周 舟 (湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝園林學(xué)院,湖南長(zhǎng)沙41 01 28)

彭 淼 (湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)東方科技學(xué)院,湖南長(zhǎng)沙41 01 28)

鐘曉紅 (湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝園林學(xué)院,湖南長(zhǎng)沙41 01 28)

綠原酸作為一種具有多種生物活性的天然物質(zhì),已引起國(guó)內(nèi)外學(xué)者廣泛關(guān)注,其提取純化及檢測(cè)技術(shù)的研發(fā)已成為當(dāng)前日益關(guān)注的焦點(diǎn)。以前多采用單一的某種方法來(lái)提取綠原酸,目前則以多種方法相結(jié)合。張凌裳等[1]用酶解和超聲相結(jié)合的方法,對(duì)綠原酸的提取工藝條件進(jìn)行了優(yōu)選。

在天然產(chǎn)物化學(xué)中,綠原酸類(lèi)化合物屬于發(fā)現(xiàn)早、分類(lèi)廣的一類(lèi)化合物,它們具有分布廣、活性強(qiáng)的特點(diǎn)。由于具有抗氧化、抗病毒和抑制6-磷酸葡萄糖轉(zhuǎn)移酶等功效,因此綠原酸類(lèi)化合物不僅可以作為藥物,也是食品和飲料中重要的藥補(bǔ)成分。另外,作為酚型抗氧化劑,它還有望成為良好的天然食品添加劑[2]。目前,隨著綠原酸的生物活性越來(lái)越受到人們的重視,對(duì)它們的應(yīng)用已經(jīng)逐漸深入到食品、保健、醫(yī)藥和日用化工等多個(gè)領(lǐng)域。綠原酸是植物體在有氧呼吸過(guò)程中經(jīng)莽草酸途徑產(chǎn)生的一種苯丙素類(lèi)化合物[3]。它是許多中藥材的有效成分之一,又是某些中成藥的質(zhì)量指標(biāo),并且在日用化工、食品等領(lǐng)域都有廣泛的應(yīng)用。綠原酸主要存在于忍冬科忍冬屬 (Lonicera)、菊科篙屬 (Artemisia)植物中[4],主要包括杜仲、金銀花、白日葵、咖啡、可可樹(shù)。另外,水果中有蘋(píng)果、梨,蔬菜中有馬鈴薯,以及大豆、小麥、綠茶等日常食用品中都含有微量的綠原酸類(lèi)物質(zhì)[5]。為了給綠原酸提純和檢測(cè)的深入研究以及應(yīng)用提供參考,筆者從綠原酸的提取、分離純化、檢測(cè)等方面的研究進(jìn)展作綜述。

1 綠原酸的提取方法

目前綠原酸的提取方法主要有溶劑提取法、超聲波提取法、超臨界CO2萃取法和酶提取法等。在工藝化生產(chǎn)上則是以多種方法相結(jié)合為主[6]。

1.1 溶劑提取法

在溶劑提取法中,根據(jù)提取溶劑的不同可分為水提法與有機(jī)溶劑提取法。綠原酸為極性有機(jī)酸酯,在提取過(guò)程中,可能通過(guò)水解和相繼分子內(nèi)酯基遷移而發(fā)生異構(gòu)化[7]。因而用水作溶劑時(shí),會(huì)出現(xiàn)綠原酸含量降低,從而導(dǎo)致綠原酸得率下降。而在用有機(jī)溶劑提取時(shí),綜合各方面原因,一般采用乙醇提取,并且在醇溶液中,酶的催化分解作用會(huì)受到抑制,使得綠原酸穩(wěn)定性增強(qiáng)。

(1)水提法 王茜等[8]探討了水以及不同濃度乙醇、甲醇和丙酮水溶液作為提取溶劑對(duì)杜仲葉中綠原酸得率的影響,最終確定水作為綠原酸提取溶劑。水提杜仲葉綠原酸的最佳工藝條件為:提取溫度60℃,料液比1∶16,pH 4,提取時(shí)間3 h。

