付英杰,田景振
(山東中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院,山東濟南 250355)
阿膠低肽酶解液超濾工藝的實驗研究
付英杰,田景振*
(山東中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院,山東濟南 250355)
阿膠;低肽;酶解;超濾
目的:優(yōu)選阿膠低肽酶解液的最佳超濾工藝。方法:通過考察超濾膜材質(zhì)、酶解液的預(yù)處理方法、藥液濃度、分子量截留值、操作壓力及溫度等因素對透過速率的影響,優(yōu)選最佳工藝條件。結(jié)果:最佳超濾工藝為:取50 g阿膠粉制成阿膠低肽酶解液,稀釋至1 000 mL,水浴預(yù)熱至40℃,在柱壓(0.15±0.01)MPa下分別經(jīng)過截留分子量30 kD、3 kD的超濾膜超濾,并水洗一次。結(jié)論:該超濾工藝損失少、快速、高效。
阿膠為馬科動物驢Equus asinusL.的干燥皮或鮮皮經(jīng)煎煮、濃縮制成的固體膠。性味甘、平,歸肺肝腎經(jīng),功能補血、止血、滋陰潤燥,主治血虛證。阿膠主含膠原蛋白,但膠原蛋白的消化吸收需要蛋白酶參與降解,而適應(yīng)癥患者則常見脾胃虛弱或胃腸道反應(yīng),服用阿膠不僅會造成患者消化系統(tǒng)的負(fù)擔(dān),而且藥效也得不到充分的發(fā)揮,因此需將阿膠進行酶解,制成分子量低于3 kD的小分子肽,但阿膠經(jīng)酶解后,酶解液中仍殘存大分子蛋白。為此,筆者采用超濾法將此部分蛋白與小分子肽進行分離,并考察其影響因素及損失率,現(xiàn)報道如下:
1.1 儀器
中空纖維超濾膜(北京市旭邦膜設(shè)備有限責(zé)任公司),紫外分光光度計(日立UV-3010)。
1.2 試劑
牛血清白蛋白(Albumin,Bovine Biotech,購于上海生工生物工程有限公司,批號:B67328);考馬斯亮藍(lán)(Coomassie Brilliant Blue G-250 Ultra Pure,購于上海生工生物工程有限公司,批號:0241B75);其他試劑均為分析純。
2.1 超濾膜使用條件的優(yōu)選
2.1.1 超濾膜材質(zhì)
阿膠酶解液性質(zhì)較為稠厚,采用普通超濾膜易形成凝膠層,容易堵塞。故選用不易堵塞、易清洗、可反復(fù)利用,且對藥液穩(wěn)定性好的中空纖維膜。
2.1.2 酶解液的預(yù)處理
膜材內(nèi)孔徑甚小,藥液流經(jīng)膜面時,小分子通過膜而大分子物質(zhì)則被截流,而沉積于膜面,組成一層致密的凝膠層,成為次級膜,阻礙分子量小于膜孔的物質(zhì)通過??紤]到中藥提取液為混懸體系,極易形成凝膠層,最好進行預(yù)處理[1]。
方法:按表1中的預(yù)處理方法對阿膠酶解液(MWt.<3 kD低肽濃度為77.67 μg/mL)進行預(yù)處理,處理后的藥液采用考馬斯亮藍(lán)法[2]測定MWt.<3 kD低肽含量,結(jié)果見表1。
表1 阿膠提取液預(yù)處理方法實驗結(jié)果
綜合考慮,采用過單層濾紙的方法較為可行,但是濾速較慢,故采用先離心后抽濾的方法進行初精制。結(jié)果:濾速增加,效果較好。
2.1.3 膜截留值與膜孔徑
超濾膜的孔徑是以截留(95%)特定物質(zhì)的相對分子量來表示的。阿膠酶解液的有效成分為分子量<3 kD的低肽,但若直接采用分子量截留值為3 kD的中空纖維膜超濾,膜易堵,難以清洗且損失大,因此依次采用30 kD、3 kD的超濾膜超濾。
2.1.4 藥液濃度
超濾的藥液濃度不可過高,因為過高易形成凝膠層,使超濾膜的透過速率降低;也不可過低,過低則影響考馬斯亮藍(lán)測定,并延緩超濾時間[1]。
方法:將200 g阿膠粉制得的酶解液分別稀釋制成相當(dāng)于原藥材0、25、50、75、100、125、150、175、200 g/L的藥液,分別通過中空纖維超濾膜(分子量截留值為30 kD),壓力為0.15 MPa,測定5 min內(nèi)的透過速率(mL/min),結(jié)果見表2。
表2 藥液濃度對透過速率的影響
由表2可知,藥液濃度升高,超濾速度大幅降低,所以應(yīng)將藥液的濃度控制為原藥材的25~50 g/L再進行超濾,后續(xù)實驗采用將50 g阿膠粉制得的酶解液稀釋至1 000 mL再進行超濾。
2.1.5 操作壓力
