中圖分類號：S515.04 文獻標志碼：A 文章編號：1002-1302（2025）11-0044-07

土地鹽漬化能使得作物生長發(fā)育受到嚴重影響，是全球關(guān)注的環(huán)境問題之一，已成為干旱、半干旱地區(qū)農(nóng)業(yè)發(fā)展的主要威脅。目前，全世界鹽漬化土壤面積已經(jīng)超過10億 hm² ，預(yù)計到2050年，全球有 50% 的耕地發(fā)生鹽漬化[1]。我國鹽漬化土壤分布廣泛，總面積位居世界第3，屬于我國主要的中低產(chǎn)土壤類型之一，在很大程度上限制了我國農(nóng)業(yè)的生產(chǎn)與發(fā)展。谷子（Setariaitalica）是狗尾草屬一年生草本植物，為五谷雜糧之首，谷子經(jīng)去殼處理后，成為日常生活中必不可少的小米。小來不僅有保健身體的作用，還有幫助食用者安神的作用，食用價值較高，因此，人們對于小米的需求量較大另外，谷子除了具有較高的營養(yǎng)價值外，還具有糧飼兼用、抗旱耐瘠薄、適應(yīng)性強等特點[3]，是一種典型的環(huán)境友好型作物[4]。雖然谷子的耐鹽性高于水稻、玉米等作物，但是隨著我國王壤鹽漬化問題日益嚴重，對我國谷子的萌發(fā)、生長都造成較大的不利影響[5]。面對日益擴大的鹽堿地面積和巨大的糧食需求，提高鹽漬地上谷子的萌發(fā)率顯得尤為重要。

油菜素內(nèi)酯（brassinolide，BR）被列為第六大植物激素，在植物的花粉、種子及根、莖、葉中都有分布[6]，BR 中蕓苔素內(nèi)酯（BL）、2，4-表油菜素內(nèi)酯（EBL）和2，8-高油菜素內(nèi)酯（HBL）是活性較高的3種，油菜素內(nèi)酯作為一種新型、高效的植物激素，在植物的生長發(fā)育過程以及植物響應(yīng)生物、非生物脅迫過程中發(fā)揮著不可或缺的作用，它能夠通過促進植物光合作用和抗逆性來促進植物的生長發(fā)育，影響果實產(chǎn)量和品質(zhì)形成[] 。

權(quán)夢萍等研究油菜素內(nèi)酯對非生物逆境脅迫下植物生長的影響，發(fā)現(xiàn)油菜素內(nèi)酯可以通過改善植物的相關(guān)生理系統(tǒng)來提高植物對非生物脅迫的耐受性，促進植物生長[8]。有研究者分析了油菜素內(nèi)酯對鹽脅迫下黑麥草、菜豆、綠豆和水稻種子萌發(fā)及生理的影響，發(fā)現(xiàn)外源BR處理可以提高黑麥草種子的發(fā)芽率、發(fā)芽勢，可以增強相應(yīng)酶活性[9-12]。呂宗環(huán)等使用不同濃度的 NaCl溶液對10份谷子進行處理，明確了適合谷子萌發(fā)期抗鹽鑒定的 NaCl濃度為 180mmol/L^[13] 。張永芳等設(shè)置了5個碳酸鈉濃度對4個谷子品種進行鹽脅迫處理，結(jié)果表明，低濃度的碳酸鈉能夠促進谷子萌發(fā)，但是隨著其濃度增加，萌發(fā)指標會逐漸降低[14]。Nie等研究2，4-表油菜素內(nèi)酯對碳酸氫鈉脅迫黃瓜種子萌發(fā)的改善作用，發(fā)現(xiàn)EBL處理后顯著提高了超氧化物歧化酶（SOD）、過氧化氫酶（CAT）、過氧化物酶（POD）的活性，緩解鹽脅迫引起的氧化損傷，顯著抵消對種子萌發(fā)的抑制作用[15]。Chakma 等用2，4-表油菜素內(nèi)酯（EBL）單獨處理或?qū)⑵渑c其他激素聯(lián)合處理棉花種子進行萌發(fā)試驗，結(jié)果表明，EBL在有或無鹽脅迫的條件下都能促進種子萌發(fā)，而其他激素在脅迫下均無效[16]。有研究者分析油菜素內(nèi)酯浸種對臭椿種子、豇豆種子萌發(fā)的影響發(fā)現(xiàn)，浸種后其種子發(fā)芽率、發(fā)芽勢均提高，發(fā)芽速度縮短，根長和芽長、根干重和芽干重均增加，種子產(chǎn)量提高[17-18]