(2)有機(jī)溶劑提取法 左航等[9]通過(guò)單因素試驗(yàn)和正交試驗(yàn)優(yōu)化了杜仲葉中綠原酸的提取條件,由試驗(yàn)結(jié)果可知,杜仲葉中綠原酸提取的最佳工藝組合為:提取溫度90℃,乙醇水溶液體積分?jǐn)?shù)為70%,料液比1∶16,提取1.5 h。由極差分析可得,提取時(shí)間的影響最大,其次是料液比,提取劑中乙醇的含量,提取溫度的影響最小。

1.2 物理因素提取法

在物理因素提取法中,有超聲輔助提取法、微波輔助提取法、超高壓提取法等提取方法。這主要是利用超聲、微波、高壓等物理因素所具有的機(jī)械效應(yīng)、空化效應(yīng)、生物效應(yīng)、熱效應(yīng)來(lái)有效的提高活性物質(zhì)的提取效率和得率。

(1)超聲提取法 周軍等[10]用超聲波法提取金銀花中的綠原酸,并與傳統(tǒng)的水提、醇提工藝進(jìn)行了比較,采用薄層層析法定性檢驗(yàn),紫外分光光度法測(cè)定綠原酸的含量。結(jié)果表明,超聲波法的提取率高于傳統(tǒng)溶劑提取法。在pH為4的70%乙醇中預(yù)浸泡24 h,料液比為1∶10,再用超聲波提取4次,每次30 min,綠原酸收率最高含量可達(dá)9.58%。

(2)微波輔助提取法 童玲等[11]分別用微波輔助提取、超聲輔助提取、冷凝回流提取、室溫冷浸提取4種方法提取杜仲葉中的綠原酸,并將4種提取方法進(jìn)行比較,結(jié)果顯示提取率分別是21.07%、8.94%、7.23%、5.13%?？梢钥闯鑫⒉ㄝo助提取效率明顯高于超聲輔助提取法和傳統(tǒng)提取法。微波輔助提取時(shí)的最佳條件是:乙醇體積分?jǐn)?shù)60%、固液比1∶50、輻射時(shí)間2 min、微波壓力2 atm。

(3)超高壓技術(shù)提取法 田龍[12]對(duì)杜仲葉綠原酸的提取工藝方法進(jìn)行了研究。建立了杜仲葉綠原酸超高壓提取方法,以分光光度法為檢測(cè)手段,以綠原酸的提取率為參數(shù)并將超高壓提取法在提取時(shí)間、提取劑用量和提取率等方面與索氏回流和浸泡提取方法各方面進(jìn)行了比較。最佳工藝條件為:溶劑為體積分?jǐn)?shù)60%的乙醇,壓力為400 MPa,杜仲葉粉末每克溶劑添加量為40 mL,溫度為50℃。該條件下提取率為1.15%。

1.3 酶法提取

戴瑜等[13]研究了半纖維素酶法提取杜仲葉中的主要有效成分綠原酸,通過(guò)單因素試驗(yàn)、正交試驗(yàn)和方差分析確定了半纖維素酶法提取杜仲葉中綠原酸的最佳提取條件。即加入996 U/g半纖維素酶0.45%,提取pH為4.0,溫度為40℃,得率最高可達(dá)38.01 mg/g。這種條件下半纖維素酶能發(fā)揮最大的催化效果,也能夠較大地增加杜仲葉中綠原酸的得率。由于酶解的作用是使植物材料降解,使植物的有效成分更多的溶出,因此檢測(cè)指標(biāo)綠原酸得率的增加,標(biāo)志著杜仲葉有效成分的得率也相應(yīng)的增加?；诿附馓崛》ǖ牟僮骱?jiǎn)單、污染少、得率高等優(yōu)點(diǎn),使得酶解提取法在綠原酸的提取分離研究中將得到廣泛的應(yīng)用。

