張 斌 孫蘭萍 馬 龍 趙大慶 許 暉

(蚌埠學(xué)院食品與生物工程系1,蚌埠 233030)

(合肥工業(yè)大學(xué)生物與食品工程學(xué)院2,合肥 230009)

大孔樹(shù)脂分離純化花生殼總黃酮的研究

張 斌1,2孫蘭萍1馬 龍1趙大慶1許 暉1

(蚌埠學(xué)院食品與生物工程系1,蚌埠 233030)

(合肥工業(yè)大學(xué)生物與食品工程學(xué)院2,合肥 230009)

為了分離純化花生總殼黃酮,比較了 8種大孔樹(shù)脂的靜態(tài)吸附過(guò)程,篩選出了適合吸附花生殼總黃酮的樹(shù)脂。研究了花生殼總黃酮在大孔吸附樹(shù)脂上的動(dòng)態(tài)吸附特性,并確定分離花生殼總黃酮的適宜工藝條件。結(jié)果表明:AB-8大孔樹(shù)脂對(duì)花生殼總黃酮有較好的吸附分離性能,其對(duì)花生殼總黃酮的靜態(tài)吸附平衡時(shí)間為 4 h;AB-8型大孔樹(shù)脂對(duì)花生殼總黃酮有較好的吸附和解吸效果;較優(yōu)的吸附分離工藝參數(shù)為:樣液 pH值 6.0,上樣液流速 1 mL/min,上樣液質(zhì)量濃度 0.5 mg/mL,用 70%乙醇洗脫時(shí),解吸率達(dá)94.23%,3 BV洗脫液基本上能將花生殼總黃酮洗脫下來(lái)。

花生殼 總黃酮 大孔樹(shù)脂 分離純化

花生 (Arachis hypogaea L.)屬豆科一年生草本科植物,是我國(guó)重要經(jīng)濟(jì)作物?；ㄉ鷼な瞧淝v果外殼,在加工過(guò)程中每年產(chǎn)生約 450萬(wàn) t,除了很少部分被用于飼料加工、食用菌栽培、化工原料或藥品生產(chǎn)等外,絕大部分都被當(dāng)作燃料或廢棄物,資源利用率非常低,其資源開(kāi)發(fā)尚有很大的潛力[1-2]。研究表明花生殼中除含有碳水化合物和粗纖維外,還含有黃酮類物質(zhì)[3]?，F(xiàn)代科學(xué)研究證明花生殼黃酮具有抗氧化、抗菌、抗病毒、抗癌癥、抗衰老、抑制高血壓高血脂及預(yù)防心血管疾病等多種藥理作用[4-5]。因此,對(duì)花生殼黃酮化合物的研究與利用越來(lái)越受到人們的重視,其在食品、醫(yī)藥、保健品和化妝品等領(lǐng)域也將具有廣闊的應(yīng)用前景[6-7]。目前花生殼黃酮類物質(zhì)主要采用水浸提,堿性水浸提和乙醇等溶劑法提取[8-9],粗提物中普遍存在黃酮物質(zhì)含量較低、有機(jī)溶劑殘留等缺點(diǎn),需進(jìn)一步分離純化,以提高黃酮的純度。

大孔樹(shù)脂是 20世紀(jì) 60年代發(fā)展起來(lái)的一類新型高分子材料,90年代后其應(yīng)用日趨廣泛。大孔樹(shù)脂是國(guó)家“十五”期間重點(diǎn)推廣的新技術(shù),具有吸附容量大、吸附速度快、分離效果好、再生簡(jiǎn)便等優(yōu)點(diǎn)[10-14],廣泛應(yīng)用于植物天然活性成分的分離和純化[13-15]。目前對(duì)花生殼有效成分的提取和分離純化缺乏系統(tǒng)研究,國(guó)內(nèi)外文獻(xiàn)報(bào)道不多。在前期對(duì)花生殼總黃酮提取研究的基礎(chǔ)上[8,16],選擇 8種大孔樹(shù)脂,比較其對(duì)花生殼總黃酮的吸附量和解吸率,從中篩選出較優(yōu)的大孔樹(shù)脂并對(duì)其動(dòng)態(tài)吸附和解吸性能進(jìn)行考察,以期為綜合利用花生殼資源,開(kāi)發(fā)黃酮類制品奠定基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

