任麗麗,任春明,趙自國(guó)
(1.濱州學(xué)院生命科學(xué)系,山東濱州256603;2.山東省鄒平縣高新小學(xué),山東濱州256605)
鹽堿地約占地球陸地面積的25%,全世界有0.2億~0.3億hm2的海岸濕地和紅樹(shù)林鹽灘,另外還存在人為原因造成的次生鹽堿化土地約40億hm2[1]。我國(guó)的鹽堿地主要由3種陽(yáng)離子Na+,Ca2+,Mg2+與4種陰離子,H,Cl-組成,也有小面積的硝酸鹽鹽土。土地的鹽堿化嚴(yán)重制約了現(xiàn)代農(nóng)業(yè)的發(fā)展,為培育具有耐鹽特性的農(nóng)作物新品種,科學(xué)家們進(jìn)行了大量的相關(guān)研究[2]。本文就鹽脅迫對(duì)植物的傷害、植物耐鹽機(jī)制、鹽脅迫下植物的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)、植物耐鹽基因工程的現(xiàn)狀及展望進(jìn)行了介紹。
鹽脅迫主要包括滲透脅迫、離子毒害以及高鹽引起的營(yíng)養(yǎng)虧缺、氧化脅迫等一系列的次生脅迫[3]。這些脅迫使得植物生長(zhǎng)受到抑制、光合作用下降,能耗增加,最終加速衰老而死亡[4-6]。
當(dāng)外界鹽分的濃度超過(guò)植物生長(zhǎng)最適鹽度時(shí),鹽分大大降低了土壤溶液中的水勢(shì),使得根系吸水困難,或者不吸水甚至失水,從而造成滲透脅迫,葉片失水,膨壓降低,引起細(xì)胞和組織的死亡[7]。
離子毒害主要是由于植物攝取了過(guò)量的Na+,Cl-等離子,使植物細(xì)胞質(zhì)內(nèi)離子濃度增高,對(duì)植物產(chǎn)生了毒害作用[8]。細(xì)胞內(nèi)的高濃度離子可使細(xì)胞原生質(zhì)發(fā)生凝聚,破壞膠體的性質(zhì)。而細(xì)胞內(nèi)大部分酶只能在很狹窄的離子濃度內(nèi)才具有活性,對(duì)于Na+和Cl-一般要求低于50 mmol/L。高濃度的鹽會(huì)破壞酶的結(jié)構(gòu)和活性,破壞光合系統(tǒng),造成代謝紊亂、蛋白質(zhì)的降解。鹽脅迫還會(huì)使質(zhì)膜的組分、透性、運(yùn)輸、離子流發(fā)生一系列變化,導(dǎo)致細(xì)胞膜的正常功能受損,進(jìn)而使細(xì)胞的代謝及生理功能受到不同程度的破壞。
鹽脅迫對(duì)植物的傷害還表現(xiàn)為其帶來(lái)的各種次生脅迫會(huì)嚴(yán)重影響植物正常的生長(zhǎng)發(fā)育。植物在高鹽的環(huán)境中生長(zhǎng)經(jīng)常會(huì)出現(xiàn)營(yíng)養(yǎng)虧缺的現(xiàn)象,這是植物在吸收礦物質(zhì)元素的過(guò)程中鹽離子與多重營(yíng)養(yǎng)離子相互競(jìng)爭(zhēng)的結(jié)果。例如,高濃度的Na+會(huì)抑制K+,Ca2+和Mn2+的吸收,從而造成植物缺乏這些必需的元素;另一方面,由于嚴(yán)重的鹽脅迫導(dǎo)致細(xì)胞膜完整性的破壞,使細(xì)胞內(nèi)一些營(yíng)養(yǎng)離子如鉀和磷大量外滲,造成植物細(xì)胞缺鉀、缺磷[9]。