1.4 超臨界CO2流體萃取法

超臨界CO2流體萃取法作為一種將提取分離同時(shí)進(jìn)行的萃取技術(shù)目前也廣泛的被運(yùn)用到綠原酸的提取分離中。譚偉等[14]對(duì)超臨界CO2萃取葵粕綠原酸的影響因素 (夾帶劑種類(lèi)、濃度、用量、萃取溫度、壓力、時(shí)間以及CO2流量)進(jìn)行了詳細(xì)的分析和討論。結(jié)果表明,以上因素對(duì)綠原酸萃取率都有一定的影響,在各單因素試驗(yàn)條件下選擇乙醇作為夾帶劑、乙醇濃度70%、乙醇用量400 mL/100 g、萃取溫度50℃、萃取壓力30 MPa、萃取時(shí)間5 h和CO2流量3.5 L/h為好。

2 綠原酸的分離純化方法

2.1 萃取法

陳立鋼等[15]通過(guò)流動(dòng)注射的方法將動(dòng)態(tài)微波輔助萃取與高效液相色譜相連接,用于測(cè)定金銀花中的綠原酸,萃取過(guò)程在一個(gè)循環(huán)體系中完成。選擇體積分?jǐn)?shù)為60%的甲醇作為萃取劑,70 W的微波前向功率微波萃取5 min,并設(shè)定萃取劑流量為1 mL/min。在24 h內(nèi),連續(xù)分析6個(gè)樣品,得到的日間精密度 (RSD)為3.4%。24 h分析2個(gè)樣品,連續(xù)分析3 d得到的日間精密度 (RSD)為4.1%。在3個(gè)實(shí)際樣品中分別加入一定量的綠原酸標(biāo)準(zhǔn)溶液,充分混勻,放置24 h后,用N2揮干溶劑,在上述選擇的最佳條件下進(jìn)行測(cè)定。每個(gè)加標(biāo)樣品分析2次,得到的平均加標(biāo)回收率為98.1%,RSD為2.7%。

2.2 水提醇沉法

鄭喜群等[16]研究了水提醇沉法從葵花籽中提取綠原酸的工藝,結(jié)果表明,水酶法提取葵花籽油脂后分離出的浸泡液進(jìn)行真空濃縮到固形物含量為13%時(shí),加入此時(shí)溶液量1倍的95%乙醇2次,沉降多糖,然后繼續(xù)真空濃縮,冷卻可析出純度為75.9%以上的綠原酸。

2.3 大孔樹(shù)脂吸附法

李丹等[17]利用NKA-9大孔吸附樹(shù)脂對(duì)元寶楓綠原酸的吸附與洗脫性能進(jìn)行了研究。結(jié)果表明:NKA-9樹(shù)脂對(duì)元寶楓綠原酸具有較大的吸附容量,且易被解吸附,洗脫峰集中,分離效果較好。同時(shí)得到分離純化的最佳條件為:進(jìn)樣液質(zhì)量濃度0.26 mg/mL,pH為2.5,進(jìn)樣液體積為樹(shù)脂柱床體積的4～5倍,體積流量1.5 mL/min。用體積分?jǐn)?shù)30%、4倍床體積的乙醇對(duì)樹(shù)脂進(jìn)行洗脫,可得到純度為26.62%的綠原酸粗品,收率達(dá)83.69%。

2.4 聚酰胺柱層析法

游慶紅等[18]對(duì)金銀花中綠原酸的提取和純化方法進(jìn)行研究。在純化試驗(yàn)中選用乙酸乙酯萃取法和聚酰胺層析法,取3份采用最佳工藝條件提取的樣品溶液5 mL,緩慢轉(zhuǎn)移至裝有3 g已處理過(guò)聚酰胺粉的層析柱中,分別用濃度10%、30%和50%乙醇溶液洗脫,以2 mL/min的流速使柱內(nèi)液面高度保持在1～2 cm。每隔20 min采樣1次并測(cè)定樣品溶液中綠原酸的含量,從而繪制洗脫曲線。得出純化的最佳方案,并對(duì)聚酰胺層析的層析條件和不同洗脫劑的洗脫效果進(jìn)行考察。試驗(yàn)表明,乙酸乙酯萃取法純化后綠原酸純度為18.4%;吸附有綠原酸的聚酰胺以濃度30%的乙醇洗脫效果較好,得到的綠原酸純度為33.2%。

