戴明
(福建省中心檢驗(yàn)所,福建 福州 350002)
表面等離子體共振生物傳感器在食品安全檢測(cè)中的應(yīng)用與研究
戴明
(福建省中心檢驗(yàn)所,福建 福州 350002)
表面等離子體共振(Surface Plasmon Resonance,SPR)傳感技術(shù)是一項(xiàng)新興的生物化學(xué)檢測(cè)技術(shù),具有無須標(biāo)記、高速、高靈敏度等特點(diǎn)。目前在化學(xué)和生物檢測(cè)研究中應(yīng)用日益廣泛。本文綜述了SPR技術(shù)的基本原理及近年來在食品安全領(lǐng)域研究中取得的進(jìn)展,并展望了SPR技術(shù)的發(fā)展方向及應(yīng)用前景。
表面等離子體共振(SPR);食品安全;檢測(cè)
表面等離子體共振(Surface Plasmon Resonance,SPR)傳感技術(shù)是一項(xiàng)新興的生物化學(xué)檢測(cè)技術(shù)。它是基于表面等離子體共振的物理光學(xué)現(xiàn)象的敏感折射率的高精度光學(xué)傳感器,通過感測(cè)傳感器表面的折射率微小變化而實(shí)現(xiàn)生物分子的傳感,是研究生物分子相互作用的有力工具,其具有無須標(biāo)記、高速化、專一性、靈敏度高以及大量平行篩選等優(yōu)點(diǎn)。自從1982年被應(yīng)用于氣體測(cè)定和生物傳感研究,20多年來得到科學(xué)界越來越多的關(guān)注。各種新型的配置形式及其在物理、化學(xué)、生物領(lǐng)域的應(yīng)用得到廣泛研究。隨著表面等離子體共振技術(shù)的發(fā)展成熟,多家儀器公司實(shí)現(xiàn)了相關(guān)檢測(cè)儀器的商品化,該類設(shè)備成為實(shí)時(shí)分析,簡(jiǎn)便快捷地監(jiān)測(cè)DNA與蛋白質(zhì)之間、蛋白質(zhì)分子之間以及藥物—蛋白質(zhì)、核酸—核酸、抗原—抗體、受體—配體等等生物分子之間的相互作用的重要手段,在生命科學(xué)、醫(yī)療檢測(cè)、藥物篩選、食品檢測(cè)、環(huán)境監(jiān)測(cè)、毒品檢測(cè)、法醫(yī)鑒定等領(lǐng)域具有廣泛的應(yīng)用需求。
表面等離子體共振(SPR)是一種物理光學(xué)現(xiàn)象。它是利用金屬表面電荷波動(dòng)(表面等離子波)在某一適當(dāng)?shù)娜肷浣腔虿ㄩL(zhǎng)與入射光TM極化能量(消失波)耦合產(chǎn)生表面等離子體共振(Surface Plasmon Resonance, SPR)。如果金屬表面介質(zhì)的折射率或被測(cè)物介電常數(shù)發(fā)生變化, 共振峰的位置(共振角或共振波長(zhǎng))將發(fā)生改變[1]。因此通過測(cè)定共振角(或波長(zhǎng))變化, 就可獲得被測(cè)物在界面上發(fā)生反應(yīng)的信息。
在基于SPR原理的生物傳感器中,使用最多、應(yīng)用最廣泛的是GE公司生產(chǎn)的Biacore儀器,并由此發(fā)展出生物分子相互作用分析技術(shù)(Biomolecular Interaction Analysis,BIA)。在BIA的測(cè)定中是通過在SPR傳感器反應(yīng)界面上修飾一層配體分子, 當(dāng)被分析物與配體分子結(jié)合后, 共振峰的位置會(huì)發(fā)生位移, 該位移的大小將反映固定在金屬表面的物質(zhì)的量, 進(jìn)而監(jiān)測(cè)分子間相互作用,其檢測(cè)原理如圖1所示。
由于SPR生物傳感器具有靈敏度高、實(shí)時(shí)快速、樣品無需標(biāo)記等突出優(yōu)點(diǎn),因而有關(guān)SPR傳感器的研究與應(yīng)用得到迅猛發(fā)展。目前SPR生物傳感器已由最初的生物大分子相互作用(例如:蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)、藥物-蛋白質(zhì)、蛋白質(zhì)-核酸、核酸-核酸之間的相互作用分子間)研究逐漸發(fā)展到用于環(huán)境污染物和食品安全中眾多小分子化合物的檢測(cè)。
隨著表面等離子共振傳感技術(shù)在食品檢測(cè)領(lǐng)域逐漸為人們接受,關(guān)于SPR生物傳感器的分析研究與論文也不斷增加,其應(yīng)用于食品安全與品質(zhì)的檢測(cè)主要包括病原體、毒素、藥物殘留、維生素、荷爾蒙、抗體、化學(xué)污染物、過敏源和蛋白。
