亚洲免费av电影一区二区三区,日韩爱爱视频,51精品视频一区二区三区,91视频爱爱,日韩欧美在线播放视频,中文字幕少妇AV,亚洲电影中文字幕,久久久久亚洲av成人网址,久久综合视频网站,国产在线不卡免费播放

        ?

        4周低氧運動對骨骼肌mTOR/p70S6K通路的時程影響

        2010-11-04 01:36:39曾凡星
        體育科學(xué) 2010年1期
        關(guān)鍵詞:低氧磷酸化機體

        趙 華,曾凡星,張 漓

        4周低氧運動對骨骼肌mTOR/p70S6K通路的時程影響

        趙 華1,2,曾凡星2,張 漓3

        目的:研究4周低氧運動中mTOR/p70S6K通路的時程變化特征,以探討低氧訓(xùn)練中的蛋白合成代謝情況。方法:以12周齡雄性SD大鼠為研究對象,分為常氧安靜對照組(NS組)、常氧耐力運動組(NE組)、低氧安靜對照組(HS組)和低氧耐力運動組(HE組)。采用動物跑臺訓(xùn)練,低氧刺激為常壓低氧(氧濃度13.6%,相當(dāng)于3 500 m海拔)。檢測大鼠趾長伸肌的總蛋白含量及mTOR、p70S6K和p70S6K(Thr389)磷酸化表達。結(jié)果:在第3天時,低氧因素對mTOR(P<0.05)和p70S6K(P<0.05)有顯著抑制效應(yīng)。在第7天時,運動顯著促進mTOR(P<0.01),而低氧顯著抑制 mTOR(P<0.01)和p70S6K(P<0.01)。在第14天時,低氧顯著抑制mTOR(P<0.01)和p70S6K(Thr389)磷酸化(P<0.01),而運動顯著促進p70S6K(P<0.01)。在第28天時,低氧顯著抑制mTOR(P<0.05)和p70S6K(Thr389)磷酸化(P<0.01),而運動顯著地促進了 mTOR(P<0.01)和p70S6K(P<0.05)。結(jié)論:耐力運動促進mTOR/p70S6K通路的表達,進而促進肌肉蛋白合成;單純低氧暴露可通過抑制mTOR/ p70S6K表達,而抑制肌肉蛋白合成;低氧耐力運動可削弱低氧對 mTOR/p70S6K表達的抑制作用。低氧運動對mTOR及p70S6K的影響有時程變化,且有時程差異。

        低氧運動;蛋白合成;mTOR;p70S6K;鼠;動物實驗

        低氧訓(xùn)練在現(xiàn)代的訓(xùn)練中使用越來越廣泛,但低氧訓(xùn)練本身是有利有弊的。高原訓(xùn)練后骨骼肌蛋白丟失,肌纖維橫徑縮小、肌肉萎縮,且肌細胞凋亡加劇。在超過一定海拔高度進行訓(xùn)練時,低氧因素對機體的刺激占主要地位[4,5]。肌纖維為應(yīng)對低氧來增強其利用氧的速度,常變得纖細,從而造成肌肉形態(tài)上一定程度的萎縮。肌肉質(zhì)量丟失比較大,造成力量的丟失,影響運動能力的發(fā)揮。而目前對于低氧運動中蛋白丟失的機制仍不清楚。

        近些年來的一些研究為解決這些問題提供了良好思路。現(xiàn)在發(fā)現(xiàn)細胞內(nèi)有許多條通路調(diào)控蛋白代謝,如 Ras/ MAPK通路、PI3 K-Akt-mTOR通路、Calcineurin/NFAT通路、MEK/ERK/p90RSK、AMPK通路等,它們在細胞內(nèi)部構(gòu)成一個調(diào)控網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu),互相影響。在這些調(diào)控肌肉蛋白合成信號通路中起著核心作用的,就是雷帕霉素靶蛋白 (themammalian target of rapamycin,mTOR)通路[12,13,16,17,29,31,34],對mTOR通路的抑制能阻斷95%的肌肉肥大效應(yīng)[13]。近來被認為是骨骼肌蛋白合成生物標志物的,即mTOR信號通路中一個重要構(gòu)成——p70核蛋白S6激酶(p70 ribosomal S6 kinase,p70S6K)[15,19,22-24]。本研究從主要的蛋白合成通路mTOR/p70S6K通路在低氧運動中的時程變化特征,研究低氧訓(xùn)練中蛋白合成情況。

        1 材料與方法

        1.1 實驗動物與分組

        SPF級9周齡雄性 SD鼠,體重220±20 g,由北京維通利華實驗動物技術(shù)有限公司提供。國家標準嚙齒類動物飼料,分籠飼養(yǎng),自由飲食,溫度維持在23℃~25℃,相對濕度40%~60%。

        動物在常氧條件下適應(yīng)性喂養(yǎng)3天后,再進行17天的水平跑臺遞增負荷適應(yīng)性訓(xùn)練,強度從20 m/min逐漸過渡到35 m/min,每天遞增1~2 m/min。將體重過重和過輕、力竭運動能力太好和太壞及有傷病的大鼠剔除,然后挑選出130只實驗大鼠進行正式訓(xùn)練。

        130只SD鼠共分為13個組(表1),每組10只,各組體重?zé)o顯著性差異。隨機分為常氧安靜對照組(NS)、低氧安靜對照組(HS)、常氧耐力運動組(NE)和低氧耐力運動組(HE)。實驗中使用的低氧發(fā)生設(shè)備為國家體育總局體育科學(xué)研究所低氧試驗室的CTDY-200型高溫高濕低氧訓(xùn)練系統(tǒng)。低氧組大鼠在該系統(tǒng)的動物低氧室內(nèi)模擬低氧(常壓低氧:氧含量13.6%,模擬海拔高度3 500 m)條件下生活訓(xùn)練。

