劉 忠(遼寧醫(yī)學院附屬第一醫(yī)院呼吸內(nèi)科,錦州市 121001)
慢性阻塞性肺疾病(Chronic obstructive pulmonary disease,COPD)的患病率和死亡率不僅在我國而且在全球范圍內(nèi)均呈上升趨勢。其中肺動脈高壓是COPD最常見的并發(fā)癥,也是臨床防治的難點之一,其發(fā)病機制與低氧、炎癥、內(nèi)皮損傷等多種因素有關。近年來,銀杏葉提取物(Ginkgo biloba extract,EGb)已應用于呼吸系統(tǒng)疾病的治療,取得了一定的療效,EGb可以在一定程度上減輕氣道的炎癥和改善氣道的重構[1]。本研究選擇熏吸香煙加氣管內(nèi)注射脂多糖(Lipopolysaccharicle,LPS)法[2]復制COPD大鼠模型,應用光鏡、電鏡觀察COPD模型大鼠肺組織形態(tài)學變化,并測定EGb治療前后大鼠支氣管肺泡灌洗液(BALF)中內(nèi)皮素-1(ET-1)和轉化生長因子-β1(TGF-β1)水平變化、氣道炎癥細胞數(shù)量變化,以探討EGb對COPD模型大鼠氣道炎癥是否具有抑制作用,為臨床應用EGb治療COPD提供理論依據(jù)。
800型離心沉淀機(上海手術器械十廠);Ⅲ型超薄切片機(瑞典LKB公司);JEM-1200EX型透射電子顯微鏡(日本電子公司);BX40型光學顯微鏡(日本Olympus公司);CIAS-1000型細胞圖象分析系統(tǒng)(北京大恒圖象視覺有限公司);7170A型全自動生化分析儀(日本日立公司)。
香煙為烤煙型無濾嘴大前門牌(上海卷煙廠,焦油量:15 mg,煙氣煙堿量:1.1 mg);LPS(美國Sigma公司);酶聯(lián)免疫(ELISA)試劑盒和放射免疫試劑盒(天津九鼎醫(yī)學生物工程有限公司);EGb(北京雙鶴高科天然藥物有限責任公司,批號:20100712)。
健康SD大鼠48只,鼠齡4~8周,體重(210±20)g,♀♂兼用,由遼寧醫(yī)學院實驗動物中心提供(動物生產(chǎn)合格證號:SCXK(遼)2003-2007)。
實驗分為3組,即正常對照(將大鼠于第1、14天氣管內(nèi)注入0.9%生理鹽水0.2 mL,第8天起每天ig 0.9%生理鹽水0.05 mL·kg-1)、COPD模型[將大鼠于第1、14天氣管內(nèi)注入LPS 200 μL(1 μg·μL-1),第2~13、5~28天在自制吸煙染毒箱(70 cm×50 cm×50 cm,右上方帶有1.5 cm×1.5 cm通氣孔)內(nèi)熏香煙2次/d,吸煙量為14支/次,其中每次吸煙時間1 h,2次間隔為1 h;第8天起每天ig 0.9%生理鹽水0.05 mL·kg-1,至第28天處死]和EGb(氣管內(nèi)注入LPS和熏香煙過程同COPD模型組,第8天起每天ig EGb 200 mg·kg-1,至第28天處死)組。
將大鼠用2%的戊巴比妥(25 mg·kg-1)麻醉后仰臥固定于操作臺,切開胸部,暴露出氣管和雙肺,結扎右主支氣管,在隆突上用套管針穿刺至左肺,緩慢注入無菌生理鹽水3 mL,每次注入后立即回吸得到BALF,重復3次。灌洗液以紗布過濾,回收率為60%~70%。吸取1 mL BALF置于血細胞計數(shù)器上,計數(shù)白細胞總數(shù)和分類。余BALF于4℃、1 500 r·min-1離心10 min,取其上清液置入離心管,-20℃貯藏,備用。
應用ET-1、TGF-β1檢測試劑盒,按說明書用放射免疫法檢測BALF中ET-1水平,用ELISA法測定BALF中TGF-β1的濃度。
取每只大鼠的隆突上2~3 mm處的氣管和中葉肺組織5 mm3,10%福爾馬林固定,酒精梯度脫水,浸蠟,包埋,切片,HE染色,光鏡觀察。將經(jīng)過4%戊二醛固定的1 mm3右肺組織漂洗,用2%四氧化鋨固定,丙酮梯度脫水,包埋,聚合;切片,醋酸鈾-枸櫞酸鉛電子染色,透射電鏡觀察。每張切片均選取上、中、下、左和右5個視野,用高清晰度彩色病理圖文報告分析軟件對HE染色標本分別測量下列指標,測量時避開支氣管和大、中血管:(1)肺平均內(nèi)襯間隔(Mean lung internal lining interval,MLI):在高清晰度彩色病理圖文報告分析軟件上,以視野正中為中心劃“+”字交叉線,計數(shù)通過該交叉線的肺泡間隔數(shù)(NS),測出“+”字線的總長度(L)為2.552×10-3m,以MLI=L/NS得到MLI,其數(shù)值反映肺泡平均直徑。(2)平均肺泡數(shù)(Mean alveoli numbers,MAN):計數(shù)每個視野內(nèi)的肺泡數(shù)(Na),測出每個視野的面積(S)為0.39×10-6m2,以MAN=Na/S計算各個視野的MAN,其數(shù)值反映肺泡密度。
