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        人參皂苷Rb3 調(diào)節(jié)磷酸化細(xì)胞外信號(hào)調(diào)節(jié)激酶通路減輕牙周炎大鼠炎癥反應(yīng)促進(jìn)成骨

        2025-04-11 00:00:00張雪穎孟鑫劉志臻張康冀洪海孫敏敏
        華西口腔醫(yī)學(xué)雜志 2025年2期

        [摘要] 目的 探究人參皂苷Rb3 (Rb3) 在牙周炎癥環(huán)境中對(duì)成骨的促進(jìn)作用,并闡述其機(jī)制。方法 組織塊法培養(yǎng)人牙周膜干細(xì)胞(hPDLSCs),通過流式細(xì)胞術(shù)進(jìn)行細(xì)胞干性鑒定。細(xì)胞計(jì)數(shù)試劑盒(CCK-8)、鈣黃綠素乙酰氧基甲酯(Calcein-AM) 與碘化丙啶(PI) 檢測(cè)Rb3 對(duì)hPDLSCs 活力的影響。體外細(xì)胞實(shí)驗(yàn)分組:對(duì)照組、10 μg/mL 脂多糖(LPS) 組、10 μg/mL LPS+100 μmol/L Rb3 組和10 μg/mL LPS+200 μmol/L Rb3 組。堿性磷酸酶(ALP) 染色檢測(cè)成骨誘導(dǎo)后各組hPDLSCs 的ALP 活性。定量逆轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈反應(yīng)(qRT-PCR) 法檢測(cè)成骨誘導(dǎo)后各組hPDLSCs 中白細(xì)胞介素-6 (IL-6)、白細(xì)胞介素-8 (IL-8)、runt 相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子2 (RUNX2)、轉(zhuǎn)化生長因子-β (TGF-β) 基因的表達(dá)情況。蛋白質(zhì)免疫印跡(Western blot) 檢測(cè)各組hPDLSCs 內(nèi)磷酸化細(xì)胞外信號(hào)調(diào)節(jié)激酶(p-ERK) 相關(guān)蛋白表達(dá)情況。Sprague-Dawley 大鼠隨機(jī)分為對(duì)照組、結(jié)扎組、結(jié)扎+Rb3 組。對(duì)左側(cè)磨牙-上頜骨組織行顯微計(jì)算機(jī)斷層掃描(micro-CT) 檢測(cè);檢測(cè)完成后,將左側(cè)磨牙-上頜骨制作牙周組織切片。蘇木精-伊紅(HE) 染色檢測(cè)炎細(xì)胞浸潤、附著喪失情況。馬松(Masson) 染色檢測(cè)牙齦膠原纖維的破壞情況。免疫熒光染色檢測(cè)RUNX2 蛋白、p-ERK蛋白表達(dá)情況。qRT-PCR 法檢測(cè)大鼠牙齦組織中TGF-β 的表達(dá)情況。酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(ELISA) 檢測(cè)大鼠外周血清IL-6 蛋白表達(dá)情況。大鼠心臟血行流式細(xì)胞術(shù),檢測(cè)Treg細(xì)胞占比。采用GraphPad Prism 10.1.2 軟件對(duì)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。結(jié)果 Rb3 對(duì)hPDLSCs 活性無影響。hPDLSCs 成骨誘導(dǎo)后的qRT-PCR與ALP 染色結(jié)果顯示Rb3 可抑制炎癥性hPDLSCs 內(nèi)IL-6、IL-8 基因表達(dá),促進(jìn)TGF-β 基因表達(dá),同時(shí)促進(jìn)炎癥性hPDLSCs 成骨分化。Western blot 結(jié)果顯示Rb3 抑制炎癥性hPDLSCs p-ERK蛋白表達(dá)。micro-CT、Masson 染色、HE染色結(jié)果顯示Rb3 可促進(jìn)牙周炎大鼠牙槽骨的形成,同時(shí)抑制牙周纖維組織破壞、附著喪失及炎癥細(xì)胞浸潤。流式細(xì)胞術(shù)結(jié)果顯示Rb3 可促進(jìn)牙周炎大鼠外周血Treg 細(xì)胞分化。ELISA與qRT-PCR結(jié)果顯示Rb3 可抑制牙周炎大鼠IL-6 蛋白表達(dá),促進(jìn)TGF-β 基因表達(dá)。免疫熒光結(jié)果顯示Rb3 可促進(jìn)牙周炎大鼠RUNX2 蛋白表達(dá),抑制p-ERK蛋白表達(dá)。結(jié)論 Rb3 可能通過調(diào)控p-ERK通路減輕牙周炎大鼠牙周組織炎癥反應(yīng),并促進(jìn)hPDLSCs 成骨分化。