        1.2 實驗安排

        正式實驗的動物訓(xùn)練安排如表2所示。

        表1 本研究動物分組一覽表Table 1. Animal G rouping

        表2 本研究動物訓(xùn)練計劃一覽表Table 2. The Training Plan of Animals

        1.3 儀器設(shè)備和試劑

        1.3.1 儀器設(shè)備

        Gel Doc XR凝膠成像系統(tǒng)(Bio-Rad公司),Ultra Bacis pH Meter(UB-7)型pH計(Sartorius公司),AL104型精密天平(Mettler T oledo公司),GS-15R低溫高速離心機(Beckman公司),Mini-PROTEAN電泳槽(Bio-Rad公司), DYY-6C型電泳儀(北京六一儀器廠),DYCZ-40C型碳板轉(zhuǎn)移電流槽(北京六一儀器廠),CTDY-200型高溫高濕低氧訓(xùn)練系統(tǒng)等。其他儀器如磁力攪拌器、恒溫振蕩器、真空泵、752型分光光度計、培養(yǎng)箱等均為國產(chǎn)。

        1.3.2 試劑

        NC膜購自 GE公司;Tris、SDS、過硫酸胺、溴酚蘭購自Sigma公司;丙烯酰胺、Tween-20購自 Genview公司;亞甲雙丙烯酰胺、考馬斯亮蘭(R-250)購自USB公司;TEMED購自Amersco公司;L-甘氨酸購自Japan公司;蛋白彩色預(yù)染Marker(7-175 kDa)購自NEB公司;RIPA裂解液、PMSF購自碧云天公司;SuperSignal○RWest Pico Chemiluminescent Substrate購自 Pierce公司;蛋白酶抑制劑、蛋白磷酸酶抑制劑購自 Roche公司;mTOR、p70S6K和p70S6K(Thr389)磷酸化抗體均購自Cell Signaling公司,內(nèi)參actin(I-19)-R購自Santa Cruz公司。二抗[IgG、Fc、X-Adsorbed(HRP)]購自USBiological公司。其余試劑均為國產(chǎn)。

        1.4 指標檢測

        1.4.1 體重指標測試

        體重的測試于實驗前、實驗第4天、7天、14天、28天測試。測試前禁水、禁食12 h,均于當(dāng)天清晨進行測試。

        1.4.2 動物組織提取

        取材前禁水、禁食12 h,以0.3 ml/100 g為劑量,腹腔注射10%水合氯醛麻醉。麻醉后腹主動脈取血,然后速取后肢趾長伸肌(EDL肌)。接著用生理鹽水將其洗凈,剔除肌腱及筋膜組織,用干凈濾紙將其吸干,用錫紙將其包裹后迅速投入液氮,而后置于-80℃冰箱保存待測。

        1.4.3 提取蛋白

        勻漿緩沖液的配制:取RIPA裂解液100 ml,分別加入蛋白酶抑制劑和蛋白磷酸酶抑制劑各10片,最后取100 mM PMSF 1 000μl加入。PMSF于臨用前數(shù)分鐘加入。于勻漿前新鮮配制。

        用精密天平稱取趾長伸肌(EDL肌)120 mg,用眼科剪迅速剪碎,按1∶10比例向玻璃勻漿器中加入預(yù)冷的裂解液,再在冰水浴中進行勻漿,直至沒有肉眼可視的懸浮物。將組織勻漿液倒入1.5 ml EP管中,靜置10 min。于4℃, 12 000 g,10 min離心,取上清液,分裝后保存于-80℃待測。

        1.4.4 蛋白濃度測試(Bradford法)

        配制Bradford工作液:按照《精編分子生物學(xué)實驗指南》[1]配制。

        標準曲線制備:用1 mg/ml BSA標準蛋白分配制0、10、20、40、60、80、100μg梯度。加入 5 ml Bradford工作液,用旋渦混勻器混勻后靜置5 min。測A595nm。制作標準曲線后,再分批次測試樣品濃度。

        1.4.5 Western Blot測試

        Tris-甘氨酸電泳緩沖液、上樣緩沖液、電轉(zhuǎn)液、堆積膠和分離膠的配制均參照《Current Protocols in Protein Science》[13],TBS、TBST、封閉液按照Cell Signaling抗體說明書的要求配制。

        取60μg總蛋白配制上樣緩沖體系,置100℃沸水中5 min。配制6%的分離膠(mTOR)或8%的分離膠[Actin、p70S6K、p70S6K(Thr389)]。上膠用80 V恒壓,下膠換 120 V恒壓電。再用半干轉(zhuǎn)將蛋白轉(zhuǎn)到NC膜上,以恒壓20 V 90 min電轉(zhuǎn)。封閉90 min后用一抗孵育,不同抗體稀釋比例分別為actin(購自Santa Cruz公司)為1∶1 000,mTOR (購自 Cell Signaling公司)為 1∶1 000,p70S6K抗體(購自Cell Signaling公司)為1∶1 000,Phospho-p70S6K(Thr389) (購自Cell Signaling公司)為1∶1 200,孵育過夜。次日晨在用 TBST洗膜后用二抗(1∶16 000)孵育60 min。用ECL發(fā)光試劑反應(yīng),曝光底片用Gel Doc XR凝膠成像系統(tǒng)用透光拍照,用Quantity One圖像分析系統(tǒng)分析。將每個條帶與相應(yīng)樣品的Actin條帶光密度值進行比較,計算出目的條帶的相對含量值。

        1.5 數(shù)據(jù)處理

        對實驗檢測結(jié)果的數(shù)據(jù)處理運用 SPSS 13.0軟件。組間比較采用雙因素方差分析(UNIANOVA)和單因素方差分析(One-Way ANOVA)。對觀測點的組間多重比較(Post Hoc)采用LSD或 Tamhane’s T2方法分析。顯著性檢驗水平以 P<0.05表示具有顯著性差異,P<0.01表示具有非常顯著性差異。

        2 結(jié)果

        2.1 低氧運動對大鼠體重的影響

        分別于實驗前、第3天、7天、14天、21天、28天給大鼠稱重(表3),稱重前禁水、禁食12 h,稱重后立即恢復(fù)飲食。

        表3 本研究大鼠體重不同時程低氧運動的變化一覽表 (g)Table 3. Change of Body Weight of Rat at Different Time Course of Hypoxic Training

        圖1 本研究大鼠體重時程圖Figure 1. Time Course Diagram of Body Weight of Rat

        體重總體趨勢(圖1):各組別大鼠體重隨時程變化而逐漸增加。其中,HS組在第3天時有體重降低的現(xiàn)象,而隨后其一直保持增加??偟膩碚f,NS組最高,其次為 HS組,再次為NE組,最后為 HE組。在第7天后,這種趨勢尤為明顯。在總體上就運動和低氧兩個因素而言,運動因素(P<0.01)對體重有顯著性減少作用,而低氧因素(P> 0.05)對其也有抑制,但未達到統(tǒng)計學(xué)上的顯著性差異。