氧化脅迫也是鹽脅迫導(dǎo)致的主要次生脅迫之一。在正常生理?xiàng)l件下,植物體內(nèi)活性氧處于不斷產(chǎn)生和清除的動(dòng)態(tài)平衡之中,而在鹽脅迫下,植物葉綠體和線(xiàn)粒體電子傳遞鏈中泄漏的電子,與 O2反應(yīng)生成,H2O2,OH-。盡管,H2O2本身對(duì)植物毒害很小,但可以通過(guò)Haber-Weiss反應(yīng)轉(zhuǎn)化為毒性很高的OH-[10],進(jìn)而引發(fā)膜脂的過(guò)氧化和脫酰化,造成植物細(xì)胞膜系統(tǒng)和代謝過(guò)程的傷害,并進(jìn)一步對(duì)蛋白質(zhì)和核酸等生物大分子造成損傷,從而導(dǎo)致細(xì)胞死亡[11]。
生存在鹽漬環(huán)境中的作物在長(zhǎng)期自然選擇中形成了一系列保護(hù)自身免受或減弱鹽脅迫傷害的措施,總的來(lái)說(shuō)包括以下幾個(gè)方面。
滲透調(diào)節(jié)能力是植物耐鹽的基本特征之一。所謂滲透調(diào)節(jié),是指植物處在滲透脅迫條件下,細(xì)胞中有活性和無(wú)毒害作用溶質(zhì)的主動(dòng)凈增長(zhǎng)過(guò)程,其結(jié)果是細(xì)胞水勢(shì)降低,能夠從周?chē)h(huán)境中吸收水分。植物細(xì)胞在鹽脅迫下積累的滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)[12]不僅包括無(wú)機(jī)離子如K+等,還包括有機(jī)小分子物質(zhì)如海藻糖、脯氨酸、甜菜堿、蘋(píng)果酸等。后者不僅有滲透調(diào)節(jié)功能,還能穩(wěn)定細(xì)胞內(nèi)大分子與生物膜的結(jié)構(gòu)和功能,有的還可以起一定的解毒作用。
鹽分過(guò)多會(huì)導(dǎo)致植物細(xì)胞內(nèi)離子紊亂,不僅破壞Na+和Cl-的均衡,而且也影響了K+,Ca2+等在細(xì)胞內(nèi)的分布。過(guò)多的Na+和Cl-還會(huì)產(chǎn)生諸多毒害作用。因此,鹽脅迫環(huán)境中,植物獲得耐鹽能力的一個(gè)重要方式就是建立新的離子均衡[13]。從耐鹽機(jī)制上看,植物可通過(guò)拒鹽、排鹽以及鹽分的區(qū)域化等方式緩解離子脅迫。
所謂拒鹽,就是不讓外界的鹽分進(jìn)入植物體內(nèi),具體又分為根系拒鹽和地上部拒鹽2種方式。有的植物根細(xì)胞質(zhì)膜有很強(qiáng)大的選擇性吸收能力,它能夠高效吸收K+而不吸收Na+,這類(lèi)植物根細(xì)胞質(zhì)膜組成十分特殊,具有較多的飽和脂肪酸,對(duì)Na+和Cl-的透性降低。有的植物根系允許土壤中的鹽分進(jìn)入根系,但進(jìn)入后大部分貯存在外皮層與表皮細(xì)胞,不再向地上部分運(yùn)輸,從而使地上部分的鹽濃度仍保持在較低水平,例如耐鹽植物蘆葦就是如此。地上部分拒鹽的植物可通過(guò)體內(nèi)的再循環(huán)將離子回流到根部。
排鹽就是植物將鹽分排到細(xì)胞外。在植物中,將Na+直接排到細(xì)胞外是最直接避免Na+在胞質(zhì)中積累的策略。海藻的質(zhì)膜上存在Na+-ATP酶,可以水解ATP驅(qū)動(dòng)Na+向胞外運(yùn)輸[14],然而在高等植物中目前尚未發(fā)現(xiàn)Na+-ATP酶的存在。高等植物排Na+主要由質(zhì)膜上SOS1基因編碼的Na+/H+反向轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白來(lái)完成[15]。質(zhì)膜上H+-ATP酶水解ATP產(chǎn)生的能量將H+泵出細(xì)胞外,產(chǎn)生跨膜的質(zhì)子電化學(xué)勢(shì)階度,驅(qū)動(dòng)質(zhì)膜上的Na+/H+反向轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白,使H+順其電化學(xué)勢(shì)進(jìn)入細(xì)胞,同時(shí)Na+逆其電化學(xué)勢(shì)排出細(xì)胞。