2.5 膜分離法

楊祖金等[19]研究了超濾膜技術(shù)應(yīng)用于杜仲葉綠原酸的分離純化。以綠原酸轉(zhuǎn)移率為指標(biāo),考察料液溫度、超濾壓力、超濾時(shí)間、膜截留分子量對(duì)綠原酸轉(zhuǎn)移率的影響。正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,料液溫度為40℃、超濾壓力為0.36 MPa、超濾時(shí)間為60 min,膜截留分子量為200 000時(shí),綠原酸轉(zhuǎn)移率最高為67.57%,通過(guò)繼續(xù)加入24 L的去離子水進(jìn)行超濾,綠原酸的轉(zhuǎn)移率可高達(dá)99.38%。

3 綠原酸的檢測(cè)方法

目前,隨著分析檢測(cè)技術(shù)的快速發(fā)展,傳統(tǒng)的檢測(cè)方法比如薄層色譜、分光光度法等逐漸地被精確的檢測(cè)方法所取代。比如,高效液相色譜法、氣象色譜法等已經(jīng)成為主流的檢測(cè)方法。這些方法相對(duì)于傳統(tǒng)方法,得到的試驗(yàn)數(shù)據(jù)更精確,試驗(yàn)結(jié)果更準(zhǔn)確。

3.1 分光光度法

孫蓮等[20]研究了利用紫外分光光度法測(cè)定桑葉中綠原酸的含量,并建立薄層-紫外分光光度法測(cè)定桑葉中綠原酸的方法。采用甲醇為溶劑提取桑葉中的綠原酸,薄層層析法分離綠原酸,采用 T U-1800SPC型紫外分光光度計(jì)于329 nm處測(cè)定綠原酸的含量。結(jié)果綠原酸的質(zhì)量在50～250 μ g范圍內(nèi)與吸光度成良好的線性關(guān)系 (r=0.999 6),平均回收率為95.0%,RSD為1.2%。

3.2 薄層色譜掃描法

李春紅等[21]采用薄層色譜法對(duì)川銀花中綠原酸的含量進(jìn)行了分析測(cè)定,以建立川銀花的質(zhì)量控制標(biāo)準(zhǔn)。試驗(yàn)結(jié)果顯示,綠原酸在0.8～8 μ g范圍內(nèi)具有良好的線性關(guān)系 (r=0.999 8),平均回收率為98.75%,RSD為0.29%。

3.3 高效液相色譜法

李紅梅等[22]利用高效液相色譜法對(duì)蒲公英提取物中綠原酸含量進(jìn)行了測(cè)定。采用Agilent Zorbax SB C18柱 (416 mm×250 mm,5 μ m),流動(dòng)相為乙腈-0.4%磷酸溶液 (10∶90),流速110 mLmin-1,檢測(cè)波長(zhǎng)324 nm,柱溫30℃。結(jié)果顯示:綠原酸的線性范圍為0.04～0.60 μ g(r=0.999 2),平均加樣回收率(n=5)為96.48%。

李鑫等[23]利用高效液相色譜法測(cè)定甘薯葉中綠原酸含量,并建立了測(cè)定甘薯葉中綠原酸含量的高效液相色譜方法。采用色譜柱 Lichrospher5-C18柱 (150 mm×4.6 mm,5 μ m),以A(水∶乙腈∶冰醋酸=980∶20∶5)(V∶V∶V),B(乙腈∶冰醋酸=1 000∶5)(V∶V)為流動(dòng)相,線性梯度洗脫,流速0.3 mL/min,檢測(cè)波長(zhǎng)324 nm。結(jié)果表明,綠原酸在5～100 μ g/mL時(shí),綠原酸質(zhì)量濃度與峰面積呈良好的線性關(guān)系,回歸方程為y=195.47x+144.29(r=0.999 1),平均回收率可達(dá)93.1%。