花生殼:花生果產(chǎn)于安徽省,手工剝殼,粉碎后備用。蘆丁 (生化試劑,國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司);大孔樹(shù)脂 (樹(shù)脂 LSA-10、LSA-21):西安深藍(lán)公司 ;樹(shù)脂 AB-8、S-8、DA-201、DM-301、HPD-100和 X-5:天津南開(kāi)大學(xué)化工廠。8種大孔樹(shù)脂的物理性能見(jiàn)表 1。

表 1 大孔樹(shù)脂的物理性能

1.2 儀器

UV1102型紫外可見(jiàn)分光光度計(jì):北京瑞利分析儀器公司;RE-52A旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器:上海亞榮生化儀器廠;BSZ-160自動(dòng)部分收集器:上海青浦滬西儀器廠;HL-2恒流泵:上海青浦滬西儀器廠。

1.3 試驗(yàn)方法

1.3.1 花生殼黃酮提取液的制備

將新鮮成熟的花生殼清洗,晾干,粉碎過(guò) 40目篩,稱取粉碎花生殼 200 g,置于 1 000 mL圓底燒瓶中,注入占燒瓶 1/2體積的乙醇,接上回流冷凝管,于水浴中加熱回流 3 h,過(guò)濾后殘?jiān)儆?1 000 mL乙醇提取 2次,合并濾液,用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器濃縮至無(wú)乙醇味,過(guò)濾得到花生殼總黃酮粗提液。

將樣品溶液稀釋至一定濃度,準(zhǔn)確吸取 1 mL于25 mL容量瓶中,與標(biāo)準(zhǔn)曲線同法操作測(cè)定吸光度,帶入回歸方程計(jì)算樣品溶液總黃酮含量。

1.3.2 標(biāo)準(zhǔn)曲線和回歸方程的建立

采用 NaNO2-Al(NO3)3-NaOH比色法[15]。準(zhǔn)確稱取干至恒重的蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品 0.020 g,用 60%乙醇溶解,定容于 100 mL容量瓶,得質(zhì)量濃度為 0.20 mg/mL蘆丁標(biāo)準(zhǔn)液。準(zhǔn)確吸取蘆丁標(biāo)準(zhǔn)溶液 0、1.0、2.0、3.0、4.0、5.0 mL于 10 mL容量瓶中 ,加入 5%的 NaNO2溶液 0.3 mL還原 6 min,加入 10%的 Al(NO3)3溶液 0.3 mL絡(luò)合 6 min,加入質(zhì)量分?jǐn)?shù)為4%(即 1 mol/L)的 NaOH溶液 4 mL,最后用 30%乙醇定容,搖勻,顯色 15 min,在波長(zhǎng) 510 nm處測(cè)定吸光度,計(jì)算得蘆丁溶液濃度 C(mg/mL)相對(duì)于吸光度A間的回歸方程為:A=11.589 0C+0.010 2,R2=0.998 1。

1.3.3 大孔樹(shù)脂的預(yù)處理

將新大孔樹(shù)脂用 95%的乙醇浸泡 24 h使其充分溶脹,然后用乙醇洗至洗出液加適量水無(wú)白色渾濁現(xiàn)象,用蒸餾水除去乙醇;再用 5%鹽酸浸泡 12 h,除去破碎的顆粒,用 3 BV(柱床體積)的 5%HCl溶液以 5 BV/h的流速?zèng)_洗樹(shù)脂,用蒸餾水洗至中性;最后用 5%NaOH浸泡 12 h,除去破碎的顆粒,用3 BV的 5%NaOH溶液以 5 BV/h的流速?zèng)_洗樹(shù)脂,蒸餾水洗至 pH值為中性[15,17]。

1.3.4 靜態(tài)吸附解吸試驗(yàn)[15,18]

1.3.4.1 吸附量的測(cè)定

準(zhǔn)確稱取經(jīng)預(yù)處理后抽干的 8種樹(shù)脂各 0.5 g裝入具塞磨口三角瓶中,分別加入一定濃度花生殼總黃酮水溶液 50 mL,于電動(dòng)振蕩器中,在室溫下以100 r/min的頻率振蕩吸附 24 h,過(guò)濾,測(cè)定濾液中剩余花生殼總黃酮濃度,按式 (1)計(jì)算各種樹(shù)脂室溫下的吸附量。