目前，已有報道發(fā)現(xiàn)油菜素內(nèi)酯在其他植物中有效促進了種子萌發(fā)，但尚未見油菜素內(nèi)酯對谷子萌發(fā)影響機制方面的研究，因此研究油菜素內(nèi)酯浸種對鹽脅迫下谷子萌發(fā)的影響及其生理機制具有重大意義。本研究通過油菜素內(nèi)酯浸種對鹽脅迫谷子萌發(fā)的影響試驗，以期找到最適的EBL浸種施用方式，為谷子在鹽漬地上的高產(chǎn)種植提供理論依據(jù)和實踐參考，從而促進我國農(nóng)業(yè)的可持續(xù)發(fā)展。

1材料與方法

1.1 試驗地點與材料

試驗于2024年2月在呂梁學(xué)院植物生理實驗室進行，供試材料為晉谷21號，購買自山西鑫騰達農(nóng)業(yè)科技有限公司。

1.2 試驗方法

1.2.1谷子挑選及浸種預(yù)處理將無水乙醇稀釋為 75% 的乙醇溶液，供谷子消毒使用。配制油菜素內(nèi)酯母液，并稀釋為 10^-7，10^-8，10^-9，10^-10 mol/L濃度，供谷子浸種使用。稱取 NaCl ，配制成50、100、150200.250.300mmol/L 的 NaCl 溶液，供谷子鹽脅迫使用。對晉谷21號的種子進行粗挑選，去掉干癟的籽粒，將留下的谷子在 75% 乙醇中浸泡 20s 用蒸餾水洗滌3次，再用吸水紙吸干谷子表面水分，分別使用配制好的不同濃度的油菜素內(nèi)酯溶液浸種處理 24h ，依次表示為EBL1、EBL2、EBL3、EBL4，以蒸餾水浸種 24h 為對照組，表示為EBLO。

1.2.2谷子萌發(fā)培養(yǎng)在浸種處理 24h 后，將浸泡谷子的浸種液倒掉，將谷子置于濾紙上，在室內(nèi)自然晾干。在直徑為 9cm 的玻璃培養(yǎng)血中放置雙層濾紙，在處理好的培養(yǎng)皿中分別加入不同濃度的NaCI溶液，濃度分別為0（CK，蒸餾水）50、100、150、200、250、300mmol/L ，每個試驗設(shè)置3次重復(fù)。進一步挑選籽粒飽滿、大小一致的谷子各100粒分別置于上述培養(yǎng)血中，保持NaCl溶液始終浸沒種子高度的一半。最后，將上述處理好的種子放置于人工氣候箱中，于 28^°C 黑暗條件下培養(yǎng)，培養(yǎng)期間始終保持濾紙濕潤。谷子萌發(fā)后3d測定其發(fā)芽勢，發(fā)芽后7d測定其發(fā)芽率，同時進行相關(guān)指標的計算。

1.3 指標的測定

1.3.1發(fā)芽勢、發(fā)芽率的測定以根、芽長度均超過谷子直徑的一半作為發(fā)芽標準，從發(fā)芽后2d開始每天記錄種子發(fā)芽數(shù)，將發(fā)芽后3d的發(fā)芽數(shù)用于計算發(fā)芽勢?；诎l(fā)芽后7d的發(fā)芽數(shù)計算發(fā)芽率。發(fā)芽勢 Σ=Σ 發(fā)芽后3d的發(fā)芽數(shù)/供試谷子粒數(shù) ×100% ；發(fā)芽率 Σ=Σ 發(fā)芽后7d的發(fā)芽數(shù)/供試谷子粒數(shù) ×100% 。

1.3.2胚根、胚軸長度的測定谷子發(fā)芽7d后，從每個培養(yǎng)皿中隨機選取5粒萌發(fā)的谷子，用剛尺分別測量其胚根、胚軸長度，每個處理重復(fù)3次。結(jié)果取平均值。

1.3.3萌發(fā)后含水量的測定谷子萌發(fā)后7d，取每個處理濃度的谷子10粒，用吸水紙吸干種子表面殘留水分，稱取谷子鮮重（FW），在電熱鼓風(fēng)干燥箱中于 105^°C 烘干至恒重，稱得干重（DW）。萌發(fā)谷子含水量 =[（FW-DW）/FW]×100% 。每個處理重復(fù)3次，結(jié)果取平均值。