超濾過程是以壓力為驅(qū)動力的分離過程,所以操作壓力是影響分離過程的主要因素之一。壓力過大,可能會造成超濾器中空纖維膜纖維絲的斷裂或癟塌;壓力過低則影響流通量[3]。故需要考察操作壓力的大小。又因為中空纖維柱的透過速率會隨操作時間的延長有變化,所以也需要考察不同操作壓力下透過速率隨時間的變化。
方法:將50 g阿膠粉制得的酶解液稀釋至1 000 mL,按表3中的操作壓力,通過中空纖維超濾膜(分子量截留值為30 kD),測定5 min內(nèi)的透過速率(mL/min)。超濾過程中操作壓力與透過速率的關(guān)系見表3。
表3 超濾過程中操作壓力與透過速率的關(guān)系
由表3可知,5 min內(nèi)透過速率以在操作壓力以0.12~0.18 MPa為最佳,操作壓力超過0.18 MPa后透過速率開始下降,需要進一步考察操作壓力對膜透過速率隨時間的影響。
方法:將50 g阿膠粉制得的酶解液稀釋至1 000 mL,按照表4中的3個操作壓力,通過中空纖維超濾膜(分子量截留值為30 kD),時間安排如表4,測定每隔5 min的透過速率(mL/min),結(jié)果見表4。
表4 操作壓力對膜透過速率隨時間的影響(mL/min)
由表4可知,壓力為0.15 MPa時該阿膠藥液的透過速率較高,且隨著超濾的進行,透過速率下降較慢,故超濾最適宜的壓力范圍為(0.15±0.01)MPa。
2.1.6 藥液溫度的影響
由于本實驗超濾膜為中空纖維膜,使用溫度要求低于45℃,據(jù)文獻報道[4],溫度在11~43℃時,隨料液溫度的升高,膜透過速率呈明顯上升趨勢,且在超濾過程中,溫度高的料液其透過速率始終大于低溫料液。但是,溫度過高會導(dǎo)致藥液中的有效成分變性。為了加快超濾速度,我們在膜材料及被處理料液允許的溫度范圍內(nèi),盡可能采用較高的溫度即40℃。
2.2 超濾工藝的研究
方法:取50 g阿膠粉配成預(yù)實驗藥液,稀釋至1 000 mL,水浴預(yù)熱至40℃,在柱壓(0.15±0.01)MPa下經(jīng)過截留分子量為30 kD的超濾柱,將超濾液濃縮至約400 mL;將濃集液分3次水洗及1次堿洗:水洗3次的體積分別為約300,100,100 mL,之后分別收集3次水洗超濾液;堿液采用0.3% NaOH水溶液150 mL(注:堿洗為超濾柱洗滌的主要方法,在超濾液收集與實際生產(chǎn)中并無實際意義,本文僅作為一項實驗數(shù)據(jù));利用考馬斯亮藍(lán)法測定各部分總肽含量,并計算各部分占原藥液低肽含量的百分比。然后將30 kD超濾液及3次水洗液合并,定容至1 000 mL,通過截留分子量3 kD的超濾柱,實驗與檢測方法均同30 kD超濾。結(jié)果見表5。
表5 超濾損失考察實驗結(jié)果
由表5可知,30 kD和3 kD的超濾柱都至少需要水洗一次,可保證原藥液低肽含量為75%以上。因為水洗1次之后再進行水洗的效果不明顯,所以生產(chǎn)實際中可采用超濾后水洗1次的方法。
3.1 本實驗對阿膠酶解得到的低肽溶液進行了分次超濾,通過考察超濾膜材質(zhì)、酶解液的預(yù)處理方法、藥液濃度、分子量截留值、操作壓力及溫度等因素,得出最佳超濾工藝為:取50 g阿膠粉制成阿膠低肽酶解液,稀釋至1 000 mL,水浴預(yù)熱至40℃,在柱壓(0.15±0.01)MPa下分別經(jīng)過截留分子量30 kD、3 kD的超濾膜超濾,并水洗一次。
3.2 由于酶解方法較為繁瑣,操作時間長,故本實驗采用的是單因素考察法,而未進行平行實驗;關(guān)于多因素的交互作用,有待進一步研究。
[1]黃楚華,殷學(xué)倫.超濾法制備胎盤肽的初步研究[J].中國生化藥物雜志,1994,15(2):133.
[2]徐杰偉,溫少磊,蔡早育.考馬斯亮藍(lán)法測定微量蛋白的條件探討[J].江西醫(yī)學(xué)檢驗,2003,21(5):353.
[3]賀立中.超濾技術(shù)在制劑生產(chǎn)中的應(yīng)用[J].中國藥學(xué)雜志,1995,30(12):711.
[4]汪濤,曾慶祝,葉于明.采用超濾技術(shù)分離扇貝邊酶解液[J].中國水產(chǎn)科學(xué),2002,9(3):255.
R284.2
B
1001-1528(2010)07-1241-03
2009-08-14
付英杰(1983-),男,博士研究生。Tel:(0531)89628597 E-mail:pilipili@163.com