式中:Q為吸附量/mg/g;C0為起始濃度,mg/mL;Ce為平衡濃度/mg/mL;V為加入樣品液體積 /mL;W為樹(shù)脂濕重 /g。

1.3.4.2 解吸率的測(cè)定

將吸附處理好的 8種樹(shù)脂置錐形瓶中,分別加入 95%乙醇 20 mL,于吸附相同的條件下振蕩 12 h,過(guò)濾,測(cè)定濾液中花生殼黃酮濃度,按式 (2)計(jì)算樹(shù)脂的解吸率。

式中:D為解吸率/%;Cx為解吸液中花生殼總黃酮濃度 /mg/mL;Vx為解吸液體積 /mL。

1.3.4.3 靜態(tài)吸附動(dòng)力學(xué)特性的測(cè)定

在比較各樹(shù)脂的吸附量和解吸率的基礎(chǔ)上,選擇 2種較適合的樹(shù)脂測(cè)定其吸附速率。準(zhǔn)確稱取濾紙吸干的大孔樹(shù)脂 0.5 g裝入具塞磨口三角瓶中,精密加入已知濃度的花生殼總黃酮水溶液 50 mL,置恒溫振蕩器上以 100 r/min的頻率振蕩,在 6 h內(nèi),每小時(shí)各取 0.5 mL,測(cè)定總黃酮含量,繪制靜態(tài)吸附動(dòng)力學(xué)曲線。

1.3.4.4 上樣液 pH值選擇

準(zhǔn)確稱取靜態(tài)試驗(yàn)所篩選的樹(shù)脂 0.5 g于具塞磨口三角瓶中,分別加入不同 pH值的花生殼總黃酮水溶液 50 mL,其余同 1.3.4.1。

1.3.5 動(dòng)態(tài)吸附 -洗脫工藝參數(shù)測(cè)定試驗(yàn)

通過(guò)靜態(tài)吸附試驗(yàn),篩選出一種較優(yōu)的樹(shù)脂,對(duì)其進(jìn)行上樣液流速、濃度、洗脫劑濃度及解吸曲線等的考察[18]。將預(yù)處理好的樹(shù)脂裝入1.2 cm×20 cm色譜柱中,將花生殼總黃酮水溶液調(diào) pH值至最佳范圍,然后上柱,控制一定流速,分步收集 (5 mL/管),當(dāng)流出液的總黃酮濃度達(dá)泄漏點(diǎn) (即達(dá)上樣液總黃酮濃度的 1/10)時(shí),認(rèn)為總黃酮已透過(guò),停止上樣。

2 結(jié)果與討論

2.1 大孔樹(shù)脂靜態(tài)吸附解吸試驗(yàn)結(jié)果

2.1.1 不同大孔樹(shù)脂的吸附量和解吸率

由表 2可以看出,弱極性和極性樹(shù)脂的吸附能力較強(qiáng),而非極性樹(shù)脂的吸附能力較差,這與花生殼黃酮具有的多酚結(jié)構(gòu)和糖苷鍵結(jié)構(gòu)有關(guān),具有一定的極性和親水性,生成氫鍵的能力較強(qiáng),有利于弱極性和極性樹(shù)脂對(duì)其吸附。此外,樹(shù)脂吸附能力還與孔徑、比表面積、孔容等物理結(jié)構(gòu)參數(shù)有關(guān)。由表 2還可以看出,AB-8、LSA-10、S-8三種樹(shù)脂的吸附量都較大,其中 S-8樹(shù)脂吸附量較大,但解吸率太低,說(shuō)明樹(shù)脂與花生殼黃酮結(jié)合能力較強(qiáng),不利于后續(xù)黃酮類物質(zhì)的解吸;綜合比較,AB-8、LSA-10對(duì)花生殼總黃酮的吸附量和解吸率都較高,所以 AB-8、LSA-10是較適用于花生殼總黃酮吸附分離的大孔樹(shù)脂類型。

表 2 不同樹(shù)脂的吸附量與解吸率

2.1.2 大孔樹(shù)脂的靜態(tài)吸附動(dòng)力學(xué)特性

選擇較為合適的 AB-8、LSA-10樹(shù)脂進(jìn)行靜態(tài)吸附動(dòng)力學(xué)試驗(yàn),其靜態(tài)吸附動(dòng)力學(xué)曲線如圖 1所示。