1.3.4丙二醛（MDA）含量、抗氧化酶活性的測定丙二醛含量用硫代巴比妥酸法測定；超氧化物歧化酶活性用氮藍四唑還原法測定；過氧化物酶活性用愈創(chuàng)木酚比色法測定[19]

1.4數(shù)據(jù)處理與統(tǒng)計分析

試驗過程中測得的各數(shù)據(jù)均用Excel2021、SPSS27.0進行處理、統(tǒng)計分析等操作，數(shù)據(jù)均表示為“平均數(shù) ± 標準差”格式，采用Duncan's新復(fù)極差測驗法（ α=0.05 ）進行單因素顯著性方差分析。

2 結(jié)果與分析

2.1不同處理對谷子萌發(fā)的調(diào)控效應(yīng)

由圖1可知，隨著NaCl脅迫濃度的升高，每組EBL浸種處理均降低了谷子的發(fā)芽勢。在無NaCl脅迫的條件下，EBL3浸種處理（即 10^-8mol/L EBL處理）的谷子發(fā)芽勢較其他濃度EBL處理組高，但差異不顯著。在 50.100mmol/LNaCl 脅迫下，EBL2浸種處理（即 10^-9 mol/LEBL處理）的谷子發(fā)芽勢比其他濃度EBL處理組高，但差異均不顯著。在150mmol/LNaCl脅迫下，與EBLO浸種處理相比，隨EBL浸種濃度的上升，谷子發(fā)芽勢首先表現(xiàn)為升高趨勢，其中EBL2 浸種處理（即 10^-9mol/L EBL處理）的發(fā)芽勢達最高；隨著EBL浸種濃度進一步上升，谷子發(fā)芽勢降低；EBLO～EBL2浸種處理與EBL3、EBL4處理組相比，對谷子發(fā)芽勢的促進效果達到顯著水平（ Plt;0.05） 。在200mmol/LNaCl脅迫下，與EBLO浸種處理相比，EBL1 ～ EBL3浸種處理（即 10^-10～10^-8 mol/LEBL 處理）谷子的發(fā)芽勢均升高，EBL4浸種處理（即 10^-7 mol/LEBL 處理）的谷子發(fā)芽勢降低；在EBL2浸種處理（即 10^-9mol/L EBL處理）下，谷子發(fā)芽勢達到最大值，且與其他EBL處理組間均有顯著差異（ Plt;0. 05? 。在250mmol/LNaCl 脅迫下，與EBLO 浸種處理相比，隨著EBL浸種濃度的上升，谷子的發(fā)芽勢首先表現(xiàn)為升高趨勢，其中EBL2浸種處理（即 10^-9mol/L EBL處理）的谷子發(fā)芽勢達到最大值;隨著 EBL 浸種濃度進一步升高，谷子的發(fā)芽勢降低；在EBLO～EBL2 浸種處理（即 0.10^-10，10^-9 mol/L EBL 處理）下，與EBL3、EBL4處理組相比，對谷子的發(fā)芽勢均起到了促進效果。 300mmol/LNaC 脅迫下，各組EBL浸種處理均對谷子的發(fā)芽勢無顯著影響。

由圖2可知，隨著NaCl脅迫濃度的升高，各EBL浸種處理均降低了谷子的發(fā)芽率。在無NaCI脅迫處理下，EBL1浸種處理（即 10^-10mol/L EBL處理）的谷子發(fā)芽率高于其他EBL處理，但差異不顯著。在50mmol/LNaCl脅迫下，EBL2浸種處理（即 10^-9mol/L EBL 處理）的谷子發(fā)芽率高于其他濃度EBL處理，但差異不顯著。在100mmol/LNaCl 溶液處理下，各EBL浸種處理均對谷子發(fā)芽率無顯著影響。在 150mmol/LNaCl 脅迫下，EBL1＼～EBL3 浸種處理（即 10^-10～10^-8 mol/L EBL 處理）的谷子發(fā)芽率高于其他處理；在EBL2浸種處理（即10^-9mol/L EBL 處理）下，谷子的發(fā)芽率達到最大值；在EBL4浸種處理（即 10^-7 mol/L EBL 處理）下，谷子發(fā)芽率降低；EBL1 ～ EBL3處理組與EBL4處理組相比，對谷子發(fā)芽率的促進效果均達到顯著水平（ Plt;0.05， 。在 200mmol/LNa Cl脅迫下，與EBLO浸種處理相比，EBL1 ～ EBL3浸種處理（即10^-10～10^-8 mol/L EBL 處理）均可提高谷子的發(fā)芽率;在EBL4 浸種處理（即 10^-7 mol/L EBL 處理）下，谷子發(fā)芽率較其他處理降低；在EBL2浸種處理（即 10^-9mol/L EBL處理）下，谷子的發(fā)芽率達到最大值，且此處理與其他處理相比差異顯著（ Plt;