        [關(guān)鍵詞] 人參皂苷Rb3; 磷酸化細(xì)胞外信號(hào)調(diào)節(jié)激酶; 成骨分化; 牙周炎;牙槽骨吸收

        [中圖分類號(hào)] R781.4 [文獻(xiàn)標(biāo)志碼] A [doi] 10.7518/hxkq.2025.2024393

        牙周炎是由牙菌斑生物膜引起,發(fā)生在易感宿主牙周組織中的慢性炎癥性疾病,造成骨吸收與骨形成之間的失衡,臨床表現(xiàn)為牙齦出血、牙周附著喪失、牙槽骨吸收,進(jìn)而引起牙齒松動(dòng)脫落,嚴(yán)重影響患者的生活質(zhì)量[1-2]。目前牙周炎的治療方法主要通過清除菌斑生物膜來控制牙周炎癥,然而,單純的物理治療手段在調(diào)控易感宿主免疫炎癥反應(yīng)方面效果不佳,難以實(shí)現(xiàn)牙周組織的再生。

        人參皂苷Rb3 (ginsenoside Rb3,Rb3) 是人參的主要活性成分之一,研究[3]發(fā)現(xiàn),Rb3 在減輕炎癥、調(diào)控免疫功能方面具有明顯功效。前期研究[4]發(fā)現(xiàn),Rb3具有顯著的抗炎和抗破骨作用,Rb3通過調(diào)控絲裂原活化蛋白激酶(mitogen-activatedprotein kinase,MAPK) 信號(hào)通路,抑制脂多糖(lipopolysaccharides,LPS) 引起的人牙周膜干細(xì)胞(human periodontal ligament stem cells,hPDLSCs)促炎因子白細(xì)胞介素(interleukin,IL) -6、IL-8、IL-1β 的表達(dá);并通過調(diào)控MAPK通路中的外源性信號(hào)調(diào)節(jié)激酶(extracellular signal-regula-ted kinase,ERK) 的活化,抑制破骨細(xì)胞分化。

        hPDLSCs 是來自牙周組織的一種間充質(zhì)干細(xì)胞,具有成骨分化能力,是牙周組織再生及免疫調(diào)節(jié)過程中發(fā)揮關(guān)鍵作用的種子細(xì)胞[5]。然而,在牙周炎癥條件下,hPDLSCs 的成骨分化能力受到抑制[6]。因此需要一種合適的藥物能夠調(diào)控易感宿主的免疫炎癥反應(yīng),促進(jìn)炎癥條件下hPDLSCs 的成骨分化能力。MAPK 通路是一種經(jīng)典的信號(hào)傳遞通路,可調(diào)控細(xì)胞凋亡、炎癥反應(yīng)及氧化應(yīng)激等生物活動(dòng)[7-8]。牙周組織在病原微生物侵襲下會(huì)引發(fā)體內(nèi)的免疫應(yīng)答反應(yīng),進(jìn)而激活MAPK 通路發(fā)揮免疫防御反應(yīng),包括ERK、p38 絲裂原活化蛋白激酶和c-Jun 氨基末端激酶(c-Jun N-terminal kinase,JNK) 發(fā)揮免疫防御作用。早期研究[9]表明,適度的免疫防御情況下,ERK 通路蛋白磷酸化后將激活骨形成過程中的關(guān)鍵因子runt 相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子2 (runt-related transcription factor 2,RUNX2) 磷酸化,促進(jìn)骨形成。近年來研究[10-11]發(fā)現(xiàn),炎癥條件下激活的MAPK 通路將抑制堿性磷酸酶(alkalinephosphatase,ALP) 活性,降低RUNX2 表達(dá),進(jìn)而抑制成骨。本實(shí)驗(yàn)通過體外實(shí)驗(yàn)探討了Rb3是否在炎癥條件下促進(jìn)hPDLSCs 成骨,通過體內(nèi)實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證Rb3 對(duì)牙周結(jié)扎誘導(dǎo)的大鼠牙周炎的治療效果,并進(jìn)一步檢測(cè)了相關(guān)信號(hào)通路RUNX2 蛋白和磷酸化細(xì)胞外信號(hào)調(diào)節(jié)激酶(phosphorrylatedextracellular signal-regulated kinase, p-ERK) 在牙周組織中的表達(dá)情況。