正常對照組大鼠肺組織氣道黏膜上皮結構完整,纖毛排列整齊,管壁規(guī)整未見增厚,支氣管黏膜下未見明顯炎細胞浸潤,管腔內(nèi)未見滲出物,肺泡結構連續(xù),肺泡壁完整,肺泡腔未見病理性擴大,肺間質血管未見充血;COPD模型組大鼠小支氣管部分上皮脫落,支氣管腔內(nèi)可見黏液栓和大量炎細胞,管壁及其周圍有明顯炎細胞浸潤,呼吸性細支氣管破壞,管腔部分閉塞,肺泡壁變薄甚至破裂,肺泡腔不規(guī)則擴大,有的肺泡相互融合成肺大泡,肺小動脈平滑肌細胞增生;EGb組大鼠肺組織炎細胞浸潤減少,支氣管黏膜上皮纖毛脫落及肺泡壁變薄、斷裂等損傷現(xiàn)象均較COPD模型組明顯減輕。大鼠肺組織光鏡下形態(tài)見圖1。
圖1 大鼠肺組織光鏡下形態(tài)(HE染色,40×)A.正常對照組;B.COPD模型組;C.EGb組Fig 1 Pulmonary morphology of rats in each group under light microscope(HE staining,40×)A.normal control group;B.COPD model group;C.EGb group
正常對照組大鼠氣道、支氣管黏膜上皮細胞纖毛排列整齊,無脫落,肺泡上皮細胞器結構正常,肺氣血屏障結構完整,毛細血管內(nèi)皮細胞無腫脹及空泡樣變;COPD模型組大鼠Ⅰ型肺泡上皮細胞腫脹和脫落,杯狀細胞分泌增加,Ⅱ型肺泡上皮細胞增生,板層小體排空,線粒體腫脹,呈空泡樣變,內(nèi)質網(wǎng)擴張,核固縮,表面纖毛減少脫落,肺泡腔內(nèi)的巨噬細胞溶酶體增多;EGb組大鼠Ⅰ型肺泡上皮細胞腫脹、脫落和Ⅱ型肺泡上皮細胞線粒體腫脹、板層小體排空等損傷有所改善。大鼠肺組織電鏡下形態(tài)見圖2。
圖2 大鼠肺組織電鏡下形態(tài)(10 000×)A.正常對照組;B.COPD模型組;C.EGb組Fig 2 Pulmonary morphology of rats in each group under electron microscope(10 000×)A.normal control group;B.COPD model group;C.EGb group
與正常對照組比較,COPD模型組MLI顯著升高,MAN顯著降低(P<0.01);與COPD模型組比較,EGb組MLI顯著降低,MAN顯著升高(P<0.05)。大鼠肺組織形態(tài)學定量分析結果見表1。
表1 大鼠肺組織形態(tài)學定量分析結果(±s,n=16)Tab 1 Result of morphologic quatitative analysis of lung tissue in rat(s±s,n=16)
表1 大鼠肺組織形態(tài)學定量分析結果(±s,n=16)Tab 1 Result of morphologic quatitative analysis of lung tissue in rat(s±s,n=16)
與正常對照組比較:*P<0.01;與COPD模型組比較:#P<0.05vs.normal control group:*P<0.01;vs.COPD model group:#P<0.05
MAN/(×106個/m2)405.33±25.46 283.20±17.81*313.59±24.28#組別正常對照組COPD模型組EGb組MLI/(×106個/m2)51.24±8.37 91.67±16.81*77.96±9.81#
與正常對照組比較,COPD模型組BALF中白細胞總數(shù)和中性粒細胞(PMN)數(shù)顯著增加(P<0.01),ET-1、TGF-β1濃度顯著升高(P<0.01);與COPD模型組比較,EGb組BALF中白細胞總數(shù)和PMN數(shù)顯著下降(P<0.05),ET-1、TGF-β1濃度顯著降低(P<0.05)。大鼠BALF中細胞總數(shù)、分類計數(shù)和ET-1、TGF-β1水平變化見表2。