        實驗前,各組大鼠體重間無顯著差異(P>0.05);第3天時,HE組顯著高于 HS組(P<0.05);第7天時,各組間體重?zé)o顯著性差異(P>0.05);第14天時,HE組最低,顯著低于NS組(P<0.01)和 HS組(P<0.05),而NS組(P <0.05)顯著高于NE組;第21天時,各組間關(guān)系與第14天一致;第28天時,NS組最高,非常顯著高于NE組(P< 0.01)和 HE組(P<0.01),HS組也非常顯著高于NE組(P<0.01)和 HE組(P<0.01)。在第28天時,HE組比NS組低17.1%,NE組比NS組低12.3%,HS組比NS組低4.8%。

        2.2 第 3天時體重、蛋白含量、mTOR、p70S6K和 p70S6K(Thr389)磷酸化指標的變化

        在第3天時,運動和低氧對體重的影響均未達到顯著性差異(P>0.05),但運動有促進趨勢,低氧有抑制趨勢。HS組體重顯著低于 HE組(94.6%,P<0.05)。運動和低氧對蛋白含量的影響未達到顯著性差異(P>0.05),但運動有促進趨勢,低氧有抑制趨勢。低氧(P<0.05)顯著抑制mTOR,運動未達到顯著性差異(P>0.05),但有促進的趨勢。NE組mTOR蛋白表達顯著高于 HS組(108.7%,P <0.05)和 HE組(111.3%,P<0.05)。低氧(P<0.05)顯著抑制p70S6K,運動未達到顯著性差異(P>0.05),但有促進的趨勢。NE組p70S6K蛋白表達非常顯著高于 HS組(120.2%,P<0.01),顯著高于 HE組(114.0%,P< 0.05)。低氧和運動對p70S6K(Thr389)磷酸化的影響未達到顯著性差異(P>0.05),運動有促進的趨勢,低氧有抑制的趨勢。NE組p70S6K(Thr389)磷酸化顯著高于 HS組(126.8%,P<0.05;圖2)。

        在第3天時,低氧因素對 mTOR(P<0.05)和p70S6K(P<0.05)有顯著抑制效應(yīng),而對p70S6K(Thr389)未達到顯著性差異(P>0.05)。運動因素對這3個信號蛋白分子都沒有產(chǎn)生顯著影響(P>0.05),但有促進的趨勢。而低氧因素和運動因素對蛋白含量和體重的影響均未達到顯著效應(yīng)。

        2.3 第 7天時體重、蛋白含量、mTOR、p70S6K和 p70S6K(Thr389)磷酸化指標的變化

        在第7天,低氧和運動對體重的影響仍未達到顯著性差異(P>0.05),但均表現(xiàn)出抑制的趨勢。低氧因素(P< 0.01)顯著抑制蛋白含量,運動因素(P>0.05)雖沒有顯著影響蛋白含量,但有促進的趨勢。NE組蛋白含量非常顯著高于 HS組(109.7%,P<0.01)和 HE組(111.6%, P<0.01)。運動因素(P<0.01)和低氧因素(P<0.01)對mTOR的影響均達到非常顯著性差異,運動顯著促進mTOR,低氧顯著抑制mTOR。NE組mTOR蛋白表達非常顯著高于 HS組(128.2%,P<0.01),顯著高于 HE組(111.4%,P<0.05),HE組非常顯著高于 HS組(115.1%,P<0.01)。低氧因素(P<0.01)非常顯著抑制p70S6K,運動因素(P>0.05)對p70S6K的影響雖未達顯著性,但有促進的趨勢。NE組p70S6K蛋白表達顯著高于 HS組(113.2%,P<0.05),非常顯著高于 HE組(125.1%,P <0.01)。運動(P>0.05)和低氧(P>0.05)均未顯著影響p70S6K(Thr389)磷酸化,但運動有促進趨勢,低氧有抑制趨勢(圖3)。

        表4 本研究第3天時大鼠各指標值一覽表Table 4. Time Course Change of Protein Content,mTOR,p70S6Kand p70S6K(Thr389)at 3rd day

        表5 本研究第7天時各指標值一覽表Table 5. Time Course Change of Protein Content,mTOR,p70S6Kand p70S6K(Thr389)at 7th day

        在第7天時,運動非常顯著促進mTOR的表達(P< 0.01),低氧對 mTOR的抑制仍具有顯著性(P<0.01)。低氧也對p70S6K有顯著抑制(P<0.01),而運動只表現(xiàn)出促進的趨勢(P>0.05)。低氧和運動對p70S6K(Thr389)的影響還未達顯著差異(P>0.05)。就蛋白含量來說,低氧對其有非常顯著的抑制(P<0.01),而運動對其影響不顯著(P>0.05)。低氧和運動對蛋白含量和體重的影響均未達到顯著效應(yīng)。

        2.4 第14天時體重、蛋白含量、mTOR、p70S6K和p70S6K(Thr389)磷酸化指標的變化

        圖3 第7天觀測點各指標組間比較圖Figure 3. Comparison on Diagram of Indexes of Each G roup at 7th Day

        表6 本研究第14天時各指標值一覽表Table 6. Time Course Change of Protein Content,mTOR,p70S6Kand p70S6K(Thr389)at 14th day

        在第14天,運動因素(P<0.01)顯著抑制體重,低氧因素(P>0.05)對體重的影響雖未表現(xiàn)出顯著性,但有抑制趨勢。HE組體重顯著低于 HS組(91.9%,P< 0.05)。運動因素(P<0.01)非常顯著地促進蛋白含量性差異,低氧因素(P>0.05)雖未達到顯著性差異,但有抑制趨勢。NE組 (121.2%,P<0.01)和 HE組 (117.4%,P<0.01)蛋白含量均顯著高于 HS組。低氧因素(P<0.01)顯著抑制mTOR,運動因素(P>0.05)對mTOR的影響雖未表現(xiàn)出顯著性,但有促進趨勢。NE組mTOR蛋白表達非常顯著高于 HS組(127.1%,P< 0.01)和 HE組(123.1%,P<0.01)。運動因素(P< 0.01)顯著促進 p70S6K,低氧因素(P>0.05)對 p70S6K的影響雖未表現(xiàn)出顯著性,但有抑制趨勢。NE組(158.1%,P<0.01)和 HE組(152.2%,P<0.01)p70S6K蛋白表達均非常顯著高于 HS組。低氧因素(P<0.01)顯著抑制p70S6K(Thr389),運動因素(P>0.05)對p70S6K(Thr389)的影響雖未表現(xiàn)出顯著性,但有促進趨勢。NE組 p70S6K(Thr389)磷酸化均非常顯著高于 HS組(168.9%,P<0.01)和 HE組(147.8%,P<0.01;圖4)。

