呂 梅,徐爾東,杜翠萍,姚藝文,翟立杰
(大連醫(yī)科大學(xué) 附屬第一醫(yī)院 耳鼻咽喉科,遼寧 大連 116011)
頭頸部腫瘤是國(guó)際上發(fā)病率最高的癌癥之一。據(jù)WHO統(tǒng)計(jì),其發(fā)生率位居世界第6位,在亞洲國(guó)家發(fā)生率最高,在北歐相對(duì)較低。而95%頭頸部惡性腫瘤來源于上皮層,即鱗狀細(xì)胞癌。它們主要分布于1)上呼吸道,包括鼻腔、副鼻竇、鼻咽部及喉部;2)口腔和下咽部。其他頭頸部的惡性腫瘤則主要來源于大、小涎腺[1]。由于組織病理學(xué)的一致性,人們往往一起研究及總結(jié)這些腫瘤的遺傳學(xué)規(guī)律。
有關(guān)頭頸部鱗狀上皮細(xì)胞癌的細(xì)胞遺傳學(xué)研究表明,其染色體畸變的類型不同于像血液腫瘤所表現(xiàn)的簡(jiǎn)單、特異性、平衡性的染色體重排;主要表現(xiàn)為復(fù)雜、多倍體的、非平衡性的染色體重排,然而其畸變的規(guī)律卻是非任意性的[2]。本實(shí)驗(yàn)對(duì)18個(gè)來源于頭頸部不同位置的鱗狀細(xì)胞癌細(xì)胞系進(jìn)行細(xì)胞培養(yǎng),收集分裂中期細(xì)胞,進(jìn)行染色體“G”帶染色,分析核型,并與以往的研究結(jié)果進(jìn)行對(duì)照總結(jié),進(jìn)一步探討頭頸部鱗狀細(xì)胞癌的染色體變異規(guī)律。
18例頭頸部鱗狀細(xì)胞癌細(xì)胞系(來源于鼻腔、鼻竇5例,鼻咽部3例,口腔部4例,喉部6例)由香港大學(xué)解剖教研室Sai-Wah Tsao教授贈(zèng)給。
2例下鼻甲黏膜上皮(來自鼻整形病人),1例鼻咽部黏膜上皮(來自鼻咽癌患者正常側(cè)活檢),1例癌旁組織(來自喉癌患者)短期傳代(≤4代)細(xì)胞培養(yǎng)作為陰性對(duì)照,臨床標(biāo)本均來自大連醫(yī)科大學(xué)附屬一院。
頭頸部鱗狀細(xì)胞癌細(xì)胞系在RPMI 1640培養(yǎng)液(含10%小牛血清,100 IU/mL青霉素,0.2 mg/mL鏈霉素和2.5 μg/mL二性霉素)中培養(yǎng)。正常對(duì)照上皮組織剪碎后,經(jīng)180 U/mL膠原酶Ⅱ,37 ℃孵育過夜;然后放入膠原包被的培養(yǎng)瓶中培養(yǎng)。其培養(yǎng)液為角化細(xì)胞培養(yǎng)液(含0.23 mg/mL的L-谷酰胺,100 IU/mL青霉素,0.2 mg/mL鏈霉素,和2.5 μg/mL二性霉素)。細(xì)胞大體生長(zhǎng)狀態(tài)是在倒置顯微鏡下觀察。
培養(yǎng)細(xì)胞在收獲之前,培養(yǎng)液中加入秋水仙堿(0.01 μg/mL)作用12 h,0.25%的胰蛋白酶-EDTA消化細(xì)胞脫壁。0.06 M KCl低滲處理細(xì)胞35 min,再由固定液(甲醇∶冰乙酸=3∶1)固定。將3~4滴細(xì)胞懸液滴于一張浸于4 ℃水中備用載玻片上,60 ℃烘烤過夜。然后將玻片浸于2×SSC中,60 ℃作用3 h。最后賴特氏染液(BDH Burr)作用1 min 30 s。
100倍光學(xué)顯微鏡下找到分裂中期細(xì)胞,拍攝分散的染色體。利用細(xì)胞遺傳學(xué)影像分析軟件(Newcatlte,UK)編排染色體,根據(jù)國(guó)際人類細(xì)胞遺傳學(xué)命名法(ISCN1995)標(biāo)準(zhǔn)描述細(xì)胞染色體核型。
4例對(duì)照組上皮細(xì)胞均表現(xiàn)為人正常染色體核型(圖1)。18例頭頸部鱗狀細(xì)胞癌細(xì)胞系核型主要表現(xiàn)為大量復(fù)雜的、不平衡性結(jié)構(gòu)重排和染色體數(shù)目的改變(圖2)。但這種畸變并不是隨機(jī)的,而是有規(guī)律可循的。
與每個(gè)細(xì)胞系染色體所接近的整倍體數(shù)目比較,主要表現(xiàn)為染色體成分/數(shù)目的丟失(15例,83%)。
染色體/臂成分的丟失主要表現(xiàn)為:2q,3p,4,8p,9p,13,14,15,17,18,21,22;染色體/臂成分的增加主要表現(xiàn)為:3q,7,8q,11q13,20 (表1)。
表1 18例頭頸部鱗狀細(xì)胞癌細(xì)胞系染色體/臂成分的失衡主要表現(xiàn)Tab 1 Chromosomal imbalances in 18 cases of HNSCC cell lines