0.05），谷子發(fā)芽率分別比EBLO、EBL1、EBL3、EBL4處理組提高 32.76%.17.24%.12.07% 和 50.00% 0在 250mmol/LNaCl 脅迫下，與EBLO浸種處理相比，隨EBL浸種濃度的上升，谷子發(fā)芽率升高，EBL1、EBL2浸種處理（即 10^-10，10^-9 mol/L EBL 處理）谷子發(fā)芽率較其他處理差異顯著（ Plt;0.05） ，但這2組處理間差異不顯著；隨著EBL浸種濃度繼續(xù)上升，谷子發(fā)芽率降低，EBL3浸種處理（即10^-8mol/L EBL 處理）對谷子發(fā)芽率的抑制作用與EBLO處理相比差異不顯著，EBL4浸種處理（即10^-7 mol/LEBL 處理）較EBLO 處理顯著抑制了谷子發(fā)芽率（ Plt;0.05） 。在 300mmol/LNaCl 脅迫下，各EBL浸種處理均對谷子發(fā)芽率無顯著影響。

2.2不同處理對谷子胚根、胚軸長度的調(diào)控效應(yīng)

由圖3可知，隨著NaCl脅迫濃度的升高，各EBL浸種處理整體上降低了谷子萌發(fā)期間的胚根長度。在無NaCl脅迫處理下，各EBL浸種處理對谷子萌發(fā)期間的胚根長度無顯著影響。在50mmol/LNaCl脅迫處理下，EBL2浸種處理（即10^-9 mol/LEBL處理）谷子萌發(fā)期間的胚根長度較其他EBL處理組高（除EBLO浸種處理外），但差異不顯著。在 100mmol/LNaCl 脅迫下，EBL2浸種處理（即 10^-9mol/L EBL處理）谷子萌發(fā)期間的胚根長度大于其他EBL處理組，但差異不顯著。在150mmol/LNaCl 脅迫下，與EBLO浸種處理相比，EBL1 ～ EBL3 浸種處理（即 10^-10，10^-9，10^-8mol/L EBL處理）均增加了谷子萌發(fā)期間的胚根長度；在EBL2 浸種處理（即 10^-9 mol/L EBL 處理）下，谷子胚根長度達到最大值；與其他處理相比，EBL4浸種處理（即 10^-7mol/L EBL 處理）降低了谷子萌發(fā)期間的胚根長度。在200 mmol/L NaCl 脅迫下，與EBLO浸種處理相比，EBL1 ～ EBL3浸種處理（即

10^-10，10^-9，10^-8 mol/LEBL處理）均增加了谷子萌發(fā)期間的胚根長度；EBL4浸種處理（即 10^-7mol/L EBL處理）降低了谷子萌發(fā)期間的胚根長度；在EBL2 浸種處理（即 10^-9 mol/LEBL處理）下，谷子的胚根長度達到最大值，且此處理組與除EBL3處理組以外的其他處理組相比均有顯著差異（ Plt; 0.05）。在250mmol/LNaCl脅迫下，EBL2浸種處理（即 10^-9mol/L EBL 處理）谷子萌發(fā)期間的胚根長度高于其他EBL處理組，與EBL4浸種處理（即10^-7mol/L EBL處理）間差異顯著（ Plt;0.05， 。在300mmol/LNaCl脅迫下，EBL1EBL2浸種處理（即10^-10 、 10^-9 mol/LEBL處理）谷子萌發(fā)期間的胚根長度大于其他EBL處理，與EBL4浸種處理（即10^-7mol/L EBL處理）差異顯著（ （Plt;0.05） 。