圖 1 大孔樹(shù)脂的靜態(tài)吸附動(dòng)力學(xué)曲線

從靜態(tài)吸附動(dòng)力學(xué)曲線可以看到,AB-8和LSA-10樹(shù)脂對(duì)花生殼總黃酮的吸附隨時(shí)間延長(zhǎng)而吸附效果明顯增強(qiáng),花生殼總黃酮在這2種樹(shù)脂上的動(dòng)力學(xué)過(guò)程基本相似,但在吸附量上有一定差別;由圖 1同時(shí)可以看出,2種樹(shù)脂對(duì)花生殼總黃酮的吸附為快速平衡型,即起始階段吸附量都較大,到 4 h后,吸附量變化平穩(wěn),其靜態(tài)吸附基本達(dá)到平衡。但從總體上來(lái)看,AB-8樹(shù)脂的吸附量?jī)?yōu)于 LSA-10樹(shù)脂。

2.1.3 上液樣 pH值的影響

選擇 AB-8大孔樹(shù)脂,考察花生殼總黃酮水溶液 pH值為 3.0、4.0、5.0、6.0、7.0和 8.0時(shí)對(duì)吸附性能的影響,結(jié)果如圖 2所示?？梢钥闯?一定的酸性條件有利于花生殼黃酮的吸附,其原因可能是當(dāng)pH值較小時(shí),溶液中黃酮類物質(zhì)的糖苷鍵容易水解,影響樹(shù)脂對(duì)它們的吸附;隨著 pH值增大,黃酮類化合物在酸性條件下以分子狀態(tài)存在,主要以范德華力與樹(shù)脂進(jìn)行物理吸附;而在堿性條件下,以離子狀態(tài)存在,不易與樹(shù)脂發(fā)生物理吸附作用,因此確定吸附 pH值 6.0為宜。

圖 2 pH值對(duì)吸附特性的影響

2.2 大孔樹(shù)脂動(dòng)態(tài)吸附 -洗脫工藝參數(shù)優(yōu)化

2.2.1 上液樣流速的影響

花生殼總黃酮水溶液質(zhì)量濃度為 0.5 mg/mL,溫度 20℃,pH值 6.0,分別控制柱流速為 0.5、1.0、2.0、3.0 mL/min,每 10 mL收集流出液,測(cè)定流出液中花生殼總黃酮的質(zhì)量濃度,繪制動(dòng)態(tài)動(dòng)力學(xué)曲線,如圖 3所示,研究流速對(duì)樹(shù)脂吸附動(dòng)態(tài)動(dòng)力學(xué)曲線的影響,確定合適的操作流速。

圖 3 不同流速下總黃酮在AB-8樹(shù)脂上的動(dòng)態(tài)吸附曲線

由圖 3可以看出,吸附流速為 0.5 mL/min和1.0 mL/min時(shí)泄漏點(diǎn)出現(xiàn)較晚,在 180 mL附近,其原因可能是流速較慢時(shí)花生殼總黃酮與樹(shù)脂接觸的時(shí)間較長(zhǎng),有利于其從液相擴(kuò)散到樹(shù)脂內(nèi)部,從而提高了吸附率。隨著流速增大到 2.0 mL/min,漏出點(diǎn)出現(xiàn)較早,大約在 140 mL附近,可能是由于流速過(guò)快,花生殼總黃酮來(lái)不及被樹(shù)脂吸附就隨滲透液流出,因此流速慢有利于吸附,但流速過(guò)慢,導(dǎo)致生產(chǎn)周期長(zhǎng),吸附效率低,不利于工業(yè)化生產(chǎn)。綜合考慮,選擇流速為 1 mL/min為較佳吸附流速。

2.2.2 上樣液質(zhì)量濃度的影響

流速 1.0 mL/min,溫度 20℃,pH 6.0,上樣液黃酮質(zhì)量濃度分別為 0.3、0.5、0.7 mg/mL,測(cè)定吸附后流出液中花生殼總黃酮的質(zhì)量濃度,繪制動(dòng)態(tài)動(dòng)力學(xué)曲線,如圖 4所示,研究花生殼總黃酮質(zhì)量濃度對(duì)樹(shù)脂吸附動(dòng)態(tài)動(dòng)力學(xué)曲線的影響。

圖 4 不同樣液濃度下總黃酮在AB-8樹(shù)脂上的動(dòng)態(tài)吸附曲線

由圖 4可以看出,當(dāng)花生殼總黃酮質(zhì)量濃度為0.3 mg/mL和 0.5 mg/mL時(shí),吸附動(dòng)態(tài)動(dòng)力學(xué)曲線比較靠近,在一定范圍內(nèi),吸附量隨花生殼總黃酮質(zhì)量濃度的增大而增大,但隨黃酮質(zhì)量濃度繼續(xù)增大,傳質(zhì)速度變慢,且樹(shù)脂周圍的黃酮分子過(guò)多,使得部分黃酮沒(méi)來(lái)得及被吸附就流出來(lái),且泄漏提前,樹(shù)脂的吸附量降低。在實(shí)際工作中,選擇合適的花生殼總黃酮濃度將有利于提高 AB-8大孔樹(shù)脂的吸附性能。因此,上樣質(zhì)量濃度確定為 0.5 mg/mL。

