]。
初次篩選時(shí),取24份土樣分別接種于分離培養(yǎng)基中,定期跟蹤觀察濾紙變化,以濾紙崩解程度作為初期篩選的指標(biāo)。在濾紙降解的旺盛時(shí)期以10%的接種量將培養(yǎng)液轉(zhuǎn)接至新鮮培養(yǎng)基中,如此反復(fù)轉(zhuǎn)接下去。以濾紙完全被降解掉所用的時(shí)間長(zhǎng)短來(lái)衡量菌系的降解能力,多數(shù)樣品在傳代過(guò)程中因其對(duì)濾紙分解能力弱而被淘汰,而10和12號(hào)樣品因其良好的濾紙降解能力和穩(wěn)定的菌群特性被連續(xù)轉(zhuǎn)接下去,以稻稈作為主要碳源定向馴化后,經(jīng)過(guò)三十多次的傳代培養(yǎng),最后獲得一組降解效果較好且穩(wěn)定的菌系,命名為L(zhǎng)ZF-12。
通過(guò)光學(xué)顯微鏡和電子顯微鏡對(duì)復(fù)合菌系的生長(zhǎng)形態(tài)進(jìn)行了觀察。在低倍的光學(xué)顯微鏡下對(duì)培養(yǎng)7 d的菌液進(jìn)行觀測(cè),發(fā)現(xiàn)(見(jiàn)圖1-A)復(fù)合系LZF-12主要由桿菌組成,且菌體密集。這表明此時(shí)菌群代謝旺盛,消耗底物的速率也相對(duì)較快。由于不同的復(fù)合菌系自身菌群的多樣性不同,往往表現(xiàn)出不同的形態(tài)特征。如劉震東等[10]獲得的高溫降解纖維素復(fù)合菌系主要是由長(zhǎng)桿菌構(gòu)成。而培養(yǎng)發(fā)酵中期的樣本在電子顯微鏡的放大結(jié)果顯示,LZF-12的菌群組成比較復(fù)雜,從外觀形態(tài)來(lái)看,粗細(xì)、長(zhǎng)短不一,從數(shù)量上看桿菌占優(yōu)勢(shì)。同時(shí),桿菌之間夾雜著少量的球狀菌、梭狀菌和啞鈴狀菌等,如圖1-B標(biāo)注。這表明,LZF-12中的菌群多樣,菌系彼此共生在同一個(gè)環(huán)境中。
圖1 LZF-12發(fā)酵中期的形態(tài)特征Fig.1 Conformation character of LZF-12 in mediumterm fermentation
2.3.1 LZF-12的生長(zhǎng)曲線
以稻稈為主要碳源培養(yǎng)復(fù)合菌系LZF-12,600 nm下測(cè)定的生長(zhǎng)曲線見(jiàn)圖2。微生物經(jīng)過(guò)1~5 d的對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期后達(dá)到最高值,OD600值為3.107,之后又開(kāi)始下降,從7 d開(kāi)始OD600呈現(xiàn)平穩(wěn)狀況,其值變化很小。由圖2可知,復(fù)合系從初始到峰值大致可分為三個(gè)增殖階段,其增殖速率依次下降。在接種后的前24 h復(fù)合系呈快速生長(zhǎng)狀態(tài),24 h后其增長(zhǎng)速度明顯下降,而由后面試驗(yàn)可知,培養(yǎng)基的溶解氧也是在24 h內(nèi)快速下降到最低值的,由此可推斷復(fù)合系的總體活性很有可能跟培養(yǎng)基內(nèi)的溶解氧有關(guān)系,當(dāng)復(fù)合系中的好氧菌將培養(yǎng)基中95%以上的氧消耗盡時(shí),所形成的微好氧環(huán)境必定會(huì)抑制好氧菌的生長(zhǎng),致使復(fù)合系的總體增殖速度下降。從圖2中曲線我們可以看出在72 h左右又出現(xiàn)一轉(zhuǎn)折點(diǎn),從72到120 h左右為復(fù)合系增殖的最后階段,由曲線傾斜度可知該階段微生物數(shù)量增加緩慢,而這一時(shí)間段與試驗(yàn)中復(fù)合系對(duì)濾紙的快速降解階段相吻合,可能是該時(shí)間段復(fù)合系開(kāi)始利用培養(yǎng)基中較難利用的纖維素類物質(zhì)所致。