近年來,SPR傳感技術(shù)已用于各種病原體的檢測(cè),其中包括細(xì)菌、病毒、真菌和寄生蟲。早在1998年,F(xiàn)ratamico 等[2]就用SPR檢測(cè)手段測(cè)定可大腸桿菌O157:H7(E.coli O157:H7)。隨后,大量的SPR技術(shù)檢測(cè)大腸桿菌O157:H7的工作被陸續(xù)報(bào)道。Choi’s課題組[3]利用商品化的SPR儀—Multiskop測(cè)定大腸桿菌O157:H7,他們?cè)谛酒舷刃揎椧粚拥鞍譍來固定抗E.coli O157:H7抗體然后直接檢測(cè)E.coli O157:H7,其檢測(cè)靈敏度可達(dá)104/cell。2006年 Subramanian等[4]在芯片表面修飾硫醇自組裝膜,氨基偶聯(lián)法將抗E.coli O157:H7多克隆抗體固定在芯片上,利用夾心SPR檢測(cè)法測(cè)定,靈敏度可達(dá)103cfu/mL。2007年,Waswa等[5]利用Speeta SPR儀,先將生物素化的抗E.coli O157:H7抗體固定到預(yù)先修飾有中性鏈親和素的金膜表面,這種抗體固定方式大大改善了方法的靈敏度,可實(shí)現(xiàn)牛奶、蘋果汁、碎牛肉等復(fù)雜體系中E.coli O157:H7的檢測(cè),其檢測(cè)限可達(dá)102-103cfu/ml。Zezza等[6]測(cè)定了小麥里的黃色鐮刀菌。先提取樣品中DNA,再將黃色鐮刀菌的特異性DNA片段放大,然后檢測(cè)擴(kuò)增物,通過與已固定在SPR芯片表面的互補(bǔ)序列雜化檢測(cè)黃色鐮刀菌。
食品安全所涉及的毒素主要是由細(xì)菌、真菌、水藻所產(chǎn)生的。2000年,Nedelkov等[7]用Biacore X SPR儀在葡聚糖芯片表面氨基偶聯(lián)抗金黃色葡萄球菌腸毒素B(Staphylococcal Enterotoxin B,SEB)抗體,直接檢測(cè)牛奶和蘑菇的SEB量可低至1ng/ml[8]。SPR儀后串接一個(gè)MALDI-TOF來對(duì)已結(jié)合的毒素確證。Medina等[9]利用商品化Biacore1000 SPR儀,競(jìng)爭(zhēng)SPR法檢測(cè)雞蛋里的SEA (金黃色葡萄球菌腸毒素A)。首先將SEA氨基偶聯(lián)在葡聚糖芯片上。生雞蛋碾碎均勻后離心,然后向其中加入抗SEA抗體,待SEA和其抗體反應(yīng)后離心,使得抗原-抗體結(jié)合物與未反應(yīng)的抗體分離。取上清液,注樣使樣品流過SEA芯片表面。該方法的SEA檢測(cè)限可達(dá)1ng/ml。Lotierzo等[10]采用Biacore 3000,在芯片上修飾分子印跡聚合物作為識(shí)別元素采用競(jìng)爭(zhēng)SPR法測(cè)定軟骨藻酸DA。具體做法是將含有DA和辣根過氧化物酶修飾的DA的樣品與以DA為模板的分子印跡聚合物競(jìng)爭(zhēng)反應(yīng)。2005年,Yu等[11]采用抑制法用自行搭建的SPR儀測(cè)定DA。Traynor等[12]也利用抑制SPR法測(cè)定了貝殼提取物中的DA。
SPR生物傳感技術(shù)應(yīng)用的另一個(gè)重要領(lǐng)域就是食品中獸藥殘留檢測(cè)[13](例如:抗生素、β-阻斷劑、抗寄生蟲藥),且目前這方面的應(yīng)用還在不斷增加。Cacciatore等[14]檢測(cè)了牛奶中抗生素含量(盤尼西林、頭孢),他們利用β-內(nèi)酰胺類抗生物對(duì)digoxigenin標(biāo)記氯芐青霉素與水溶性肺炎鏈球菌盤尼西林結(jié)合蛋白2×衍生物結(jié)合產(chǎn)生非競(jìng)爭(zhēng)抑制作用,使用的是Biacore 3000 SPR儀將抗digoxigenin抗體預(yù)先固定在芯片上。測(cè)得牛奶中各種抗生素的檢出限如下:芐青氯素、氨芐青霉素、阿莫西林2ng/ml,鄰氯青霉素15ng/ml,頭孢氯芐50ng/ml,頭孢哌酮鈉25ng/ml。Ashuin等[15]測(cè)定了食物中氯霉素和氯霉素葡萄糖苷酸。他們測(cè)定了蜂蜜、蝦、乳制品中的氯霉素和豬腎里的氯霉素葡萄糖苷酸可低至0.2μg/kg。Dumont等[16]利用Biacore Q抑制檢測(cè)法測(cè)定了蝦體內(nèi)殘留的氟苯尼考(fenicol)。2007年Moeller等[17]報(bào)道了蜂蜜和牛奶中的四環(huán)素(tet)藥物的檢測(cè)。該方法的機(jī)理是四環(huán)素從四環(huán)素操縱子(tetO)中釋放出四環(huán)素遏制蛋白(TetR)對(duì)革蘭氏陰性菌中四環(huán)素產(chǎn)生遏制。含有四環(huán)素操縱子序列的biotinated-單鏈DNA固定在鏈霉親和素芯片表面上,然后TetR與芯片表面的tetO結(jié)合,注入含有四環(huán)素的樣品使四環(huán)素與TetR反應(yīng),TetR蛋白構(gòu)型發(fā)生變化從芯片表面脫離,SPR檢測(cè)到的是芯片表面密度的減少。緩沖溶液中tet的檢測(cè)限為1ng/ml,牛奶和蜂蜜中的分別為15ng/ml和25μg/kg。