另外,有的鹽生植物具有特殊的鹽腺可將鹽分直接分泌到體外。鹽腺細(xì)胞通常富含小液泡,在這些液泡中積累各種離子,然后通過(guò)液泡膜和質(zhì)膜的融合即胞吐作用排出體外,也有人認(rèn)為是離子通過(guò)跨液泡膜和質(zhì)膜的運(yùn)輸分泌到細(xì)胞外。
鹽分大量進(jìn)入液泡從而被區(qū)域化也是植物對(duì)鹽漬環(huán)境適應(yīng)的最佳方式之一[16]。大量鹽分進(jìn)入液泡后,一方面降低了細(xì)胞質(zhì)中的鹽濃度,使其正常的代謝活動(dòng)順利進(jìn)行,另一方面增加了液泡內(nèi)離子濃度,降低了細(xì)胞的水勢(shì),從而保證了水分的正常吸收,避免了生理性干旱。鹽脅迫下植物液泡膜Na+/H+反向轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白的表達(dá)量增多,從而增強(qiáng)了Na+的液泡區(qū)域化,提高了植物的耐鹽能力[17]。最近Song等[18]從擬南芥中克隆了一個(gè)定位于葉綠體膜上的基因AtCHX23,該基因可編碼1個(gè)Na+/H+反向轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白,該蛋白調(diào)節(jié)了葉綠體內(nèi)的pH并影響葉綠體的發(fā)育,進(jìn)一步研究表明,葉綠體也可能是潛在的Na+區(qū)域化場(chǎng)所。
活性氧是單線(xiàn)態(tài)氧(1O2)、羥自由基(OH-)、超氧陰離子()和過(guò)氧化氫(H2O2)等氧化能力很強(qiáng)的幾種含氧物質(zhì)的總稱(chēng)。植物抗氧化系統(tǒng)主要包括酶系統(tǒng)和非酶系統(tǒng)兩大類(lèi)。前者包括超氧化物岐化酶(SOD)、過(guò)氧化氫酶(CAT)、過(guò)氧化物酶(POD)和抗壞血酸過(guò)氧化物酶(APX)等。后者主要包括植物體內(nèi)的一些還原性物質(zhì),如抗壞血酸、類(lèi)胡蘿卜素、谷胱甘肽及維生素E等。另外,小分子糖類(lèi)、多元醇、甜菜堿、脯氨酸等也有一定的清除細(xì)胞內(nèi)自由基傷害的作用。突變體和轉(zhuǎn)基因植物的試驗(yàn)表明,提高植物的這2種抗氧化系統(tǒng)的活性,均能夠抵抗鹽脅迫,而鹽脅迫下抗氧化基因的表達(dá)可能會(huì)受到MAPK信號(hào)級(jí)聯(lián)途徑的調(diào)控[19]。
甜土植物擬南芥與鹽生植物鹽芥親緣性很近,基因組同源性高達(dá)95%左右,具有很多高度同源的與抗逆有關(guān)的基因,但是二者對(duì)鹽脅迫的耐受能力相差很大,這暗示著二者在基因的表達(dá)水平與調(diào)節(jié)方式上不同。也就是說(shuō),鹽生植物與甜土植物可能在基因結(jié)構(gòu)上并沒(méi)有顯著的差異,而在相關(guān)基因的表達(dá)調(diào)控及作用模式上有很大區(qū)別,這也可能是植物耐鹽性的關(guān)鍵因素之一。而植物感受鹽脅迫并作出反應(yīng)的過(guò)程是通過(guò)一系列復(fù)雜的信號(hào)識(shí)別與轉(zhuǎn)導(dǎo)機(jī)制來(lái)完成的[20]。