        在第14天時,低氧非常顯著抑制mTOR蛋白表達(P <0.01)和p70S6K(Thr389)磷酸化(P<0.01),而運動非常顯著促進p70S6K蛋白表達(P<0.01)。對于蛋白含量,運動非常顯著促進了它的增加(P<0.01),低氧對其影響不明顯(P>0.05)。運動因素對體重的抑制表現(xiàn)出非常顯著性(P<0.01),而低氧未表現(xiàn)出顯著性差異(P>0.05)。

        2.5 第28天時體重、蛋白含量、mTOR、p70S6K和p70S6K

        在第28天,運動因素(P<0.01)非常顯著抑制體重,低氧因素(P>0.05)對體重的影響雖未表現(xiàn)出顯著性,但有抑制趨勢。NE組(87.7%,P<0.01)和 HE組(82.9%,P<0.01)體重均非常顯著低于NS組,HE組顯著低于 HS組(92.1%,P<0.01)。運動因素(P<0.05)顯著促進蛋白含量增加,低氧因素(P>0.05)對其影響雖未達到顯著性,但表現(xiàn)出抑制的趨勢。運動因素和低氧因素對mTOR的影響明顯,運動因素(P<0.01)非常顯著地促進mTOR,而低氧因素(P<0.05)顯著地抑制mTOR。NE組(128.5%,P<0.05)和 HE組(120.6%, P<0.05)mTOR蛋白表達均顯著高于 HS組。運動因素(P<0.01)非常顯著地促進p70S6K蛋白表達,低氧因素(P>0.05)對p70S6K的影響沒有達到顯著性,但有抑制的趨勢。NE組 p70S6K蛋白表達非常顯著高于 NS組(141.0%,P<0.01)和 HS組(141.8%,P<0.01),顯著高于 HE組(110.9%,P<0.05),HE組非常顯著高于HS組(127.9%,P<0.01)和 NS組 (127.1%,P< 0.01)。低氧因素(P<0.01)顯著地抑制 p70S6K(Thr389)磷酸化,運動因素(P>0.05)對p70S6K(Thr389)磷酸化的影響沒有達到顯著性,但有促進的趨勢。NE組p70S6K(Thr389)磷酸化非常顯著高于 HS組(141.1%,P<0.01),顯著高于 HE組(118.6%,P<0.05),NS組非常顯著高于HS組(149.5%,P<0.01)和 HE組(125.7%,P<0.01),HE組顯著高于 HS組(118.9%,P<0.05;圖5)。

        表7 本研究第28天時各指標值一覽表Table 7. Time Course Change of Protein Content,mTOR,p70S6Kand p70S6K(Thr389)at 28th day

        在第28天時,低氧顯著抑制 mTOR蛋白表達(P< 0.05)和p70S6K(Thr389)磷酸化(P<0.01),而運動非常顯著地促進了 mTOR蛋白表達(P<0.01)和顯著地促進p70S6K(P<0.05)。對于蛋白含量,運動顯著地促進了它的增加(P<0.05),低氧對其影響不明顯(P>0.05)。運動因素對體重的抑制達到非常顯著性(P<0.01),而低氧未表現(xiàn)出顯著性差異(P>0.05)。

        3 討論

        3.1 低氧運動抑制體重的增加

        本研究結(jié)果表明,低氧和運動兩個因素對體重都有很強的抑制效應(yīng)。這與賀道遠[2]、黃徐根[3]等的研究一致。在第28天后,NS組大鼠的體重高于 HS組,而 HE組和NE組與NS組相比,則都是非常顯著減少了體重,其中, HE組的變化更為顯著。在第28天時,HE組和NE組體重顯著低于NS組(分別為82.9%和87.7%),HE組顯著低于 HS組(92.1%)。說明低氧能加強運動對體重抑制效應(yīng)。在實驗的第3天時,HS組有個突然的降低現(xiàn)象(-1.7%),而隨后的時間里一直保持增加的勢頭。這可能是由于剛暴露于低氧環(huán)境時,低氧對機體的負面刺激比較大,可能會引起內(nèi)分泌一定的紊亂,造成機體的分解代謝加強。劉曄(2000)[4]在大鼠模擬4 000 m高原中,發(fā)現(xiàn)1周后比平原對照組睪酮低了58.5%,而2周后回升,但仍比平原低。同時基礎(chǔ)代謝也增強,造成了體重的下降。而同時程的 HE組大鼠體重卻表現(xiàn)出增加了4.1%,之后一直保持緩慢增加,但增加的幅度沒有 HS組多。HE組此時體重的增加可能與運動引起機體一些內(nèi)分泌的調(diào)整,抵消了部分的分解代謝反應(yīng),提高了機體對食物和水的攝取有關(guān)。

        低氧運動抑制體重,主要是由于低氧引起能量物質(zhì)的大量消耗及其對AMPK的激活。低氧本身則因為造成了能量應(yīng)激,進一步加劇運動對AMPK的激活。而后者的表達可顯著增強機體對脂肪酸的氧化。Steinberg(2006)[27]發(fā)現(xiàn),AMPK在調(diào)控脂肪酸、甘油三酯和膽固醇的調(diào)控中起著核心作用。AMPK能通過ACC增強脂肪酸的氧化,通過 HMGR影響膽固醇的合成,通過 GPAT影響甘油三酯的合成。Lee(2006)[20]觀察到,AMPK的激活能顯著增加骨骼肌脂肪酸的氧化,短期內(nèi)是通過肌肉內(nèi)乙酰CoA的濃度來達到的,而在AMPK的長期激活對減少機體的脂肪中,主要是由于AMPK激活了PPARαmRNA和PGC-1 mRNA的基因表達。此外,低氧環(huán)境中機體的呼吸活動加強,呼吸的加快引起體內(nèi)水的排出增加,這也可能是引起體重減輕的原因之一。