表2 大鼠BALF中細胞總數(shù)、分類計數(shù)和ET-1、TGF-β1水平變化(±s,n=16)Tab 2 Result of the level of ET-1 and TGF-β1,the total counts and differential counting of WBC in BALF of rat(s±s,n=16)
表2 大鼠BALF中細胞總數(shù)、分類計數(shù)和ET-1、TGF-β1水平變化(±s,n=16)Tab 2 Result of the level of ET-1 and TGF-β1,the total counts and differential counting of WBC in BALF of rat(s±s,n=16)
與正常對照組比較:*P<0.01;與COPD模型組比較:#P<0.05vs.normal control group:*P<0.01;vs.COPD model group:#P<0.05
組別正常對照組COPD模型組EGb組TGF-β1/μg·L-1 1.62±0.46 5.66±0.35*3.25±0.69#細胞總數(shù)/(×108個/L)1.73±0.83 6.50±0.72*3.21±0.89#PMN數(shù)/(×108個/L)0.113±0.041 1.570±0.360*0.543±0.213#PMN/%6.09±2.95 24.95±5.99*17.19±5.49#ET-1/ng·L-1 66.7±10.55 129.33±12.67*104.69±10.82#
COPD是一組氣流受限為特征的肺部疾病,氣流受限不完全可逆,呈進行性發(fā)展,但可預防和治療[3]。其發(fā)病機制尚未完全明了,目前普遍認為,COPD以氣道、肺實質和肺血管的慢性炎癥為特征,這種慢性氣道炎癥是由非常復雜的相互作用的細胞因子構成的網(wǎng)絡調控的[4]。
本研究通過熏吸香煙加氣管內(nèi)注射LPS法復制COPD大鼠模型,結果顯示,COPD模型組大鼠的氣道、支氣管有明顯的慢性支氣管炎特征性病理改變,肺組織出現(xiàn)局限性肺氣腫,肺泡隔斷裂、融合,周圍纖維細胞增生。同時,圖像分析系統(tǒng)提示,COPD模型組MLI較正常對照組增高,而MAN較正常對照組降低,兩指標的差異顯著,說明模型復制成功。
本研究表明,COPD模型組大鼠BALF中ET-1、TGF-β1的濃度、白細胞總數(shù)和PMN數(shù)均較正常對照組顯著增高(P<0.01),提示COPD的氣道炎癥與支氣管肺局部ET-1、TGF-β1的水平增高密切相關。ET-1是一種生物活性多肽,其在肺部有著廣泛的生物學效應,不僅有收縮氣管、支氣管和血管平滑肌以及促平滑肌細胞、成纖維細胞增生作用,而且還有促進腺體分泌、炎性介質釋放等多種作用。肺臟既是內(nèi)皮素作用的靶器官,又是ET-1合成、分泌、代謝的主要場所。有研究表明,組織缺血、缺氧及酸中毒情況下,ET-l釋放增多,且機體對其反應性增強,同時促使血管內(nèi)皮強烈收縮[5]。TGF-β1是一種多功能細胞因子,能夠誘導上皮細胞層破壞、氣道炎癥、平滑肌細胞增殖、杯狀細胞增生以及促進血管重構等多種細胞反應[6]。TGF-β1主要由嗜酸粒細胞分泌,成纖維細胞、巨噬細胞、中性粒細胞等多種細胞均能分泌TGF-β1。在哮喘和COPD患者及急性、亞急性和慢性哮喘小鼠模型的上皮細胞和平滑肌細胞中均發(fā)現(xiàn) TGF-β1的過度表達[7,8]。本文結果提示,COPD的氣道炎癥與支氣管肺局部ET-1、TGF-β1的濃度呈顯著正相關,可能ET-1釋放增多致血管內(nèi)皮細胞產(chǎn)生缺血性壞死,從而使血管內(nèi)皮細胞本身釋放TGF-β1增加,而TGF-β1能夠通過促使杯狀細胞增生,誘導釋放ET-1導致血管重塑,促進氣道平滑肌的增生肥大、遷移以及破壞上皮細胞層等多種途徑參與氣道重塑[9]。結果表明,ET-1、TGF-β1參與了COPD氣道炎癥反應和氣道結構的重塑。