隨著結(jié)構(gòu)復(fù)雜的纖維素類物質(zhì)被降解成易利用的低糖類成分,發(fā)酵液內(nèi)微生物的數(shù)量反而下降,這可能是由于復(fù)合菌系在消耗碳源的同時(shí),產(chǎn)生了大量的揮發(fā)酸等產(chǎn)物,隨著這些產(chǎn)物的積累,反饋抑制了微生物體內(nèi)相應(yīng)酶的活性,從而影響微生物菌群的生長(zhǎng)。該階段,復(fù)合系對(duì)稻稈的分解與對(duì)培養(yǎng)基中各種酸類物質(zhì)的降解達(dá)成一個(gè)動(dòng)態(tài)平衡的狀態(tài),故其生長(zhǎng)曲線顯示出較平穩(wěn)的狀態(tài)。
圖2 復(fù)合菌系LZF-12的生長(zhǎng)曲線Fig.2 Growth curve of complex system LZF-12
2.3.2 發(fā)酵液的DO值變化
以10%的接種量將復(fù)合系接種于分離培養(yǎng)基中,35℃靜置培養(yǎng)。每24 h測(cè)其DO值(見(jiàn)圖3)。新鮮分離培養(yǎng)基DO值為2.3 mg·L-1左右,含氧量較為豐富。由圖3可以看出在接菌后的二十幾個(gè)小時(shí)內(nèi),DO值由初始的2.3 mg·L-1急劇下降到0.07 mg·L-1,之后瓶?jī)?nèi)DO值基本都維持在0.07~0.09 mg·L-1之間,在192 h之后又開(kāi)始緩慢下降,到發(fā)酵結(jié)束后其DO值為0.05 mg·L-1左右。在發(fā)酵的初期,溶氧的急劇下降說(shuō)明該菌系有好氧性菌株存在,當(dāng)DO值降至0.07 mg·L-1的微好氧環(huán)境時(shí),體系內(nèi)的好氧菌的生長(zhǎng)受到抑制。在此后的培養(yǎng)中,培養(yǎng)基一直處于微好氧環(huán)境,而且試驗(yàn)復(fù)合系對(duì)濾紙的快速降解過(guò)程也是在這樣的環(huán)境中完成的,這說(shuō)明微好氧的環(huán)境更適合該菌系對(duì)木質(zhì)纖維素物質(zhì)的降解,而復(fù)合系中的好氧菌在前期快速消耗體系內(nèi)的溶解氧,為微好氧菌的增殖和降解提供了有利的環(huán)境。二者的有機(jī)配合共同促進(jìn)了復(fù)合系對(duì)木質(zhì)纖維類物質(zhì)的降解。
圖3 發(fā)酵過(guò)程中的DO值的變化Fig.3 Change of DO value in fermentation
2.3.3 不同初始pH對(duì)發(fā)酵體系內(nèi)pH變化的影響
將發(fā)酵培養(yǎng)基的初始pH調(diào)到4.0,5.0,6.0,7.0,8.0,9.0,10.0,接種量為10%,35℃條件靜置培養(yǎng),每24 h監(jiān)測(cè)反應(yīng)體系內(nèi)的pH值。結(jié)果見(jiàn)圖4。
圖4 不同初始pH下發(fā)酵液的pH變化Fig.4 Changes of ferment liquid pH with different initial pH
由圖4可見(jiàn),不同初始pH的各試驗(yàn)組,接種后其發(fā)酵液內(nèi)的pH均有向中性靠攏的趨勢(shì),pH為4~5的發(fā)酵液在24 h時(shí)回升到6左右,其余的發(fā)酵液均在24 h時(shí)維持在7左右,在之后的48 h內(nèi)各發(fā)酵液的pH基本沒(méi)有變化,從100 h左右起,各發(fā)酵液的pH呈緩慢上升趨勢(shì)。由此可見(jiàn),復(fù)合系表現(xiàn)了很強(qiáng)的pH調(diào)節(jié)能力,總的規(guī)律是先將pH調(diào)到中性或微酸性,在此階段,復(fù)合系先利用培養(yǎng)基中容易消化的糖類物質(zhì),并將其轉(zhuǎn)變成有機(jī)酸,從而導(dǎo)致pH的下降。隨著產(chǎn)生的有機(jī)酸被分解或轉(zhuǎn)化后,pH又開(kāi)始緩慢回升,這與復(fù)合系對(duì)底物的利用相吻合。