        1 材料和方法

        1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物、試劑和儀器

        實(shí)驗(yàn)通過了山東第二醫(yī)科大學(xué)動(dòng)物倫理委員會(huì)審查(審查編號(hào):2021SDL488)。SPF 級(jí)Sprague-Dawley (SD) 雄性大鼠30 只,4 周齡,體質(zhì)量(200±20) g,由濟(jì)南朋悅實(shí)驗(yàn)動(dòng)物繁育有限公司提供。所有大鼠于標(biāo)準(zhǔn)飼養(yǎng)條件下適應(yīng)性飼養(yǎng)1周后用于實(shí)驗(yàn)。

        青-鏈霉素、Ficoll-PaqueTM PREMIUM密度梯度離心介質(zhì)(思拓凡生物科技有限公司,美國),磷酸鹽緩沖液(phosphate buffer saline,PBS)、維生素C、β-甘油磷酸鈉、地塞米松、茜素紅S 染色液、5-溴-4-氯-3-吲哚基-磷酸鹽(5-bromo-4-chloro-3-indolyl phosphate,BCIP) 與硝基藍(lán)四氮唑(nitrotetrazoliumblue chloride,NBT) 底物顯色試劑盒、抗熒光衰減封片劑(含4’ , 6-diamidino-2-phenylindole,DAPI)、羊抗兔免疫球蛋白G (immunoglobulinG,IgG) -異硫氰酸熒光素(fluoresceinisothiocyanate,F(xiàn)ITC)、羊抗小鼠IgG-FITC、二喹啉甲酸(bicinchoninic acid,BCA) 蛋白定量試劑盒(北京索萊寶科技有限公司),異戊巴比妥(Aspen公司,南非共和國),細(xì)胞計(jì)數(shù)試劑盒(cellcounting kit-8,CCK-8)、鈣黃綠素乙酰氧基甲酯(calcein acetoxymethyl ester,Calcein-AM) 和碘化丙啶(propidium Iodide,PI) 細(xì)胞活性與細(xì)胞毒性檢測(cè)試劑盒、4%多聚甲醛固定液(上海碧云天生物技術(shù)有限公司),F(xiàn)ITC Anti-分化簇4 (cluster ofdifferentiation 4,CD4) 抗體(Biolegend 公司,美國),別藻藍(lán)蛋白(allophycocyanin,APC) Anti-分化簇25 (cluster of differentiation 25,CD25) 抗體、藻紅蛋白(p-phycoerythrin,PE) Anti-轉(zhuǎn)錄因子叉頭蛋白(forkheadbox protein 3,F(xiàn)OXP3) 抗體、最低必需培養(yǎng)基(minimum essential mdeiumα,α-MEM)(上海賽默飛世爾科技公司),F(xiàn)ix amp;Perm Kit 固定破膜劑(杭州聯(lián)科生物技術(shù)有限公司),超純RNA提取試劑盒(泰州康為世紀(jì)生物科技有限公司),第三代qPCR 專用逆轉(zhuǎn)錄預(yù)混液、通用型高靈敏度染料法定量PCR 檢測(cè)試劑盒(南京諾唯贊生物科技有限公司),Anti-RUNX2 抗體(Abcam 公司,英國)、ERK 抗體、p-ERK 抗體、辣根過氧化物酶二抗(CST 生物公司,美國),甘油醛-3- 磷酸脫氫酶(glyceraldehyde-3-phosphatedehydrogenase,GAPDH) 偶聯(lián)抗體(湖北普美生物科技有限公司),酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(enzymelinked immunosorbent assay,ELISA) 試劑盒(深圳欣博勝生物科技有限公司),Tris 緩沖鹽Tween洗滌緩沖液(tris saline with tween,TBST)(安徽白鯊生物公司)。