3.4 氣相色譜法

別立潔等[24]對(duì)煙草中的主要成分綠原酸進(jìn)行了定量分析,并建立了測(cè)定煙草中綠原酸含量的氣相色譜方法。采用HP-6890氣相色譜儀,色譜柱:HP-5(Crosslinked 5%pH ME Siloxane),30 m×0.32 mm×0.25 μ m Film Thickness毛細(xì)管柱,流速:6 mL/min,溫度:180℃ (保持 2 min)升溫到250℃(5℃/min),載氣:N2,檢測(cè)器:FID。

3.5 毛細(xì)管電泳法

趙陸華等[25]采用未涂層毛細(xì)管柱,濃度為200 mmol硼酸與質(zhì)量分?jǐn)?shù)為10%甲醇為緩沖液,分離電壓為30 kV,檢測(cè)波長(zhǎng)為328 nm,溫度為25℃,進(jìn)樣條件為50 kPa,5.0 s。在此條件下測(cè)定鳥(niǎo)骨藤藥材及其制劑中綠原酸的含量。結(jié)果表明,綠原酸質(zhì)量濃度為21.0～105.0 μ g/mL的線性關(guān)系良好(r=0.999 7),平均回收率為99.16%,RSD為0.8%。

4 結(jié)語(yǔ)

綜上所述,綠原酸的提取技術(shù)以物理因素輔助溶劑提取為主,而酶法提取則是近期開(kāi)發(fā)的一種新興提取技術(shù);純化技術(shù)以萃取技術(shù)和樹(shù)脂分離技術(shù)相結(jié)合,近年來(lái),超臨界流體萃取法作為一種將提取和純化同時(shí)進(jìn)行的高效技術(shù)越來(lái)越多的被運(yùn)用到綠原酸的分離純化上;隨著分析檢測(cè)技術(shù)的快速發(fā)展,傳統(tǒng)的綠原酸檢測(cè)方法比如薄層色譜、分光光度法等逐漸地被高效液相色譜、氣相色譜等精確的檢測(cè)方法所取代。近年來(lái),隨著技術(shù)的快速發(fā)展與成熟,對(duì)于綠原酸各方面的研究也日趨完善,但是由于這類(lèi)化合物存在多個(gè)酚羥基,所以對(duì)光、氧氣、pH、溫度、酶等因素都比較敏感,在提取、加工以及后續(xù)的檢測(cè)中會(huì)生成人工產(chǎn)物,這樣不僅會(huì)影響藥效,也會(huì)影響食品或飲料的質(zhì)量。所以,有必要對(duì)相應(yīng)的研究方法及過(guò)程進(jìn)行探討。通過(guò)深入研究,必將找到簡(jiǎn)單易行、收率高、檢測(cè)方便的方法,將有助于推動(dòng)對(duì)于綠原酸的研究以及相關(guān)的產(chǎn)品開(kāi)發(fā)。

[1]張凌裳,王紅連,杜郭君,等.杜仲葉粉提取綠原酸工藝的優(yōu)化 [J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2009,37(17):8162-8164.

[2]張東明.酚酸化學(xué)[M].北京:化學(xué)工業(yè)出版社,2008.222.

[3]周榮漢.中藥資源學(xué) [M].北京:中國(guó)醫(yī)藥科技出版社,1993.240.

[4]高錦明,張鞍靈,張康健,等.綠原酸分布、提取與生物活性研究綜述 [J].西北林學(xué)院學(xué)報(bào),1999,14(2):73-82.

[5]Pirjo Mattila,Jarkko Hellstrom.Phenolic acids in potatoes vegetables and some of their products[J].Journal of Food Composition and Analysis,2006,19(3):205-211.

[6]李雄輝,胡居吾,熊 偉,等.一種綠原酸提取的方法:中國(guó),200910115669.4[P].2009-12-16.