        3.2 低氧運動對蛋白合成及mTOR/p70S6K通路的效應(yīng)

        運動具有很強的促肌肉蛋白合成效應(yīng),但在運動的過程中,蛋白合成相關(guān)的信號一般都被抑制,致使蛋白合成過程處于劣勢,而在運動后蛋白的合成才增加。在抗阻練習(xí)過程中AMPK的激活和mTOR通路蛋白磷酸化的減少是抑制蛋白合成的主要原因。但是,在運動后1~2 h時,骨骼肌蛋白合成由于Akt、mTOR、p70S6K和eEF2的激活而迅速增加。運動的促合成效應(yīng)都能持續(xù)到運動后數(shù)天[14]。Hernandez(2000)[18]對一次急性力量練習(xí)后1 h、3 h、6 h、12 h、24 h時間點進行了研究,同樣發(fā)現(xiàn)腓腸肌蛋白合成在運動后一段時間內(nèi)一直處于抑制,而直到運動后12 h才逐漸增加,且這種增加在24 h仍保持增加。而長期運動后,蛋白合成效應(yīng)能產(chǎn)生一種積累效應(yīng)。不管是抗阻力量練習(xí),還是耐力練習(xí),均能有效改善肌肉狀態(tài),促進肌肉生長發(fā)育。Short(2004)[26]在 16周的耐力練習(xí)后肌肉蛋白合成增加了22%,并且這種效應(yīng)不受年齡和性別的影響。Baar(1999)[9]對Wistar大鼠用高頻電刺激持續(xù)6周,結(jié)果發(fā)現(xiàn) EDL肌重量增加了 13.9%,TA肌增加了14.4%。

        圖5 第28天觀測點各指標組間比較圖Figure 5. Comparison on Diagram of Indexes of E ach G roupat 28th Day

        低氧中氧供減少,氧化磷酸化過程抑制,ATP生成減少,造成機體的能荷降低,激活 AMPK。而后者會激活TSC1/TSC2復(fù)合體的活性,進而抑制mTOR通路,引起蛋白合成的明顯抑制。在機體氧供減少時,機體的“氧氣穩(wěn)態(tài)調(diào)節(jié)子”——HIF激活后,刺激 REDD1的表達,由后者激活 TSC1/TSC2復(fù)合體,而后者對mTOR是起抑制作用的。

        在本研究中,運動因素顯著促進蛋白含量,而低氧因素對蛋白含量卻有顯著的抑制。在第3天,NE組和 HE組均高于 HS組,但沒有顯著性差異;第7天時NE組非常顯著高于 HS組和 HE組。而在第14天時,HE組和NE組均非常顯著高于HS組。在第28天時,各組蛋白濃度間差異不顯著。通常是NE組最高,其次為 HE組,HS組最低。說明長期的低氧抑制蛋白含量,而長期運動能部分抵消低氧因素對蛋白含量的抑制。

        在本研究中也發(fā)現(xiàn),低氧明顯抑制了 mTOR信號通路。在低氧暴露的第3天時,mTOR蛋白表達和p70S6K蛋白表達均發(fā)生了顯著的抑制,而運動的促進效應(yīng)還不明顯,它對mTOR通路各信號分子只是有促進的趨勢,但未達到統(tǒng)計學(xué)上的顯著性差異。表明此階段低氧對機體的刺激尤為明顯,機體動員內(nèi)部以抵抗氧供不足對機體的負面影響。此時,運動因素和低氧對蛋白含量都沒有產(chǎn)生顯著性的影響,各組間的蛋白含量值差不多。這表明信號分子的變化到引起肌肉形態(tài)上的變化需要一段時間。

        而在第7天時,低氧非常顯著性地抑制了蛋白含量,表明此階段低氧對蛋白合成的負面效應(yīng)已經(jīng)表現(xiàn)為形態(tài)上的變化,引起蛋白含量的顯著減少。但由于機體仍處于低氧適應(yīng)的早期,低氧對機體的刺激仍非常明顯。低氧非常顯著性地抑制了mTOR蛋白表達和p70S6K蛋白表達,而同時運動對機體蛋白合成的促進效應(yīng)開始顯現(xiàn)。雖然運動因素雖未明顯促進蛋白含量的增加,但仍保持促進的趨勢。運動對mTOR蛋白表達的促進達到非常顯著性差異。運動因素對p70S6K蛋白表達和p70S6K磷酸化仍保持促進的趨勢。

        低氧暴露14天時,機體對低氧有了相當(dāng)?shù)倪m應(yīng)。低氧對蛋白含量的抑制效果未達到顯著性差異,它對機體蛋白合成的抑制不像先前那么明顯,但卻仍表現(xiàn)出對mTOR的抑制效應(yīng)。此階段,運動因素對機體蛋白合成的促進效果非常明顯,它對蛋白含量的影響達到非常顯著性差異,表明此階段運動因素的促合成效應(yīng)已經(jīng)超過低氧因素的抑制效應(yīng)。同時,它對p70S6K蛋白表達的促進效應(yīng)有顯著性差異。運動因素對mTOR和p70S6K(Thr389)磷酸化表達的促進效應(yīng)雖未達到顯著性差異,但仍保持促進的趨勢。

        低氧暴露28天對機體來說是個適應(yīng)期的中后期,低氧對蛋白含量的抑制效果未達到顯著性差異,它對機體蛋白合成的抑制不像先前那么明顯,但卻仍表現(xiàn)出對mTOR蛋白表達和p70S6K(Thr389)磷酸化的抑制效應(yīng)。而與此同時,運動因素表現(xiàn)為顯著地促進蛋白含量的增加,而低氧因素對蛋白含量的影響未達到顯著性效應(yīng),表明此階段運動因素的促合成效應(yīng)跟第14天的效應(yīng)一樣,仍保持超過低氧因素的負面效應(yīng)。此階段中,運動因素對mTOR蛋白表達和p70S6K蛋白表達表現(xiàn)出非常顯著性的促進,而對于p70S6K(Thr389)磷酸化仍保持促進的趨勢。