大量的染色體斷裂點(diǎn)位于著絲粒區(qū)域,347個(gè)斷裂點(diǎn)中含位于中心體區(qū)域的斷裂點(diǎn)208個(gè)(58%)。本實(shí)驗(yàn)斷裂點(diǎn)出現(xiàn)在著絲粒區(qū)域,即斷裂點(diǎn)出現(xiàn)在著絲粒帶p10和q10;或近著絲粒帶p11和q11,主要表現(xiàn)為等臂染色體形成,整條染色體臂的易位和丟失;常常涉及到的斷裂點(diǎn)主要有1p11-q11,3p11-q11,5p11-q11,7p11-q11,8p11-q11,14p11-q11 (表2)。
圖1 正常對(duì)照組細(xì)胞染色體為人正常有核細(xì)胞染色體核型(×1000)Fig 1 The cellular chromosomes of normal control group showed normal human chromosome karyotype(×1000)
90-101,XXXX,+X,del(X)(p11),del(1)(q31),+der(1)t(1;4)(q11;q11),der(3)t(1;3) (p13;q11) hsr(1;3)(p13;q11) ×2,-4,+6,+7,+7,+9,der(11) add(11) (q13) hsr(11)(q13),-13,-13,-14,?add(14)(q32),-18,-21,-22,mar1,mar2
圖2-1 喉鱗狀細(xì)胞癌
Fig 2-1 Laryngeal squamous cell carcinoma
71-81,XX,-Y,+2,t (2;16)(q33;q24),i(3)(q10) ×2,der(3)t(3;7)(p25;q11) ×2,-4,+ i(8)(q10) ×2,+9,+11,+dup(14)(q22q23),+15,+17,-18,+20,+21
圖2-2 舌鱗狀細(xì)胞
Fig 2-2 Glossal squamous cell carcinoma
圖2 HNSCC組具有代表性染色體畸變的核型(×1000)
Fig 2 The representative chromosomal karyotype of HNSCC cell lines(×1000)
表2 18例頭頸部鱗狀細(xì)胞癌細(xì)胞系染色體著絲粒區(qū)域斷裂點(diǎn)Tab 2 Chromosomal breakpoints at centromeric regions in 18 cases of HNSCC cell lines
腫瘤的發(fā)生、發(fā)展演變過程同時(shí)也是基因組不斷變化的積累過程。癌基因和抑癌基因是與腫瘤形成密切相關(guān)的兩類效應(yīng)基因。癌基因的前體是原癌基因,原癌基因具有調(diào)控細(xì)胞正常生長(zhǎng)和分化的能力。癌基因的激活主要是通過原癌基因的點(diǎn)突變、病毒插入、染色體異位及基因擴(kuò)增等引起,并將導(dǎo)致細(xì)胞無限制的增殖。抑癌基因主要抑制細(xì)胞生長(zhǎng)、促進(jìn)細(xì)胞死亡。當(dāng)抑癌基因在突變、缺失、部分或全部染色體丟失的情況下失活后,也會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞的增殖[3]。因此,癌基因活化及抑癌基因失活的逐漸積累促進(jìn)了腫瘤的惡性發(fā)展。而染色體增加、丟失、斷裂、重組的過程直接導(dǎo)致了基因組的變異。
在本實(shí)驗(yàn)研究中發(fā)現(xiàn)頭頸部鱗狀細(xì)胞癌細(xì)胞內(nèi)部分染色體成分?jǐn)U增,部分染色體成分缺失。這實(shí)際上在基因量變上確定了癌基因的激活和擴(kuò)增,抑癌基因的抑制及缺失。雖然某些機(jī)制尚不完全清楚,本文僅以以下已證實(shí)了的在頭頸部鱗狀細(xì)胞癌發(fā)生機(jī)制中起重要作用的基因變化,探討染色體改變、基因變異及腫瘤發(fā)生的辯證關(guān)系。