2.4.1 LZF-12的濾紙降解特性
復(fù)合菌系LZF-12降解濾紙的表觀現(xiàn)象表明,在濾紙崩潰的整個(gè)過(guò)程中,前期降解速度較慢,如圖5-a~b所示,接菌后的前3 d濾紙變化不明顯,84 h左右時(shí)開(kāi)始觀察到濾紙變軟變薄,而在之后的培養(yǎng)中濾紙降解明顯加快??梢郧宄目吹綇囊好嫦? cm處至底端的濾紙降解非常明顯,到100 h左右時(shí)濾紙從液面下1 cm處斷裂浸入到培養(yǎng)基中,在120 h左右時(shí)斷裂的濾紙完全被降解掉。復(fù)合菌系LZF-12內(nèi)的菌群在前期生長(zhǎng)過(guò)程中,先利用培養(yǎng)基中較易利用的營(yíng)養(yǎng)成分進(jìn)行快速繁殖,到84 h以后菌群利用濾紙現(xiàn)象逐漸明顯,自身菌群繁殖速度達(dá)到一個(gè)相對(duì)穩(wěn)定的狀態(tài),直至120 h左右濾紙完全被消耗。
圖5 復(fù)合菌系LZF-12降解濾紙的過(guò)程Fig.5 Course of filter paper degradation by complex system LZF-12
2.4.2 LZF-12的稻稈降解特性
本組試驗(yàn)是選用數(shù)根稻稈莖,用細(xì)繩將其捆綁一起置于培養(yǎng)基中。圖6-A和B分別是稻草葉面經(jīng)復(fù)合菌系作用前后的掃描電子顯微照片,對(duì)比發(fā)現(xiàn),對(duì)照(A圖)的細(xì)胞排列整齊、規(guī)則平整,而B(niǎo)中經(jīng)菌作用后的葉片表面的表皮細(xì)胞、硅化/木栓細(xì)胞列等已經(jīng)被破壞和撕裂開(kāi),結(jié)構(gòu)破壞明顯,細(xì)胞表面的蠟質(zhì)層也被破壞掉,有利于細(xì)菌的侵入。由圖6-C可知,在復(fù)合系LZF-12的作用下,稻莖中起粘連和支撐作用的薄壁組織在復(fù)合系的作用下被降解掉,導(dǎo)致7天左右稻稈便軟化浸入培養(yǎng)基中。圖6-D顯示,復(fù)合菌系已經(jīng)完全侵入稻草的內(nèi)部結(jié)構(gòu)組織,破壞維管組織周圍的細(xì)胞結(jié)構(gòu),使包裹其中的大維管束裸露并呈現(xiàn)出來(lái),同時(shí)可以清晰的看到菌群已經(jīng)大量的在維管組織及其他組織細(xì)胞之間生存集聚,從而加劇對(duì)底物稻草的破壞程度和速度,見(jiàn)圖6-D所標(biāo)示。
2.4.3 不同培養(yǎng)條件對(duì)復(fù)合系降解效果的影響
將復(fù)合菌系分別置于靜置和搖床條件下培養(yǎng),溫度均為35℃,搖床轉(zhuǎn)速為100 r·min-1。280 h后測(cè)稻稈的失重。從圖7可以看出,從整個(gè)發(fā)酵過(guò)程來(lái)看,兩條曲線的變化趨勢(shì)比較相似,在接種后的前70 h內(nèi)降解速率比較快,可能是復(fù)合系先利用稻稈中的糖類、果膠類物質(zhì),待將包裹其中的半纖維素、纖維素類物質(zhì)釋放出來(lái),開(kāi)始誘導(dǎo)相關(guān)的酶系從而對(duì)其降解,由于纖維素類物質(zhì)結(jié)構(gòu)的復(fù)雜性,所以降解速度也相對(duì)慢些。