Gillis等[18,19]測(cè)定了奶牛新產(chǎn)乃中甾體類激素黃體酮。黃體酮衍生物氨基偶聯(lián)固定在葡聚糖表面上,一定已知濃度的單克隆抗體與樣品(緩沖溶液或牛奶)孵育一段時(shí)間。SPR檢測(cè)為反應(yīng)抗體的量。早在2002年他們就測(cè)定了生乳牛奶中黃體酮的含量可低至3.6ng/ml[18]。2006年他們又改進(jìn)方法將緩沖夜和牛奶黃體酮中檢測(cè)限降至60pg/ml和0.6ng/ml[19]。
Mohammed等[20]利用商品微型化SPR儀—Spreeta測(cè)定可花生過敏原,檢測(cè)限為700ng/ml。Malmheden Yman等[21]將雞蛋白、伴白蛋白、芝麻蛋白、花生蛋白、榛仁蛋白、蟹肉等過敏原的親和純化抗體氨基偶聯(lián)在葡聚糖芯片上,利用Biacore Q SPR儀比較了直接檢測(cè)和夾心檢測(cè)兩種模式,實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明夾心法中的二抗提高了檢測(cè)的靈敏度和特異性。巧克力中的花生蛋白稀釋10倍后檢測(cè)限可達(dá)1μg/g,通心粉中的伴白蛋白則達(dá)1μg/g,芝麻蛋白為0.25μg/g。
Samsonona等[22]使用Biacore Q SPR儀抑制法測(cè)定了貝殼中4-壬基苯酚。9-羥苯基壬酸氨基偶聯(lián)在葡聚糖涂層上,采用單克隆抗體檢測(cè),緩沖溶液中檢測(cè)限為2ng/ml。整個(gè)檢測(cè)過程包括30秒鐘的重生也只需花不到3min。芯片可用10% 100mM NaOH的乙腈溶液重生,降低了實(shí)驗(yàn)成本。檢測(cè)貝殼中4-壬基苯酚的濃度最低可到10ng/ml。一般,用重組牛生長(zhǎng)激素處理過的牛奶中會(huì)發(fā)現(xiàn)一種可疑致癌物:胰島素樣生長(zhǎng)因子(IGF)。Guidi等[23]先將胰島素樣生長(zhǎng)因子-1(IGF-1)固定在葡聚糖膜上,anti-IGF-1多克隆抗體與樣品孵育2小時(shí)后采用的是抑制免疫檢測(cè)法。據(jù)報(bào)道,緩沖溶液和牛奶中IGF-1檢測(cè)量都可低至10ng/ml。
SPR作為生物傳感器具有生物樣品無需標(biāo)記,分析樣品無需純化,且可實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè)反應(yīng)動(dòng)態(tài)過程等優(yōu)點(diǎn),它在生命醫(yī)學(xué)、食品及環(huán)境科學(xué)等領(lǐng)域有著巨大的市場(chǎng)潛力,但與之前廣泛應(yīng)用的免疫檢測(cè)方法相比,在價(jià)格、靈敏度、穩(wěn)定性方法須進(jìn)一步改進(jìn):
一臺(tái)進(jìn)口商品化的SPR儀需人民幣200~300萬元,使用過程中還要不斷地消耗昂貴的耗材芯片,SPR實(shí)驗(yàn)高額成本無形中影響了SPR傳感器的研究和應(yīng)用。目前國(guó)內(nèi)已有許多研究小組都自行搭建了SPR傳感裝置,大大降低了實(shí)驗(yàn)成本。
由于SPR技術(shù)每次只能分析幾個(gè)樣品,且每次分析需要大約5~10min,高通量檢測(cè)提高了檢測(cè)效率,參考通道的引入也確保了測(cè)量結(jié)果的精確度和可信度。
SPR技術(shù)對(duì)待測(cè)物濃度的測(cè)定主要與物質(zhì)的分子量有關(guān),對(duì)于分子量大于1000的物質(zhì),其典型的可測(cè)定濃度范圍為μmol/L-nmol/L,而對(duì)于分子量小于1000的物質(zhì),其典型的可測(cè)定濃度范圍為μ mol/L-mmol/L。因此,積極探索各種高靈敏度的分析方法來檢測(cè)小分子已成為SPR研究中的一個(gè)主要內(nèi)容??赏ㄟ^對(duì)傳感器結(jié)構(gòu)進(jìn)行優(yōu)化、傳感新機(jī)制進(jìn)行研究來達(dá)到此目的。
[1]Englebienne P,Van H,Verhas M, Surface plasmon resonance: principles, methods and applications in biomedical sciences, Spectroscopy 2003, 17: 255[2]Fratamico P M,Strobaugh T P,Medina M B, Gehring A G, Biotechnol. Tech.1998,12: 571.