原美國(guó)Arizona大學(xué)Zhu教授的研究小組在鹽脅迫信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)方面做出了開(kāi)創(chuàng)性的工作。他們通過(guò)各種方法得到40多個(gè)SOS突變體,并將其歸為5組,定義了5個(gè)耐鹽基因座,并從分子遺傳、生化細(xì)胞各個(gè)方面進(jìn)行了功能分析,最終揭示出一條與鹽脅迫應(yīng)答直接相關(guān)的調(diào)控途徑。該調(diào)控途徑的基本過(guò)程如下:在鹽脅迫下,通過(guò)細(xì)胞膜上的Na+傳感器,信號(hào)傳入使細(xì)胞內(nèi)Ca2+濃度增加,激活了SOS3,于是SOS3和SOS2結(jié)合,使其轉(zhuǎn)化為活性狀態(tài),催化部位暴露出來(lái)發(fā)揮激酶的功能,從而激活下游蛋白行使功能,SOS1是其底物之一。SOS2/SOS3復(fù)合物激活SOS1,提高了質(zhì)膜Na+/H+反向轉(zhuǎn)運(yùn)的能力,防止了Na+在細(xì)胞內(nèi)的積累[20]。
最近研究表明,SOS2在細(xì)胞內(nèi)可以與多種蛋白相互作用,從而發(fā)揮多種功能。SOS2不僅正調(diào)控SOS1,還可以激活液泡膜上的Na+/H+反向轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白和Ca2+/H+轉(zhuǎn)運(yùn)器[21],與ABA信號(hào)途徑存在復(fù)雜的相互作用,可共同提高植物耐鹽性。
大多數(shù)植物只能在NaCl含量低于0.4%的土壤中正常生長(zhǎng)。隨著現(xiàn)代分子生物學(xué)與轉(zhuǎn)基因技術(shù)的飛速發(fā)展,克隆鑒定目標(biāo)基因,并將目標(biāo)基因轉(zhuǎn)化到目標(biāo)植物中以獲得轉(zhuǎn)基因工程植株,使植物育種工作取得了突破性進(jìn)展。至今植物抗鹽基因工程的研究取得了長(zhǎng)足的進(jìn)步,已有較多研究將各種抗鹽基因克隆后整合入各種目標(biāo)植物中,從而開(kāi)辟可選育耐鹽植物品種的新途徑。
植物耐鹽基因工程最初的策略是增加植物細(xì)胞質(zhì)中的滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)。Tarczynski等[22]將大腸桿菌的磷酸甘露醇脫氫酶(mtlD)的基因轉(zhuǎn)入煙草,使轉(zhuǎn)基因煙草能夠有效積累甘露醇,并且表現(xiàn)出較高的抗鹽能力。轉(zhuǎn)基因植株葉片中甘露醇的含量達(dá)到可溶性糖含量的25%,其植株高度和鮮質(zhì)量明顯高于對(duì)照,而且新根和新葉的發(fā)生率提高了1倍多。另外,甜菜堿、右旋肌醇甲醚、海藻糖等滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)的基因工程植株都已經(jīng)成功獲得,它們從不同方面不同程度地提高了轉(zhuǎn)基因植株的耐鹽能力。
在鹽脅迫下,植物維持體內(nèi)的離子均衡是保持其耐受能力的重要方面,因此對(duì)于離子轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白在耐鹽基因工程中的應(yīng)用,近年來(lái)得到了人們的普遍重視。