由圖4可知，隨著NaCl脅迫濃度的升高，各EBL浸種處理整體上均降低了谷子萌發(fā)期間的胚軸長度。在無 NaCl 脅迫處理下，EBL3浸種處理（即 10^-8mol/L EBL處理）谷子萌發(fā)期間的胚軸長度大于其他EBL處理，但差異不顯著。在50mmol/LNaCl脅迫下，EBL2浸種處理（即 10^-9 mol/LEBL 處理）谷子萌發(fā)期間的胚軸長度大于其他EBL處理，但差異不顯著。在100mmol/LNaCl脅迫下，EBL2、EBL3浸種處理（即10^-9，10^-8 mol/LEBL處理）谷子萌發(fā)期間的胚軸長度大于其他EBL處理，但差異不顯著。在150、200mmol/LNaCl脅迫處理下，與EBLO浸種處理相比，EBL1 ～ EBL3浸種處理（即 10^-10 、 10^-9 、10^-8 mol/LEBL處理）谷子萌發(fā)期間的胚軸長度均增加，EBL4 浸種處理（即 10^-7 mol/L EBL 處理）谷子萌發(fā)期間的胚軸長度均降低；在EBL2浸種處理（即 10^-9 mol/LEBL處理）下，谷子胚軸長度均達到最大值，且各EBL浸種處理對谷子萌發(fā)期間的胚軸長度有不同程度的影響。在 250mmol/LNaCl 脅迫處理下，各EBL浸種處理對谷子萌發(fā)期間的胚軸長度無顯著影響。在 300mmol/LNaCl 脅迫下，EBL1浸種處理（即 10^-10mol/L EBL 處理）谷子萌發(fā)期間的胚軸長度較其他EBL處理組顯著增加（ （Plt;0.05） 。

由圖3圖4可知，在同一NaCl濃度脅迫下，隨著EBL浸種濃度的上升，谷子萌發(fā)期間胚根和胚軸長度均先上升后下降，且胚根長度的降低幅度比胚軸長度更明顯，即胚根比胚軸對鹽脅迫下EBL處理更敏感。

2.3不同處理組對谷子萌發(fā)后含水量的調(diào)控效應(yīng)

由圖5可知，隨著NaCl脅迫濃度的升高，各EBL浸種處理整體上均降低了谷子萌發(fā)后的含水量。在 0.50mmol/LNaC 1脅迫處理下，與EBLO浸種處理谷子萌發(fā)后的含水量最低，但不同處理間的差異不顯著;在EBL3浸種處理（ 10^-8mol/L EBL處理）下，萌發(fā)后含水量達到最大值。在 100mmol/L NaCl 脅迫下，與EBLO浸種處理相比，EBL2浸種處理（即 EBL處理）谷子萌發(fā)后的含水量提高，但變化不顯著。在 150mmol/LN; aCl脅迫處理下，與EBLO浸種處理相比，EBL1 ～ EBL3處理（即 10^-10，10^-9，10^-8 mol/L EBL 浸種處理）均增加了谷子萌發(fā)后的含水量，EBL4浸種處理（即10^-7molL EBL處理）降低了谷子萌發(fā)后的含水量，其中在EBL2 浸種處理（即 10^-9mol/L EBL處理）下，谷子萌發(fā)后的含水量達到最大值，并且此處理組與除EBL3外的其他處理組相比差異顯著（ Plt; 0.05）。在20Ommol/LNaCl脅迫下，與EBL0浸種處理相比，EBL1 ～ EBL3浸種處理（ 10^-10"～10^-8mol-L EBL處理）谷子萌發(fā)后的含水量均增加，EBL4浸種處理（即 10^-7mol/L EBL 處理）谷子萌發(fā)后的含水量較其他處理降低，其中EBL2浸種處理（即 10^-9 mol/LEBL處理）下的含水量達到最大值，且此處理與其他處理間的差異均顯著（ Plt; 0.05）。在2 5 0" 、 3 0 0 L脅迫下，EBL2浸種處理（即 10^-9mol/L EBL處理）谷子萌發(fā)后含水量整體上高于其他濃度EBL處理，但差異不顯著。

對以上試驗測得的谷子發(fā)芽勢、發(fā)芽率、萌發(fā)期間胚根長度、胚軸長度、萌發(fā)后的含水量等5個指標進行綜合分析，結(jié)果顯示，EBL2浸種處理（即10^-9mol/L EBL 處理）對20Ommol/LNaCl 脅迫下谷子萌發(fā)的影響最顯著。