c-myc癌基因定位于染色體8q24帶?;騝-myc編碼的轉(zhuǎn)錄因子通過與生長(zhǎng)調(diào)節(jié)因子內(nèi)特異DNA序列結(jié)合而促進(jìn)其表達(dá),進(jìn)而促進(jìn)細(xì)胞的生長(zhǎng)、分化。同時(shí)研究證明c-myc蛋白又可作用于端粒逆轉(zhuǎn)錄酶,促進(jìn)其表達(dá)并增強(qiáng)其酶的活性,間接抑制細(xì)胞的衰老及死亡[4]。染色體8q增多,導(dǎo)致c-myc基因的擴(kuò)增及其所編碼蛋白的過度表達(dá),這對(duì)腫瘤的形成具有重要作用。大量研究報(bào)道8q增多/c-myc基因的擴(kuò)增與頭頸部惡性腫瘤的轉(zhuǎn)移和復(fù)發(fā)具有明顯正相關(guān)性。
Hsr(均染區(qū))作為染色體內(nèi)基因擴(kuò)增的細(xì)胞遺傳學(xué)標(biāo)志在本研究中多次出現(xiàn),并且經(jīng)常定位于11q13。以往頭頸部腫瘤熒光原位雜交研究證實(shí),許多非定位于11q13的hsr的基因序列來源于染色體11q13帶[5]。癌基因CCND1定位于11q13,CCND1作為一細(xì)胞周期調(diào)節(jié)蛋白,調(diào)節(jié)細(xì)胞周期從G1期過渡到S期[6]。過度表達(dá)CCND1可導(dǎo)致細(xì)胞周期G1期的縮短,縮短了基因檢測(cè)系統(tǒng)對(duì)錯(cuò)誤DNA序列的修復(fù)時(shí)間,以致未修復(fù)異?;虻闹饾u積累,以及帶有錯(cuò)誤基因細(xì)胞的不斷分裂和擴(kuò)增。
9p染色體片段的丟失是頭頸部磷狀細(xì)胞癌最常見的遺傳學(xué)改變之一。基因P16/CDKN2A定位于9p21-22區(qū)域。CDKN2A基因編碼G1細(xì)胞周期依賴激酶(Cdks)抑制劑,其通過與Cdks蛋白結(jié)合,及抑制pRB(視網(wǎng)膜母細(xì)胞瘤)蛋白磷酸化,延長(zhǎng)細(xì)胞周期G1期基因檢測(cè)修復(fù)階段,阻止進(jìn)入S期。CDKN2A基因失活必將導(dǎo)致細(xì)胞檢測(cè)系統(tǒng)及細(xì)胞增殖的失調(diào)[7]。
3P的缺失是頭頸部磷狀細(xì)胞癌染色體最早期改變之一。已發(fā)現(xiàn)定位于3p的抑癌基因?yàn)镕HIT基因。其基因的變異和蛋白功能的失調(diào)常發(fā)現(xiàn)于早期的頭頸部磷狀細(xì)胞癌和癌前病變的研究中[8,9]。
視網(wǎng)膜母細(xì)胞瘤基因——RB基因在調(diào)節(jié)細(xì)胞周期以及細(xì)胞分化的過程中起關(guān)鍵的作用。該基因定位于染色體的13q。低磷酸化RB蛋白作為其活化形式,與轉(zhuǎn)錄因子E2F家族蛋白結(jié)合,發(fā)揮阻止轉(zhuǎn)錄因子DNA合成和促進(jìn)細(xì)胞分裂的功能。G1晚期,RB蛋白被細(xì)胞周期依賴激酶磷酸化,釋放E2F轉(zhuǎn)錄因子,促使細(xì)胞進(jìn)入S期[10]。染色體13q丟失、RB基因低表達(dá)與腫瘤的高惡性度和不良預(yù)后密切相關(guān)。
本實(shí)驗(yàn)研究中,染色體丟失的機(jī)率明顯高于染色體成分、數(shù)目的增加,這說明抑癌基因的功能失調(diào)在頭頸部鱗狀細(xì)胞癌發(fā)生機(jī)制中起相對(duì)主要的作用。
另一方面,大量的染色體斷裂點(diǎn)出現(xiàn)在著絲粒區(qū)域是頭頸部鱗狀細(xì)胞癌的一特殊細(xì)胞遺傳學(xué)改變。一種可能的原因是該區(qū)域的基因在染色體斷裂時(shí)所引起的活化或缺失,是頭頸部鱗狀細(xì)胞癌腫瘤形成的致病因素之一。研究證明,近著絲粒區(qū)域的DNA在CpG島區(qū)的甲基化程度明顯高于其他區(qū)域的DNA。應(yīng)用甲基轉(zhuǎn)移酶抑制劑5-氮胞甘可引起染色體著絲粒區(qū)域的斷裂,促進(jìn)姐妹染色單體的互換、核內(nèi)復(fù)制及染色體臂的易位[11]。因此,雖然染色體某些部位基因CpG島區(qū)的過度甲基化可以抑制某些抑癌基因的作用,但著絲粒區(qū)域基因的去甲基化又可促進(jìn)染色體結(jié)構(gòu)的不穩(wěn)定性。
頭頸部鱗狀細(xì)胞癌細(xì)胞遺傳學(xué)的研究使大家認(rèn)識(shí)到,頭頸部鱗狀細(xì)胞癌染色體畸變是非任意性的,是有一定規(guī)律可循的。染色體數(shù)目、結(jié)構(gòu)的不斷變異可能造成癌基因擴(kuò)增、活化,抑癌基因的抑制和缺失;這種多基因改變的不斷積累貫穿著腫瘤發(fā)生、發(fā)展的全部過程。對(duì)于頭頸部鱗狀細(xì)胞癌染色體畸變規(guī)律的研究和認(rèn)識(shí),將對(duì)頭頸部腫瘤的診斷、預(yù)后,以及指導(dǎo)臨床治療具有重要意義。