2.2.3 洗脫劑體積分?jǐn)?shù)的影響

將吸附花生殼總黃酮飽和了的樹(shù)脂 0.5 g裝入三角瓶中,分別加入 30%、40%、50%、70%和 95%乙醇 20 mL,置于恒溫?fù)u床中振搖 24 h后,測(cè)定各解吸液中總黃酮量,計(jì)算解吸率,結(jié)果如圖 5所示?？梢钥闯?隨著乙醇體積分?jǐn)?shù)增加,樹(shù)脂吸附的黃酮脫附量開(kāi)始迅速增加,到乙醇體積分?jǐn)?shù) 60%后,增加幅度緩慢,當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù) 70%時(shí),解吸率達(dá)到 94.23%,繼續(xù)提高乙醇體積分?jǐn)?shù),黃酮解吸率反而減小,可能是乙醇體積分?jǐn)?shù)大于 70%后,其他雜質(zhì)容易一起洗脫下來(lái)影響解吸液中黃酮化合物的含量,因此選用 70%乙醇洗脫黃酮。

圖 5 洗脫劑體積分?jǐn)?shù)對(duì)解吸率的影響

2.2.4 動(dòng)態(tài)解吸曲線

吸附飽和的 AB-8樹(shù)脂,采用 3 BV 70%的乙醇洗脫,洗脫速度 1.0 mL/min,收集流出液 (5 mL/管),分別測(cè)定總黃酮濃度,結(jié)果見(jiàn)圖 6。

圖 6 動(dòng)態(tài)解吸曲線

由圖 6可以看出,動(dòng)態(tài)條件下 AB-8樹(shù)脂上吸附的花生殼總黃酮極易洗脫,只用很少量的洗脫劑即可使樹(shù)脂柱上吸附的總黃酮洗脫下來(lái)。采用 70%的乙醇解吸時(shí),洗脫峰集中,對(duì)稱性好,無(wú)拖尾現(xiàn)象,3 BV 70%乙醇基本上可將花生殼總黃酮洗脫下來(lái)。

3 結(jié)論

3.1 通過(guò)對(duì) 8種大孔樹(shù)脂的靜態(tài)吸附研究,發(fā)現(xiàn)AB-8型大孔樹(shù)脂是一種比較理想的樹(shù)脂,吸附率大,解吸率高,較適合花生殼總黃酮的分離純化。

3.2 當(dāng)上液樣 pH值為 6.0,上樣液質(zhì)量濃度為 0.5 mg/mL,上樣流速為 1 mL/min時(shí),AB-8樹(shù)脂對(duì)花生殼總黃酮的吸附量為 9 mg/mL。

3.3 當(dāng)用 70%的乙醇作為花生殼總黃酮的洗脫劑時(shí),解吸率達(dá) 94.23%,且洗脫峰集中,對(duì)稱性好,無(wú)拖尾現(xiàn)象,用 3BV的 70%乙醇基本上能將花生殼總黃酮洗脫下來(lái)。

[1]李明妹,姚開(kāi),賈冬英,等.花生功能成分及其綜合利用[J].中國(guó)油脂,2004,29(9):14-l5

[2]楊偉強(qiáng).花生殼在食品工業(yè)中的綜合開(kāi)發(fā)與利用[J].花生學(xué)報(bào),2003,32(1):33-35

[3]許暉,孫蘭萍,張斌,等.花生殼黃酮類化合物的研究進(jìn)展 [J].農(nóng)產(chǎn)品加工 (學(xué)刊),2008,(3):11-15

[4]楊國(guó)峰,周建新,汪海峰,等.花生殼提取物的制備及其抗氧化與抗菌活性的研究進(jìn)展[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2007,33(2):97-101

[5]Yen G Cm,Duh P D.Antioxidative Properties ofmethanolic extracts from peanut Hulls[J].Journal of the American Oil Chemists’Society,1993,70(4):383-386