轉(zhuǎn)基因擬南芥中過(guò)量表達(dá)編碼液泡H+轉(zhuǎn)位酶的AVP1基因,則植物對(duì)高鹽濃度有很強(qiáng)的抗性[23],對(duì)液泡膜的分析結(jié)果表明,轉(zhuǎn)基因植物的液泡膜對(duì)陽(yáng)離子的吸收能力更強(qiáng),陽(yáng)離子區(qū)域化到液泡中,增加了植物的滲透壓,同時(shí)減少了它們對(duì)細(xì)胞的毒害。將編碼擬南芥液泡膜Na+/H+反向轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白的AtNHX1基因?qū)敕眩墒罐D(zhuǎn)基因番茄在200 mmol/L的NaCl澆灌下正常生長(zhǎng)[24]。
此外,通過(guò)過(guò)量表達(dá)氧化保護(hù)物質(zhì),去除過(guò)氧化自由基毒害,可以使轉(zhuǎn)基因植物的耐鹽能力得到明顯改善。過(guò)量表達(dá)谷胱甘肽硫轉(zhuǎn)移酶和谷胱甘肽超氧化物酶的煙草導(dǎo)致氧化性谷胱甘肽的含量大幅度提高,在鹽脅迫下可迅速生長(zhǎng),明顯高于野生型植株[25]。
近年來(lái),通過(guò)基因工程導(dǎo)入單個(gè)基因,以提高植物耐鹽性的工作取得了一定的進(jìn)展,但是也存在一些局限和問(wèn)題。(1)植物品種的局限性?,F(xiàn)在的研究多限于一些模式植物,在培育實(shí)用的耐鹽農(nóng)作物和木本植物上進(jìn)展十分緩慢,因此有必要加強(qiáng)經(jīng)濟(jì)作物耐鹽遺傳轉(zhuǎn)化體系的建立和研究。(2)轉(zhuǎn)化效果的局限性。轉(zhuǎn)基因植物在一定程度上提高了耐鹽性,但往往不夠高,沒(méi)有達(dá)到真正的實(shí)用水平。(3)產(chǎn)業(yè)推廣的局限性。人為控制的測(cè)試與真正的自然鹽堿環(huán)境不同,實(shí)驗(yàn)室里的結(jié)果很多難以經(jīng)得起實(shí)踐考驗(yàn),產(chǎn)業(yè)化進(jìn)程緩慢。
植物耐鹽基因工程在探索中不斷前進(jìn)著。隨著對(duì)耐鹽機(jī)制的深入了解,各種技術(shù)手段的不斷更新發(fā)展,理論與技術(shù)緊密聯(lián)系相互融合,人們將在不久的未來(lái)培育出耐鹽性很高的轉(zhuǎn)基因植物新品種,實(shí)用性的提高與產(chǎn)業(yè)化的推廣也會(huì)逐步實(shí)現(xiàn)。
[1]趙可夫,馮立田.中國(guó)鹽生植物資源[M].北京:科學(xué)出版社,2001:2-5.
[2]王越,趙輝,馬鳳江,等.鹽堿地與耐鹽堿牧草[J].山西農(nóng)業(yè)科學(xué),2006,34(1):55-57.
[3]Zhu J K.Plant salt tolerance[J].Trends Plants Sci,2001,6:66-71.
[4]任麗麗,任春明,張偉偉,等.短期NaCl脅迫對(duì)野生大豆和栽培大豆葉片光合作用的影響[J].大豆科學(xué),2009,28(2):239-242.
[5]Yang Y,Jiang D A,Xu H X,et al.Cyclic electron flow around photosystem I is required for adaptation to salt stress in wild soybean species Glycine cyrtolaba ACC547[J].Biol Planta,2006,50:586-590.
[6]楊鳳軍,李天來(lái),宿越,等.NaCl、單Na+、Cl-脅迫對(duì)不同番茄幼苗光合特性的影響 [J].華北農(nóng)學(xué)報(bào),2009,24(4):163-168.