        Supermax 3100 型酶標(biāo)儀(北京閃譜科技公司),Pannoramic MIDI 型病理切片掃描儀(3DHISTECH公司,匈牙利),JY-300E 型PCR儀(江蘇諾米醫(yī)療科技公司),Discovery V12 型體式顯微鏡(蔡司公司,美國),C6plus 型流式細(xì)胞儀(BD公司,美國),F(xiàn)C-3100 核酸蛋白分析儀(杭州遂真生物技術(shù)有限公司),Skyscan1172 高分辨顯微CT掃描儀(Bruker 公司,美國),NIB610 倒置顯微鏡(寧波永新光學(xué)股份有限公司)。

        1.2 hPDLSCs 原代培養(yǎng)及鑒定

        選取山東第二醫(yī)科大學(xué)附屬醫(yī)院口腔科因正畸需要拔除的無齲壞、無牙周炎癥的健康前磨牙及無咬合功能的、無齲壞、無牙周炎癥的智齒。牙齒來自18~25 歲健康成年人。PBS 反復(fù)清洗去除血漬,用刀片刮取牙根中1/3 牙周膜,切碎后于25 cm2 密封蓋細(xì)胞培養(yǎng)瓶中培養(yǎng)。培養(yǎng)瓶中加入5 mL血清濃度為20%的α-MEM培養(yǎng)基。7~10 d 后原代hPDLSCs 從組織塊邊緣爬出,待其生長密度達(dá)80%后用胰酶消化傳代培養(yǎng)。本實(shí)驗(yàn)采用第3 代到第5 代hPDLSCs。

        第3 代hPDLSCs 消化后PBS 重懸,濃度調(diào)整為1×106個(gè)/mL。每個(gè)EP 管中加入200 μL細(xì)胞懸液后分別加入FITC-CD105 抗體、FITC-CD90 抗體、FITC-CD14 抗體和PE-CD73 抗體。細(xì)胞避光孵育后重懸,上機(jī)檢測(cè)。

        1.3 CCK-8 檢測(cè)

        實(shí)驗(yàn)分組為: 對(duì)照組、50 μmol/L Rb3 組、100 μmol/L Rb3 組、200 μmol/L Rb3 組、400 μmol/LRb3組,每組設(shè)置6個(gè)復(fù)孔。將hPDLSCs(5 000個(gè)/孔)均勻接種于96 孔板中,待細(xì)胞貼壁后,按照實(shí)驗(yàn)分組加入不同濃度的Rb3。5%CO2、37 ℃細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)48 h,然后每孔加入10 μL CC-K8 試劑繼續(xù)孵育1 h,最后用Supermax 3100 酶標(biāo)儀檢測(cè)每孔450 nm波長的吸光度值。

        1.4 Calcein/PI 細(xì)胞活性與細(xì)胞毒性檢測(cè)

        將hPDLSCs (40 000 個(gè)/孔) 接種于24孔板中,分組及細(xì)胞培養(yǎng)方法同1.3。48 h后終止培養(yǎng),PBS洗滌。每孔加入250 μL Calcein-AM/PI 檢測(cè)工作液,避光孵育后于NIB610 倒置顯微鏡下觀察并采集圖像。

        1.5 ALP 染色

        成骨誘導(dǎo)液配置:5 mg/mL 抗壞血酸500 μL、10 mmol/L β-甘油磷酸鈉 500 μL、10 μmol/L 地塞米松250 μL 加至50 mL 血清濃度為10%的α-MEM培養(yǎng)基中。

        實(shí)驗(yàn)分組: 對(duì)照組、10 μg/mL LPS 組、10 μg/mL LPS+100 μmol/L Rb3 組、10 μg/mL LPS+200 μmol/L Rb3 組。將hPDLSCs (2×105個(gè)/孔) 均勻接種于6 孔板中,藥物組首先加入Rb3 預(yù)處理2 h,然后加入10 μg/mL LPS,培養(yǎng)24 h 后更換為成骨誘導(dǎo)液,之后每3 d 更換新鮮的成骨誘導(dǎo)液,其中加入10 μg/mL LPS 和相應(yīng)濃度的Rb3。

        染色:7 d 后棄成骨誘導(dǎo)液,PBS 洗滌,多聚甲醛固定30 min。PBS 洗滌后, 每孔加入1 mLBCIP/NBT 底物顯色試劑工作液,室溫避光下孵育30 min,Discovery V12 型體式顯微鏡下觀察并采集圖像,圖像處理軟件Image J 測(cè)量其著色面積并進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。