[7]Dorrell D G.Chlorogenic acid content of meal from cultivated and wild sunflowers[J].Crop Science,1976,16:422.

[8]王 茜,李 智,何 琦,等.杜仲葉中綠原酸提取分離工藝條件的研究[J].離子交換與吸附,2008,24(1):73-80.

[9]左 航,黃 文,李天宏,等.杜仲葉中綠原酸的提取條件優(yōu)化及其提取物的降血脂作用[J].林業(yè)科學(xué),2009,45(1):158-160.

[10]周 軍,黃 瓊,李志光,等.超聲波法提取金銀花中的綠原酸 [J].化學(xué)與生物工程,2008,28(1):31-33.

[11]童 玲,歐陽(yáng)湘云,韓玉波,等.微波助提取及HPLC檢測(cè)杜仲葉中的綠原酸 [J].分析試驗(yàn)室,2008,27(S1):127-130.

[12]田 龍.超高壓技術(shù)高效提取杜仲葉綠原酸 [J].食品與生物技術(shù)學(xué)報(bào),2008,27(6):69-72.

[13]戴 瑜,李姣娟,周盡花,等.半纖維素酶法提取杜仲葉綠原酸 [J].林業(yè)科技開(kāi)發(fā),2009,23(3):96-99.

[14]譚 偉,丘泰球,陽(yáng)元娥,等.超臨界CO2萃取葵粕綠原酸影響因素分析[J].食品工業(yè),2008,(4):17-20.

[15]陳立鋼,丁 蘭,于愛(ài)民,等.動(dòng)態(tài)微波輔助萃取與高效液相色譜聯(lián)用測(cè)定金銀花中的綠原酸 [J].吉林大學(xué)學(xué)報(bào) (理學(xué)版),2008,46(1):135-138.

[16]鄭喜群,蔣繼豐,劉曉蘭,等.水提醇沉法從葵花籽中提取綠原酸 [J].食品科學(xué),2006,27(1):159-161.

[17]李 丹,劉 波,司輝清,等.NKA-9大孔吸附樹(shù)脂對(duì)元寶楓綠原酸吸附與洗脫性能的研究 [J].食品與生物技術(shù)學(xué)報(bào),2009,28(1):136-139.

[18]游慶紅,尹秀蓮,朱 曼,等.金銀花中綠原酸的提取純化方法研究[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2009,37(24):11549-11550.

[19]楊祖金,江燕斌,葛發(fā)歡,等.超濾膜技術(shù)分離杜仲葉綠原酸的研究[J].中藥材,2008,31(4):585-588.

[20]孫 蓮,胡爾西丹,常軍民,等.薄層-紫外分光光度法測(cè)定桑葉中的綠原酸 [J].時(shí)珍國(guó)醫(yī)國(guó)藥,2006,17(7):1199-1201.

[21]李春紅,田 吉,何 兵,等.川銀花中綠原酸的薄層鑒別和含量測(cè)定[J].華北煤炭醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào),2009,11(4):492-493.

[22]李紅梅,張 榕,常東勝,等.高效液相色譜法測(cè)定蒲公英提取物中綠原酸含量 [J].藥物分析雜志,2009,29(7):1230-1232.

[23]李 鑫,王 征.高效液相色譜法測(cè)定甘薯葉中綠原酸含量[J].湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào) (自然科學(xué)版).2009,35(2):130-132.

[24]別立潔,尹 鍵,張 婷,等.氣相色譜法測(cè)定煙草中的綠原酸 [J].鄭州輕工業(yè)學(xué)院學(xué)報(bào) (自然科學(xué)版),2001,16(3):65-68.

[25]趙陸華,相秉仁,譚喜瑩.高效毛細(xì)管電泳法測(cè)定鳥(niǎo)骨藤藥材及其制劑中綠原酸的含量 [J].中國(guó)現(xiàn)代應(yīng)用藥學(xué)雜志,2008,25(2):152-154.