[7]Ranjbarfordoei A,Samson R,Lemeur R,et al.Effects ofosmotic drought stress induced bycombination ofNaCl and polyethylene glycol on leaf water status,photosynthetic gas exchange,and water use efficiency of Pistacia khinjuk and P mutica[J].Photosynthetica,2002,40:165-169.
[8]Marschner,H.Mineral Nutrition in Higher Plants[M].2nd ed.San Diego:Academic Press,1995:31-40.
[9]Hasegawa P M,Bressan R A,Zhu J K,et al.Plant cellular and molecular response tohigh salinity[J].Annu RevPlant Physiol Plant Mol Biol,2000,51:463-499.
[10]Wang B S,Luttge U,Ratajczak R.Specific regulation of SOD isoforms by NaCl and osmotic stress in leaves of the C3 halophyte Suaeda Salsa L [J].J Plant Physiol,2004,161:285-293.
[11]Mittler R.Oxidative stress,antioxidants and stress tolerance[J].Trends in Plant Science,2002,7:405-411.
[12]Gorham J,Wyn R G,Mcdonnel E.Some mechanisms of salt tolerance in crop plants[J].Plant Soil,1985,89:15-40.
[13]Blumwald E.Sodium transport and salt tolerance in plants[J].Curr Opin Cell Biol,2000,4:434.
[14]Shono M,Wada M,Hara Y,et al.Molecular cloning of Na+-ATPase cDNA from a marine alga,Heterosinma akashiwo[J].BiochimBiophys Acta,2001,1511:193-199.
[15]Shi H,Wu S J,Zhu J K.Over expression of a plasma membrane Na+/H+antiporter improves salt tolerance in Araidopsis[J].Nature Biotech,2003,21:81-85.
[16]Wolf B F,Uwe L,Doris R.Enhanced:Taking Transgenic Plants with a Pinch of Salt [J].Science,1999,285:1222-1223.
[17]Bluwald E,Poole R J.Na+/H+antiport in isolated tonoplast vesicles fromstorage tissue of Beta vulgaris[J].Plant Physiol,1985,78:163-167.
[18]Song C P,Guo Y,Qiu Q,et al.A probable Na+(K+)/H+exchanger on the chloroplast envelope functions in pH homeostasis and chloroplast development in Arabidopsis thaliana[J].Proc Natl Acas Sci USA,2004,101:10211-10216.
[19]Chinusamy V,Jagendorf A,Zhu J K.Understanding and improving salt tolerance in plants[J].Crop Sci,2005,45:437-448.
[20]Zhu J K.Salt and drought stress signal transduction in plants[J].Annu RevPlant Boil,2002,53:247-273.
[21]Qiu Q S,Guo Y,Quintero F J,et al.Regulation of vacuolar membrance Na+/H+exchange in Arabidopsis thaliana by the SOSpathway[J].J Biol Chem,2004,279:207-215.
[22]Tarczynski MC,Jensen R G,Bohnert H J.Stress protection of transgenic tobacco by production of the osmolyte mannito[J].Science,1993,259:508-510.
[23]Gaxiola R A,Li J,Undurraga S,et al.Drought-and salt-tolerant plants result from overexpression of the AVP1 H+-pump[J].Proc Natl Acad Sci USA,2001,98:11444-11449.
[24]Zhang H X,Hodson J N,Williams J P,et al.Engineering salt-tolerant Brassica plants:Characterization of yield and seed oil quality in transgenic plants with increased vacuolar sodiumaccumulation[J].Proc Natl Acad Sci USA,2001,98:12832-12836.
[25]Roxas V P,Smith R K,Allen E R,et al.Overexpression of glutathione S-transferase/glutathione peroxidase enhances the growth of transgenic tobacco seedlings during stress[J].Nat Biotechnol,1997,15:988-991.