        在實驗的整個時程里,運動因素對mTOR蛋白表達、p70S6K蛋白表達及其磷酸化三者都表現(xiàn)出促進的效應(yīng),而低氧因素對這三者都表現(xiàn)為抑制效應(yīng)。只不過在不同的階段,低氧因素和運動因素二者所起作用的程度略有不同而已。

        3.3 低氧運動對mTOR/p70S6K通路表達的時程效應(yīng)

        在實驗的整個時程里,運動因素對蛋白合成和mTOR通路表現(xiàn)出促進的效應(yīng),而低氧因素表現(xiàn)為抑制效應(yīng)。在不同的時程中,這兩個因素所起作用的程度略有不同。在低氧適應(yīng)的早期,低氧對機體的抑制效應(yīng)占優(yōu)勢,而在中后期,運動因素的促合成效應(yīng)表現(xiàn)得尤為明顯。所以,最終表現(xiàn)為低氧因素明顯地抑制了蛋白合成,而運動則顯著地促進了蛋白合成。

        在本研究中發(fā)現(xiàn),低氧明顯抑制了mTOR信號通路,尤其是在低氧暴露早期階段。此時,運動對該通路促進效應(yīng)的表現(xiàn)還不明顯。表明機體在此階段可能是低氧的應(yīng)激對機體的影響占主要地位。機體的降解過程、細胞凋亡過程可能比較強。低氧情況下能增強機體 HIF的活性[25],通過作用于BNIP3等因子,促進機體的細胞凋亡過程[8,28]。HIF還能通過刺激 REDD1的表達,增強 TSC1/ TSC2的活性,進而抑制mTOR的活性,影響mRNA的翻譯。低氧也造成一種能量應(yīng)激,通過加強AMPK的活性,后者通過作用于 TSC1/TSC2而抑制mTOR活性。

        而到了中后期時,機體對低氧逐漸產(chǎn)生了適應(yīng),低氧對機體造成的影響隨之降低。雖然低氧對mTOR仍有相當(dāng)?shù)囊种?但運動的促合成效應(yīng)逐漸表現(xiàn)出來。表現(xiàn)為運動明顯促進mTOR和p70S6K的蛋白表達,而低氧對這兩個信號分子的由于抑制而顯得較低。HE組對mTOR的蛋白表達在中后期時,始終高于 HS組,在第28天時達到顯著差異。而對p70S6K的蛋白表達,HE組即已非常顯著高于 HS組。運動可增強低氧環(huán)境中mTOR的活性,部分抵消低氧對該通路的抑制效應(yīng),從而促進蛋白合成。

        3.4 4周低氧運動中mTOR與p70S6K的表達有時程差異

        在本研究中,運動因素對mTOR通路表現(xiàn)出促進的效應(yīng),而低氧因素表現(xiàn)為抑制效應(yīng)。但在許多階段中,mTOR蛋白表達、p70S6K蛋白表達及其磷酸化三者與蛋白表達的表現(xiàn)有不平行的地方。mTOR蛋白表達剛開始時升高并不顯著,但在第7天后一直保持升高的趨勢。p70S6K蛋白表達基本保持升高的趨勢,其中,HS組為先升高、再降低、后又升高,HS組和 HE組的p70S6K是第7天左右即開始下降,而NE組是在第14天時才下降。這表明p70S6K的激活似乎受到了其他因素的影響。

        有研究發(fā)現(xiàn),p70S6K也受到 PDK[7]、MAPK通路的影響。Wang(2001)[30]在對培養(yǎng)細胞施加 ERK直接下游信號MEK的抑制劑時,發(fā)現(xiàn)p70S6K的活性受到影響。而當(dāng)MEK持續(xù)激活時,p70S6K也表現(xiàn)出持續(xù)激活。而在運動中,MAPK通路是處于被激活的狀態(tài)。Williamson (2006)[33]觀察在一次較大強度的運動后一段時間內(nèi),蛋白合成受到抑制,同時,mTOR也明顯受到抑制,但卻仍有一些特異mRNA翻譯增強的情況。發(fā)現(xiàn)p70S6K的活性并未隨著mTOR的抑制而受到強烈的抑制,而是MAPK通路中 ERK1/2信號的激活下,表現(xiàn)出磷酸化的增強。Widegren(1998)[32]發(fā)現(xiàn),ERK1/2在運動后即刻是有急劇的升高,達到安靜值的31±8倍,而隨后慢慢下降。這說明運動后p70S6K的活性也會受到ERK的影響,這可能會造成mTOR和p70S6K表現(xiàn)不一致。

        p70S6K(Thr389)磷酸化是開始均先升高,后下降至最低值,其時程變化與mTOR蛋白表達和p70S6K蛋白表達的反應(yīng)有較大的差異。但相比運動對它的影響,低氧對它的影響似乎更大些,尤其在第14天和第28天表現(xiàn)為非常顯著的抑制。這可能與p70S6K(Thr389)磷酸化較為敏感有關(guān)。Parkington(2003)[21]發(fā)現(xiàn),肌肉收縮活動后,Pla肌p70S6K的磷酸化起先變化比較溫和(0.4±0.1倍),但在恢復(fù)期的6 h點,Pla肌p70S6K的磷酸化增加了1.4±0.4倍。Baar(1999)[10]也有相似的發(fā)現(xiàn)。這些研究表明,p70S6K的激活具有明顯的時程變化,即運動后其磷酸化由于受到抑制,變化不明顯。而后抑制因素漸漸解除,p70S6K的活性增強,并于運動后6 h左右達峰值,之后再慢慢下降,甚至能持續(xù)到運動后36 h,它具有明顯的時程性。而相對來說,其蛋白表達就不夠敏感。在運動后第2天時,它的磷酸化可能就已經(jīng)開始回落了,而它的蛋白表達卻仍能繼續(xù)增強。在安靜的時候,低氧因素對它磷酸化的抑制效應(yīng)相對來說影響就更強些。

        4 結(jié)論

        1.耐力運動促進mTOR/p70S6K通路的表達,進而促進肌肉蛋白合成。

        2.單純低氧暴露可通過抑制mTOR/p70S6K表達,而抑制肌肉蛋白合成。

        3.低氧耐力運動可削弱低氧對 mTOR/p70S6K表達的抑制作用。低氧運動對mTOR及p70S6K的影響有時程變化,且有時程差異。

        [1]奧斯伯.新編分子生物學(xué)實驗指南[M].北京:科學(xué)出版社, 2005:80-250.