2.4最佳處理對谷子丙二醛含量、抗氧化酶活性的影響

由圖6可知，NaCI脅迫處理下谷子萌發(fā)后的MDA含量（以谷子萌發(fā)后的鮮重為基礎(chǔ)計算，下同）表現(xiàn)出顯著增加的趨勢；與NaCl脅迫處理相比，在NaCl脅迫條件下用EBL2浸種的谷子MDA含量降低，差異達到顯著水平 （Plt;0.05） 。

由圖7、圖8可知，與對照組相比，EBL2浸種處理的萌發(fā)谷子的POD活性顯著上升（ Plt;0.05） ，而SOD 活性差異不顯著。在NaCl脅迫下，萌發(fā)谷子的2種酶活性均顯著上升；與 NaCl 脅迫相比，在NaCl脅迫條件下施用EBL2浸種處理的谷子SOD、POD活性均呈現(xiàn)顯著上升的趨勢（ Plt;0.05， 。

3結(jié)論與討論

本試驗過程中，不同濃度的NaCl脅迫均不同程度地抑制谷子的萌發(fā)效果，通過在 NaCl 脅迫前進行不同濃度的EBL浸種處理，對谷子萌發(fā)的影響呈現(xiàn)不同變化。在 0.50，100mmol/L 等低濃度NaCl脅迫下，施用不同濃度的EBL對谷子的發(fā)芽勢、發(fā)芽率、萌發(fā)期間胚根長度、胚軸長度、萌發(fā)后的含水量5個指標整體有一定的增加，但增加趨勢均不顯著；

在 150200L 等中等濃度NaCI脅迫下，施用不同濃度的EBL對谷子萌發(fā)情況呈現(xiàn)不同程度的影響。綜合分析可知， 10^-9mol/L EBL浸種處理對200mmol/LNaCl 脅迫下谷子萌發(fā)的促進效果最好；250mmol/L 高濃度NaCl脅迫下，施用不同濃度的EBL對谷子發(fā)芽勢、發(fā)芽率的影響有一定的差異，但對谷子萌發(fā)期間的胚軸長度以及萌發(fā)后的含水量均無顯著差異；在 300mmol/L 極高濃度NaCl脅迫下，施用不同濃度的EBL對谷子萌發(fā)情況影響均不大。對試驗所得的促進谷子萌發(fā)效果最好的NaCI濃度、EBL浸種濃度單獨作用于谷子，測定其丙二醛含量、超氧化物歧化酶和過氧化物酶活性，得出NaCl脅迫下，MDA含量較高，超氧化物歧化酶、過氧化物酶活性較低，而用EBL浸種處理后，MDA含量會降低，相應(yīng)的抗氧化物酶活性會升高。

范翠枝等做了不同濃度的油菜素內(nèi)酯浸種對不同濃度的NaCl脅迫番茄種子萌發(fā)的試驗，測定了番茄種子萌發(fā)期相應(yīng)抗氧化代謝指標，結(jié)果表明，10^-9 mol/L EBL浸種對150mmol/LNaCl脅迫下的番茄種子萌發(fā)效果最好，促進了SOD、POD活性的上升[20]。本試驗結(jié)果與上述研究結(jié)果[20]一致，本試驗結(jié)果得出的最適NaCI脅迫濃度與上述研究結(jié)果不一致，是由于不同物種對鹽的耐受性不同，谷子是耐鹽作物，耐鹽濃度比番茄高。趙旭慶等研究了不同NaCI脅迫、不同油菜素內(nèi)酯浸種對鹽溶液處理下黑果枸杞種子萌發(fā)的影響，發(fā)現(xiàn)低濃度的NaCl能促進種子的萌發(fā)，高濃度處理則會抑制種子萌發(fā)；適宜濃度EBL浸種能促進種子萌發(fā)，但濃度過高時可能會有抑制作用； 0.05mg/L EBL對促進其種子萌發(fā)效果最明顯[2I]。本試驗結(jié)果與上述研究結(jié)果存在不一致的地方，本試驗得出，低濃度的NaCl對谷子萌發(fā)沒有表現(xiàn)出顯著的促進或抑制效應(yīng)，可能是由于不同物種對低濃度NaCl脅迫的反應(yīng)不同或配制的NaCI溶液濃度不同導(dǎo)致結(jié)論不同，具體的原因值得后續(xù)進一步研究。

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