[6]許暉,孫蘭萍,張斌,等.花生殼提取物對(duì)油脂的抗氧化作用[J].中國(guó)油脂,2008,33(12):39-41

[7]孟陽(yáng),于麗娟.花生殼中黃酮類抗氧化的提取與及在食品中的應(yīng)用[J].食品科學(xué),1997,18(12):27-29

[8]許暉,孫蘭萍,張斌,等.花生殼總黃酮乙醇提取工藝研究[J].食品工業(yè)科技,2007,28(8):135-139

[9]孫蘭萍,林澤梅,許暉,等.花生殼中黃酮類化合物的提取及對(duì)油脂抗氧化作用[J].資源開(kāi)發(fā)與市場(chǎng),2008,24(12):1057-1059,1062

[10]古共偉,陳健,魏璽群.吸附分離技術(shù)在現(xiàn)代工業(yè)中的應(yīng)用[J].合成化學(xué),1999,7(4):346-353

[11]Silva EM,Pompeu D R,Larondelle Y,et al.Optimisation of the adsorption of polyphenols from Inga edulis leaves on macroporous resins using an experimental design methodology[J].Separation and Purification Technology,2007,53:274-280

[12]Yujie Fu,Yuangang Zu,Wei Liu,et al.Optimization of luteolin separation from pigeonpea[Cajanus cajan (L.)Millsp.]leaves by macroporous resins[J].Journal of Chro2 matographyA,2006,1137:145-152

[13]杜敏華,田龍.大孔吸附樹(shù)脂分離純化麥胚黃酮工藝研究[J].中國(guó)糧油學(xué)報(bào),2007,22(3):126-130

[14]于智峰,王敏,張家峰.大孔樹(shù)脂精制苦蕎總黃酮工藝條件的優(yōu)化研究[J].農(nóng)業(yè)工程學(xué)報(bào),2007,23(4):253-257

[15]張素華,王正云.大孔樹(shù)脂純化蘆筍黃酮工藝的研究[J].食品科學(xué),2006,27(2):182-186

[16]許暉,孫蘭萍,張斌,等.響應(yīng)面法優(yōu)化花生殼黃酮提取工藝的研究[J].中國(guó)糧油學(xué)報(bào),2009,24(1):107-111

[17]董娟娥,梁宗鎖,張康健.大孔吸附樹(shù)脂一次性分離杜仲葉中杜仲總苷和杜仲黃酮的研究[J].農(nóng)業(yè)工程學(xué)報(bào),2006,22(7):154-155

[18]葉春,闞建全,譚書明,等.魚腥草葉總黃酮的提取分離[J].農(nóng)業(yè)工程學(xué)報(bào),2008,24(10):227-232.

Separation and Purification of Flavonoids from Peanut Hull byMacroporous Resins

Zhang Bin1,2Sun Lanping1Ma Long1Zhao Daqing1Xu Hui1
(Department of Food and Bioengineering,Bengbu College1,Bengbu 233030)
(School ofBiotechnology and Food Engineering;HefeiUniversity of Technology2,Heifei 230009)

In order to separate and purify flavones from peanut hull,the static adsorption behaviors of eight kinds ofmacroporous resin for peanut hull flavonoids(PHF)were studied and the optimum macroporous resin was screened in the presentwork.Additionally,the adsorption performance of the propermacroporous resin for PHF was researched and the optimum parametersof the adsorptionwere procured.Results:AB-8 macroporous resin is select2 ed as the optimum macroporous resin to extract and separate PHF under the experi mental condition,and the adsorp2 tion equilibrium ti me ofAB-8 for PHF is 4 h.The opti mum technological parameters of the adsorption and separa2 tion are pH 6.0,velocity of flow 1 mL/min and sample solution concentration 0.5 mg/mL.When 70%ethanol is used as eluant,the desorption capacity is 94.23%,and eluant 3 BV can desorb PHF basically.

peanut hull,flavonoids,macroporous adsorption resins,separation and purification

TS201

A

1003-0174(2010)02-0126-05

安徽高校省級(jí)自然科學(xué)研究資助項(xiàng)目(KJ2007B051),蚌埠學(xué)院中青年學(xué)科帶頭人培養(yǎng)對(duì)象資助項(xiàng)目 (院人字[2006]18號(hào))

2009-03-01

張斌,男,1975年出生,講師,農(nóng)產(chǎn)品加工與貯藏

許暉,男,1969年出生,副教授,食品科學(xué)及食品生物技術(shù)