整個(gè)過(guò)程中,搖床條件下的稻稈失重率始終高于靜置條件下的,但最終的降解率又非常接近,分別為64.94%和62.84%,這與前文所說(shuō)的微好氧環(huán)境更適合復(fù)合系對(duì)纖維素物質(zhì)的降解似乎有矛盾,其實(shí)不然,由于瓶口密封較好,且搖床轉(zhuǎn)速也較低,所以瓶中溶氧并沒(méi)有太大提高,倒是搖床條件下瓶中營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)混合均勻,更有利于復(fù)合系的吸收利用??紤]到搖床條件下在后期的發(fā)酵中會(huì)消耗較大能量,選擇在靜置條件下對(duì)復(fù)合系進(jìn)行馴化培養(yǎng)。
圖6 復(fù)合菌系LZF-12降解稻草的表觀特征Fig.6 Apparent character of straw degredating by LZF-12
圖7 不同培養(yǎng)條件下復(fù)合系對(duì)稻稈的降解能力Fig.7 Capacity of degradation under different culture condition
稻稈是一種較難被降解利用的天然纖維素類物質(zhì),經(jīng)堿處理的稻稈其纖維素、半纖維素、木質(zhì)素總含量占70%左右,纖維類含量較高。纖維素的降解是在幾種不同的酶的協(xié)同作用下完成的,參與降解的酶系屬于誘導(dǎo)型,因此復(fù)合系先利用培養(yǎng)基中容易利用的碳源進(jìn)行增殖,待將其消耗殆盡時(shí)開(kāi)始誘導(dǎo)降解纖維素的酶系,否則較高的易利用碳源濃度會(huì)抑制纖維素酶的合成[11-13]。復(fù)合系LZF-12對(duì)濾紙的降解過(guò)程也體現(xiàn)了這一點(diǎn),即復(fù)合系LZF-12先利用培養(yǎng)基中容易利用的碳源進(jìn)行增殖,大約在接種后前70 h左右,這時(shí)瓶中濾紙基本無(wú)變化,當(dāng)復(fù)合系達(dá)到一定數(shù)量、易利用的碳源被消耗掉時(shí),開(kāi)始誘導(dǎo)復(fù)合系產(chǎn)生降解纖維素類物質(zhì)的相關(guān)酶系,從而對(duì)濾紙進(jìn)行降解。
在復(fù)合系LZF-12的作用下,7 d左右稻稈被破壞明顯,起支撐和粘連作用的薄壁組織基本被降解掉,暴露出更難降解的維管束類結(jié)構(gòu),通過(guò)觀察復(fù)合系對(duì)濾紙和稻稈的降解可知,起降解作用的主要是其中的微好氧菌,這對(duì)于復(fù)合系培養(yǎng)環(huán)境的優(yōu)化提供了重要參考價(jià)值。本研究只對(duì)稻稈的表觀變化進(jìn)行觀察,對(duì)于其降解率及發(fā)酵過(guò)程產(chǎn)物分析還有待于進(jìn)一步探討。
a.通過(guò)以稻稈為碳源并在中溫35℃培養(yǎng)的定向馴化,從24組原始土樣中成功篩選出一組稻稈降解率較高且相對(duì)穩(wěn)定的復(fù)合菌系,命名為L(zhǎng)ZF-12。該復(fù)合菌系6 d內(nèi)即可將濾紙完全降解,7 d即可軟化稻稈。
b.LZF-12復(fù)合系由好氧菌株和微好氧菌株構(gòu)成,好氧菌通過(guò)消耗培養(yǎng)基溶解氧為微好氧菌營(yíng)造適宜環(huán)境,而木質(zhì)纖維物質(zhì)的降解主要依靠微好氧菌。與靜置條件相比,低轉(zhuǎn)速搖床下培養(yǎng)基中物質(zhì)混合均勻,稻稈降解率也較高。
c.不同初始pH條件下,復(fù)合菌系發(fā)酵過(guò)程的環(huán)境pH變化趨勢(shì)基本一致,表明該菌系對(duì)環(huán)境pH的變化具有較強(qiáng)的緩沖調(diào)節(jié)能力。