        [2]賀道遠.低氧運動對骨骼肌PKB/mTOR信號通路的影響[D].北京:北京體育大學(xué)博士學(xué)位論文,2007.

        [3]黃徐根,馮連世,徐建方,等.低氧訓(xùn)練過程中大鼠體重及能量代謝的變化[J].體育科學(xué),2007,27(10):61-68.

        [4]劉曄,劉桂華,陳瓏.模擬海拔4000米高原訓(xùn)練1~3周對大鼠骨骼肌蛋白質(zhì)代謝和血清睪酮的影響[J].北京體育大學(xué)學(xué)報, 2000,23(1):41-44.

        [5]劉曄,劉桂華,陳瓏.模擬海拔2000米和3000米高原訓(xùn)練不同時程對大鼠骨骼肌蛋白質(zhì)代謝的影響[J].北京體育大學(xué)學(xué)報, 2002,25(2):191-193.

        [6]趙鵬.低氧訓(xùn)練對大鼠運動機能的影響及機體適應(yīng)機制[D].上海:上海體育學(xué)院博士學(xué)位論文,2005.

        [7]ALESSI D R,KOZLOWSKI M T,WENG Q P,et al.3-Phosphoinositide-dependent protein kinase 1(PDK1)phosphorylates and activates the p70 S6 kinase in vivo and in vitro[J].Curr Biol,1998,8(2):69-81.

        [8]AZAD M B,CHEN Y,HENSON E S,et al.Hypoxia induces au-tophagic cell death in apoptosis-competent cells through a mechanism involving BNIP3[J].Autophagy,2008,4(2):195-204.

        [9]BAAR K,ESSER K.Phosphorylation of p70S6kcorrelates with increased skeletal muscle mass following resistance exercise[J]. Am J Physiol,1999,276(1 Pt 1):C120-127.

        [10]BEDFORD T G,TIPTON C M,WILSON N C,et al.Maximum oxygen consumption of rats and its changes with various experimental procedures[J].J Appl Physiol,1979,47(6):1278-1283.

        [11]BERVEN L A,CROUCH M F.Cellular function of p70S6K:a role in regulating cell motility[J].Immunol Cell Biol,2000,78 (4):447-451.

        [12]BODINE S C,STITT T N,GONZALEZ M,et al.Akt/mTOR pathway is a crucial regulator of skeletal muscle hypertrophy and can prevent muscle atrophy in vivo[J].Nat Cell Biol,2001, 3(11):1014-1019.

        [13]COLIGAN J E,DUNN B M,SPEICHER D W,et al.Current Protocols in Protein Science[M].Washington:John Wiley& Sons,Inc,2003:1403-1540.

        [14]DREYER H C,FUJ ITA S,CADENAS J G,et al.Resistance exercise increases AMPK activity and reduces 4E-BP1 phosphorylation and protein synthesis in human skeletal muscle[J]. J Physiol,2006,576(Pt 2):613-624.

        [15]ERIKSON R L.Structure,expression,and regulation of protein kinases involved in the phosphorylation of ribosomal protein S6 [J].J Biol Chem,1991,266(10):6007-6010.

        [16]FINGAR D C,BLENISJ.Target of rapamycin(TOR):an integrator of nutrient and growth factor signals and coordinator of cell growth and cell cycle progression[J].Oncogene,2004,23 (18):3151-3171.

        [17]FINGAR D C,SALAMA S,TSOU C,et al.Mammalian cell size is controlled by mTOR and its downstream targets S6K1 and 4EBP1/eIF4E[J].Genes Dev,2002,16(12):1472-1487.

        [18]HERNANDEZ J M,FEDELE M J,FARRELL P A.Time course evaluation of protein synthesis and glucose uptake after acute resistance exercise in rats[J].J Appl Physiol,2000,88 (3):1142-1149.

        [19]KIMBALL S R,O’MALLEY J P,ANTHONY J C,et al.Assessment of biomarkers of protein anabolism in skeletal muscle during the life span of the rat:sarcopenia despite elevated protein synthesis[J].Am J Physiol Endocrinol Metab,2004,287 (4):E772-780.

        [20]LEE W J,KIM M,PARK H S,et al.AMPK activation increases fatty acid oxidation in skeletalmuscle by activating PPARalpha and PGC-1[J].Biochem Biophys Res Commun, 2006,340(1):291-295.

        [21]PARKINGTON J D,SIEBERT A P,LEBRASSEUR N K,et al.Differential activation of mTOR signaling by contractile activity in skeletal muscle[J].Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol,2003,285(5):R1086-1090.

        [22]PENDE M.mTOR,Akt,S6 kinases and the control of skeletal muscle growth[J].Bull Cancer,2006,93(5):E39-43.

        [23]RUVINSKY I,SHARON N,LERER T,et al.Ribosomal protein S6 phosphorylation is a determinant of cell size and glucose homeostasis[J].Genes Dev,2005,19(18):2199-2211.

        [24]SAKAMOTO K,GOODYEAR L J.Invited review:intracellular signaling in contracting skeletal muscle[J].J Appl Physiolm, 2002,93(1):369-383.

        [25]SEMENZA G L.Hydroxylation of HIF-1:oxygen sensing at the molecular level[J].Physiology(Bethesda),2004,19:176-182.

        [26]SHORT K R,VITTONE J L,BIGELOW M L,et al.Age and aerobic exercise training effects on whole body and muscle protein metabolism[J].Am J Physiol Endocrinol Metab,2004,286 (1):E92-101.

        [27]STEINBERG G R,MACAULAY S L,FEBBRAIO M A,et al. AMP-activated protein kinase--the fat controller of the energy railroad[J].Can J Physiol Pharmacol,2006,84(7):655-665.

        [28]VENKATESH B,GOBE G,MORGAN T J,et al.Relationship between tissue hypoxia and apoptosis:a preliminary observational study[J].Crit Care Res,2007,9(2):129-136.

        [29]VIGANO A,RIPAMONTI M,DE PALMA S,et al.Proteins modulation in human skeletal muscle in the early phase of adaptation to hypobaric hypoxia[J].Proteomics,2008,8(22): 4668-4679.