        1.6 茜素紅染色

        成骨誘導(dǎo)配置同實(shí)驗(yàn)方法1.5。21 d 后棄成骨誘導(dǎo)液,PBS 洗滌,多聚甲醛固定30 min。1%茜素紅S 染色液染色5 min,無酶水輕輕洗滌3 次后于Discovery V12 型體式顯微鏡下觀察著色鈣化結(jié)節(jié)。

        1.7 蛋白質(zhì)免疫印跡(Western blot)

        實(shí)驗(yàn)分組及預(yù)處理同實(shí)驗(yàn)方法1.5。7 d 后棄成骨誘導(dǎo)液,細(xì)胞于4 ℃裂解、離心收集蛋白樣品。采用BCA法測(cè)定蛋白濃度并調(diào)整至2 μg/μL,每組上樣20 μg,電泳后轉(zhuǎn)膜至聚偏二氟乙烯膜(polyvinylidenefluoride,PVDF)。PVDF 膜孵育p-ERK、ERK、GAPDH 一抗4 ℃孵育過夜,隨后孵育二抗1 h,顯色后使用FC-3100 核酸蛋白分析儀進(jìn)行顯影。

        1.8 定量逆轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈反應(yīng)(quantitative reversetranscription polymerase chain reaction,qRTPCR)

        大鼠牙齦組織及成骨誘導(dǎo)后的hPDLSCs 通過RNA 提取試劑盒提取總RNA,然后用HiScript ⅢRT SuperMix逆轉(zhuǎn)錄試劑盒合成cDNA。根據(jù)Cham-Q SYBR qPCR Master Mix (low ROX Premixed)說明書配置PCR 擴(kuò)增體系。PCR 反應(yīng)程序設(shè)置如下:95 ℃預(yù)變性30 s;95 ℃變性10 s,60 ℃退火/延伸30 s,共40 個(gè)循環(huán);最后進(jìn)行溶解曲線分析,條件為95 ℃ 15 s,60 ℃ 60 s,95 ℃ 15 s。2?△△CT計(jì)算各基因的表達(dá)量。本次實(shí)驗(yàn)采用的基因引物序列見表1。

        1.9 大鼠牙周炎模型建立

        將SD 大鼠隨機(jī)分為3 組:對(duì)照組、結(jié)扎組、結(jié)扎+Rb3 組。3%異戊巴比妥鈉腹腔注射麻醉后,使用4-0 絲線結(jié)扎大鼠左側(cè)上頜第一磨牙,每2 d檢查結(jié)扎絲線是否脫落。結(jié)扎后2 d,用生理鹽水配置100 μmol/L Rb3,對(duì)結(jié)扎+Rb3 組大鼠進(jìn)行腹腔注射Rb3 1 mL,每2 d 給藥1 次,同時(shí)給對(duì)照組及結(jié)扎組大鼠注射等體積的生理鹽水。4 周后,3組大鼠注射過量3% 異戊巴比妥鈉安樂死,收集樣本。

        1.10 顯微計(jì)算機(jī)斷層掃描技術(shù)(micro-computedtomography,micro-CT)

        收集大鼠左側(cè)上頜牙齒-牙槽骨聯(lián)合標(biāo)本,多聚甲醛固定48 h 后,PBS 反復(fù)洗滌。Skyscan 1172高分辨顯微CT 掃描儀進(jìn)行掃描和分析。圖像處理軟件Image J 測(cè)量第一磨牙和第二磨牙之間釉牙骨質(zhì)界(cementoenamel junction,CEJ) 至牙槽嵴頂(alveolar crest,AC) 的距離并進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。

        1.11 牙周組織染色

        石蠟切片制作:左側(cè)上頜完整剝離后固定于4%多聚甲醛中48 h 后PBS 反復(fù)洗滌去除多余的甲醛固定液。組織依次經(jīng)30%~100%梯度乙醇脫水硬化后,進(jìn)行透明化處理,隨后浸蠟并石蠟包埋,最后連續(xù)切片,厚度控制在4~7 μm。蠟片附著于載玻片后于烘干箱中干燥。

        Masson 染色:石蠟切片經(jīng)脫蠟處理后,依次浸入100%~70%梯度乙醇中進(jìn)行水化預(yù)處理。隨后依次浸染于蘇木素溶液、麗春紅酸性品紅液、磷鉬酸水、苯胺藍(lán)液中。染色完成的切片脫水透明化后封片。顯微鏡下觀察膠原纖維的著色情況,圖像處理軟件Image J 測(cè)量其面積并進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。