[1] 孫寶魁,王東偉.高效穩(wěn)定纖維素分解混合菌群的篩選及分解特性研究[J].環(huán)境科學(xué)與管理學(xué)報(bào),2008,33(9):116-119.
[2] Schubert C.Can biofuels finally take center stage[J].Nat Biotechnol,2006,24(7):777-784.
[3] 許修宏,肖玉珍,陳建平,等.高效纖維素分解菌分離篩選的研究[J].東北農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),1998,29(4):330-333.
[4] Lu W J,Wang H T,Yang S J,et al.Isolation andcharacterization of mesophilic cellulose-degrading bacteriafrom flower stalks-vegetable waste co-composting system[J].2005,51:353-360.
[5] Masahiro K,Nozomi I,Toshiaki K.Biological.Pretreatment with two bacterial strains or enzymatic hydrolysis of office pape[J].Current Microbiology,2007,54:424-428.
[6] Kondoh M.Foraging adaptation and the relationship between foodweb complexity and stability[J].Science,2003,299:1388-1391.
[7] 王偉東,王小芬,高麗娟,等.高效穩(wěn)定纖維素分解菌復(fù)合系WSC-6的篩選及其功能[J].黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)學(xué)報(bào),2005,17(3):14-17.
[8] 牛俊玲,崔宗均,李國(guó)學(xué),等.高效纖維素降解菌復(fù)合系的篩選構(gòu)建及其對(duì)秸稈的分解特性[J].農(nóng)業(yè)環(huán)境科學(xué)學(xué)報(bào),2005,24(4):795-799.
[9] 崔詩(shī)法,廖銀章,黎云祥,等.纖維素分解復(fù)合菌系St-13的篩選及產(chǎn)酶條件的研究[J].現(xiàn)代農(nóng)業(yè)科學(xué),2009,16(1):8-11.
[10] 劉震東,李文哲,劉爽,等.高效木質(zhì)纖維素分解菌復(fù)合系的發(fā)酵特性[J].東北農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2009,40(8):105-109.
[11] Odenyo A A,Biahop R,Asefa G.Isolation and characterisa-lion of anaerobic cellulose-degrading bacteria from East African porcupine(Hystrix cristata)[J].Anaerobe,1999(5):93-100.
[12] Schwarz W H.The cellulosome and cellulose degradation by anaerobic bacteria[J].Appl Microbiol Biotechnol,2001,56:634-649.
[13] 張宇,卓依婷,許敬亮,等.高效纖維素降解菌的篩選及其系統(tǒng)發(fā)育分析[J].太陽(yáng)能學(xué)報(bào),2009,30(1):103-106.