        [30]WANGL,GOUT I,PROUD C G.Cross-talk between the ERK and p70 S6 kinase(S6K)signaling pathways.MEK-dependent activation of S6K2 in cardiomyocytes[J].J Biol Chem,2001, 276(35):32670-32677.

        [31]WANG X,PROUD C G.The mTOR pathway in the control of protein synthesis[J].Physiology(Bethesda),2006,21:362-369.

        [32]WIDEGREN U,J IANG X J,KROOK A,et al.Divergent effects of exercise on metabolic and mitogenic signaling pathways in human skeletal muscle[J].FASEB J,1998,12(13): 1379-1389.

        [33]WILLIAMSON D L,KUBICA N,KIMBALL S R,et al.Exercise-induced alterations in extracellular signal-regulated kinase 1/2 and mammalian target of rapamycin(mTOR)signalling to regulatory mechanisms of mRNA translation in mouse muscle [J].J Physiol,2006,573(Pt 2):497-510.

        [34]WULLSCHLEGER S,LOEWITH R,HALL M N.TOR signaling in growth and metabolism[J].Cell,2006,124(3):471-484.

        Time Course Effects of 4-weeks Hypoxic Exercise on mTOR/p70S6KSignaling Pathway in Skeletal Muscle

        ZHAO Hua1,2,ZENG Fan-xing2,ZHANG Li3

        Objective:The purpose of this paper was to study the change of mTOR/p70S6Kpathway in 4-weeks hypoxic exercise.Methods:Adult male Sprague-Dawley rats(12-weeks-old) were randomly divided into four groups:NS,NE,HS and HE.The hypoxia circumstance was normal pressure hypoxia,and oxygen concentration is 13.6%,equivalently 3500m above sea level.Total protein content,mTOR and p70S6Ktotal protein,p70S6K(Thr389)phosphorylation of extensor digitorum longus(EDL)muscle were determined by Bradford and Western blot. Results:Hypoxia significantly inhibited mTOR(P<0.01)and p70S6Ktotal protein(P< 0.05)after 3rd day.Exercise promoted mTOR total protein significantly(P<0.01),but hypoxia inhibited it significantly(P<0.01).After 14 days,hypoxia inhibited mTOR total protein significantly(P<0.01)and p70S6K(Thr389)phosphorylation(P<0.01),but exercise promoted p70S6Ktotal protein very significantly(P<0.01).After 28 days,hypoxia inhibited mTOR total protein significantly(P<0.05)and p70S6K(Thr389)phosphorylation(P< 0.01),but exercise significantly promoted mTOR(P<0.01)and p70S6Ktotal protein(P< 0.05).Conclusions:1)Endurance exercise improved muscular protein synthesis through elevated mTOR/p70S6Kpathway.2)Hypoxia exercise inhibited muscular protein synthesis through attenuated mTOR/p70S6Kpathway.3)Endurance exercise in hypoxia attenuated the depression effect of hypoxia on mTOR/p70S6Kpathway.Hypoxic exercise had of time course effective on mTOR and p70S6K.

        hypoxic exercise;protein synthesis;m TOR;p70S6K;rat;animal ex periment

        G804.2

        A

        1000-677X(2010)01-0051-11

        2009-11-09;

        2009-12-25

        國家自然科學(xué)基金資助項目(30671013);國家體育總局體育科學(xué)研究所基本科研業(yè)務(wù)課題(06-20)。

        趙華(1981-),男,湖北荊州人,講師,在讀博士研究生,研究方向為運動適應(yīng)的內(nèi)分泌機制研究,E-mail:zhaohua_ bsu@hotmail.com。

        11天水師范學(xué)院體育學(xué)院,甘肅天水741001;21北京體育大學(xué)研究生院,北京100084;31國家體育總局體育科學(xué)研究所,北京100061

        11Physical Education Department,Tianshui Normal University,Tianshui 741001,China;21Beijing Sport University,Beijing 100084,China;31National Institute of Sport Science, Beijing 100061,China.

        猜你喜歡
        低氧磷酸化機體
        Ω-3補充劑或能有效減緩機體衰老
        中老年保健(2021年7期)2021-08-22 07:40:46
        間歇性低氧干預(yù)對腦缺血大鼠神經(jīng)功能恢復(fù)的影響
        ITSN1蛋白磷酸化的研究進展
        某柴油機機體的設(shè)計開發(fā)及驗證
        大型臥澆機體下芯研箱定位工藝探討
        Wnt/β-catenin信號通路在低氧促進hBMSCs體外增殖中的作用
        MAPK抑制因子對HSC中Smad2/3磷酸化及Smad4核轉(zhuǎn)位的影響
        組蛋白磷酸化修飾與精子發(fā)生
        遺傳(2014年3期)2014-02-28 20:59:01
        裸鼴鼠不同組織中低氧相關(guān)基因的表達
        體內(nèi)誘導(dǎo)多能干細胞與機體的損傷修復(fù)及再生
        国产一区三区二区视频在线观看| 真正免费一级毛片在线播放 | 午夜无码无遮挡在线视频| 成人黄色片久久久大全| 国产aⅴ激情无码久久久无码| 国产精品毛片久久久久久久| 亚洲色成人网一二三区| 久久99久久久精品人妻一区二区| 51国产偷自视频区视频| 99久久婷婷国产精品综合| 国产三级a三级三级| 国产亚洲精品aaaaaaa片 | 亚洲欧美在线观看| 在线观看国产内射视频| 我想看久久久一级黄片| 成年免费a级毛片免费看无码| 男女肉粗暴进来120秒动态图| 国产成年无码AⅤ片日日爱| 日本一级片一区二区三区| 在线观看一级黄片天堂| 一本一道波多野结衣av中文| 国产精品成人午夜久久| 日韩视频午夜在线观看| 日韩人妻中文字幕专区| 日韩欧美亚洲综合久久影院ds| 久久精品国产丝袜| 久久国产精品懂色av| 亚洲国产精品成人久久久| 亚洲乱码日产精品bd| 两个人免费视频大全毛片| 女同三级伦理在线观看| 帮老师解开蕾丝奶罩吸乳视频 | 揄拍成人国产精品视频| 中文字幕乱码亚洲精品一区| 中文字幕天堂网| 久久精品国产亚洲av一| 后入内射国产一区二区| 玩两个丰满老熟女| 搡老女人老妇女老熟妇69| 日本一二三区在线观看视频| 久久九九久精品国产|