EGb是從銀杏葉中提取的具有獨特藥理活性的化合物,主要化學成分有黃酮類、萜類、酚類等。研究報道,EGb具有清除自由基,改善血液流變學及保護血管內(nèi)皮細胞,抗炎,阻止血小板、白細胞與內(nèi)皮細胞的黏附等作用[10]。本研究利用EGb進行干預,以探討其對COPD可能的預防保護作用。結果顯示,EGb組大鼠病理學檢查提示肺組織損傷較COPD模型組減輕。形態(tài)定量分析結果表明,EGb組MLI較COPD模型組降低,MAN較COPD模型組升高(P<0.05),說明EGb可以抑制肺泡融合等肺泡結構改變,對肺氣腫結構的改建起到了一定的防治、緩解作用。同時研究結果表明,EGb組大鼠BALF中ET-1、TGF-β1濃度與白細胞總數(shù)、PMN數(shù)較COPD模型組下降(P<0.05),提示EGb還可以有效抑制腺泡內(nèi)肺動脈血管壁炎細胞浸潤、血管壁平滑肌細胞增生,抑制肺血管和氣道結構的重塑。
由此可見,本研究中EGb對大鼠COPD氣道重塑和肺血管重塑均有明顯的抑制作用,筆者推測其作用機制可能與抑制氣道、肺組織、肺血管的炎癥反應有關,因為炎癥貫穿COPD的整個發(fā)生發(fā)展過程。鑒于EGb的藥理作用和COPD形成因素的復雜性,其確切的作用機制有待進一步深入研究。
[1] 王家珍,吳天清,周禮遠.Egb761對哮喘模型大鼠MMP-9及TIMP-1表達的影響和對氣道重構的干預研究[J].中國藥房,2008,19(24):1 847.
[2] 宋一平,崔德健,茅培英.慢性阻塞性肺病大鼠模型的建立及藥物干預的影響[J].中華內(nèi)科雜志,2000,39(8):712.
[3] 中華醫(yī)學會呼吸病學分會慢性阻塞性肺疾病學組.慢性阻塞性肺疾病診治指南(2007年修訂版)[J].中華結核和呼吸雜志,2007,30(1):8.
[4] Panzner P,Lafitte JJ,Tsicopoulos A,et al.Marked up-regulation of T lymphocytes and expression of interleukin-9 in bronchial biopsies from patients with chronic bronchitis with obstruction[J].J Chest,2003,124(10):1 909.
[5] Pullamsetti SS,Schermuly RT.Endothelin receptor antagonists in preclinical models of pulmonary hypertension[J].Eur J Clin Invest,2009,39(7):630.
[6] Makinde T,Murphy RF,Agrawal DK.The regulatory role of TGF—beta in airway remodeling in asthma[J].Immunol Cell Biol,2007,85(2):348.
[7] Takizawa H,Tanaka M,Takami K,et al.Increased expression of transforming growth factor—beta1 in small airway epithelium from tobacco smokers and patients with chronic obstructive pulmonary disease(COPD)[J].Am J Respir Crit Care Med,2001,163(9):1 476.
[8] Locke NR,Royce SG,Wainewright JS,et al.Comparison of airway remodeling in acute,subacute,and chronic models of allergic airways disease[J].Am J Respir Cell Mol Biol,2007,36(5):625.
[9] Tagaya E,Tamaoki J.Mechanisms of airway remodeling in asthma[J].Allergol Int,2007,56(2):331.
[10] 張 宏,孟亞娟,斯 琴,等.銀杏葉提取物對脂多糖誘導大鼠急性肺損傷的保護作用[J].基礎醫(yī)學與臨床,2002,22(1):155.