[3]Oh B K,Kim Y K,Bae Y M,Lee W H,Choi J W,J.Microb.Biotechnol.2002,12: 780.
[4]Subramanian A,Irudayaraj J,Ryan T,Biosens.Bioelectron.2006, 21:998.
[5]Waswa J,Irudayaraj J DebRoy C,LWT-Food Sci.Technol. 2007, 40: 187.
[6]Zezza F,Pascale M, Mule G,Visconti A,J. Microbiol.Methods 2006, 66: 529.
[7]Nedelkov D,Rasooly A,Nelson R W,Int.J.Food Microbiol.2000, 60:1.
[8]Nedelkov D,Nelson R W,Appl.Environ.Microbiol.2003,69:5212 .
[9]Medina M B,J.Rapid Methods Autom.Microbiol.2006,14:119.
[10]Lotierzo M,Henry O Y F,Piletsky S,Tothill I,Cullen D,Kania M,Hock B,Turner A P F,Biosens.Bioelectron.2004,20:145.
[11]Yu Q M,Chen S F,Taylor A D,Homola J, Hock B,Jiang S Y,Sens.Actuators B 2005,107:193.
[12]Traynor I M,Plumpton L,Fodey T L,Higgins C,Elliott C T,J.AOAC Int.2006, 89:868.
[13]Haughey S A,Baxter CA,J.AOAC Int. 2006,89:862.
[14]Cacciatore G,Petz M,Rachid S,Hakenbeck R,Bergwerff A A,Anal.Chim.Acta 2004,520:105.
[15]Ashwin H M,Stead S L,Taylor J C,Startin J R,Richmond S F,Homer V,Bigwood T,Sharman M,Anal.Chim.Acta 2005,529:103.
[16]Dumont V,Huet A C,Traynor I,Elliott C,Delahaut P,Anal.Chim.Acta 2006,567:79.
[17]Moeller N,Mueller-Seitz E,Scholz O,Hillen W,Bergwerff A A,Petz M,[J]Eur.Food Res.Technol.2007,224:285.
[18]Gillis E H,Gosling J P,Sreenan J M,Kane M,J.Immunol.Methods 2002,267:131.
[19]Gillis E H,Traynor I,Gosling J P,Kane M,J. AOAC Int.2006,89:838.
[20]Mohammed I,Mullett W M,Lai E P C,Yeung J M,Anal.Chim.Acta 2001,444:97.
[21]Malmheden Yman I,Eriksson A,Johansson M A,Hellenas K E,J.AOAC Int.2006,89:856.
[22]Samsonova J V,Uskova N A,Andresyuk A N,Franek M,Elliott C T,Chemo- sphere 2004,57:975.
[23]Guidi A,Laricchia-Robbio L,Gianfaldoni D,Revoltella R,Del Bono G,Biosens.Bioelectron.2001,16:971.
Development of Surface Plasmon Resonance Technique in theAnalysis of Food Safety
DAI Ming
(Fujian Provincial Central Inspection Institute, Fuzhou 350002, Fujian, China)
Surface plasmon resonance (SPR) biosensor developed rapidly in the recent years by merit of its obviation of sample labeling, rapidness and high sensitivity. The principle and development of SPR technique in analysis of environment pollution substance and food safety analysis was reviewed and tread of SPR in the above area was also prospected.
surface plasmon resonance (SPR); food safety; detection
2009-02-20
戴 明,男,福建省中心檢驗(yàn)所食品化學(xué)產(chǎn)品檢驗(yàn)部,工程師,理學(xué)博士