[1] Parkin DM,L??r?E,Muir CS.Estimates of the worldwide frequency of sixteen major cancers in 1980[J].Int J Cancer,1988,41:184-197.
[2] Allegra E,Baudi F,La Boria A,et al.Multiple head and neck tumours and their genetic relationship[J].Acta Otorhinolaryngol Ital,2009,29(5):237-241.
[3] Goddard AD,Solomon E.Genetic aspects of cancer[J].Advances in Human Genetics,1993:321-376.
[4] Solé X,Hernández P,de Heredia ML,et al.Genetic and genomic analysis modeling of germline c-MYC overexpression and cancer susceptibility[J].BMC Genomics,2008,11(9):12.
[5] Jin Y,H?glund M,Jin C,et al.FISH characterization of head and neck carcinomas reveals that amplification of band 11q13 is associated with deletion of distal 11q[J].Genes Chromosomes Cancer,1998,22:312-320.
[6] Jin Y,Jin C,Law S,et al.Cytogenetic and fluorescence in situ hybridization characterization of clonal chromosomal aberrations and CCND1 amplification in esophageal carcinomas[J].Cancer Genet Cytogenet,2004,148(1):21-28.
[7] Suzuki N,Onda T,Yamamoto N,et al.Mutation of the p16/CDKN2 gene and loss of heterozygosity in malignant mucosal melanoma and adenoid cystic carcinoma of the head and neck[J].Int J Oncol,2007,31(5):1061-1067.
[8] Virgilio L,Shuster M.FHIT gene alterations in head and neck squamous cell carcinomas[J].Proc Natl Acad Sci USA,1996,93:9770-9775.
[9] Tsui IF,Rosin MP,Zhang L,et al.Multiple aberrations of chromosome 3p detected in oral premalignant lesions[J].Cancer Prev Res (Phila Pa),2008,1(6):424-429.
[10] Viallard JF,Lacombe F,Belloc F,et al.Molecular mechanisms controlling the cell cycle:fundamental aspects and implications for oncology[J].Cancer Radiother,2001,5(2):109-129.
[11] Hoque MO,Prencipe M,Poeta ML,et al.Changes in CpG islands promoter methylation patterns during ductal breast carcinoma progression[J].Cancer Epidemiol Biomarkers Prev,2009,18(10):2694-2700.