        HE 染色:石蠟切片預(yù)處理同上,后浸入蘇木素、伊紅染液中,流水沖洗后脫水封片。

        1.12 免疫熒光

        切片預(yù)處理同方法1.11。標(biāo)記切片目標(biāo)區(qū)域后,經(jīng)胃蛋白酶修復(fù),隨后進(jìn)行破膜封閉處理,并于4 ℃下孵育RUNX2、p-ERK一抗體過夜。次日,切片洗滌后孵育羊抗小鼠IgG-FITC 二抗,再次洗滌后滴加抗熒光衰減封片劑,最后在NIB610倒置顯微鏡下拍攝并采集圖像。

        1.13 酶聯(lián)免疫吸附分析(enzyme-linked immunosorbentassay,ELISA)

        大鼠心臟血離心、取上層血清。按照IL-6ELISA 試劑盒中的說明書配置標(biāo)準(zhǔn)品、稀釋液。按照實(shí)驗(yàn)要求將稀釋液、標(biāo)準(zhǔn)品加入孔板中,每組設(shè)置3 個(gè)復(fù)孔。處理好的孔板避光孵育洗滌后,加入配置好的生物素化抗體稀釋液及生物素化抗體工作液,再次避光孵育洗滌??装宓目瞻卓准按郎y(cè)孔中分別加入酶結(jié)合物稀釋液與酶結(jié)合物工作液,避光孵育洗滌??装逯屑尤腼@色底物,避光孵育后加入反應(yīng)終止液,Supermax 3100 型酶標(biāo)儀檢測(cè)。

        1.14 流式細(xì)胞術(shù)

        15 mL 離心管中加入2 mL 大鼠心臟血、2 mLFicoll 溶液,水平梯度離心后取中間白膜層單核細(xì)胞。細(xì)胞濃度調(diào)整至(0.5~1.0) ×106/mL,取1 mL細(xì)胞懸液于EP 管中,加入FITC-CD4 抗體、APCCD25抗體,避光孵育后依次破胞膜及核膜,加入PE-FOXP3 抗體。PBS 洗滌重懸,上機(jī)檢測(cè)。

        1.15 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

        實(shí)驗(yàn)結(jié)果采用GraphPad Prism 10.1.2 軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,數(shù)據(jù)用均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示,組間差異采用單因素方差分析,Plt;0.05 表示差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 hPDLSCs 培養(yǎng)鑒定及Rb3 對(duì)其活力的影響

        培養(yǎng)1 周后細(xì)胞從牙周膜組織塊中爬出,呈長梭形(圖1A);ALP 染色及茜素紅染色表明該細(xì)胞具有成骨分化能力(圖1B、C);流式細(xì)胞術(shù)結(jié)果顯示該細(xì)胞高表達(dá)CD105、CD90、CD73,低表達(dá)CD14 (圖1D)。以上結(jié)果說明該細(xì)胞為hPDLSCs。

        CCK8 及Calcein-AM/PI 染色結(jié)果顯示,Rb3濃度不超過400 μmol/L 時(shí),對(duì)hPDLSCs 的細(xì)胞活力無影響(圖1E、F)。

        2.2 Rb3 抑制hPDLSCs 內(nèi)炎癥基因表達(dá),促進(jìn)炎性hPDLSCs 成骨

        qRT-PCR 結(jié)果顯示(圖2),10 μg/mL LPS 刺激引起hPDLSCs 的炎癥反應(yīng),相比對(duì)照組,促炎基因IL-6、IL-8 表達(dá)顯著升高、抗炎基因TGF-β 表達(dá)降低。同時(shí)10 μg/mL LPS 抑制了早期成骨指標(biāo)RUNX2 基因表達(dá)。Rb3 明顯改善LPS 引起的炎癥反應(yīng),相比10 μg/mL LPS 組,顯著抑制IL-6 基因、IL-8 基因表達(dá),并促進(jìn)TGF-β 基因和RUNX2 基因表達(dá)(圖2A)。

        ALP染色結(jié)果顯示,與對(duì)照組相比,10 μg/mLLPS 組的hPDLSCs 中ALP 表達(dá)下降;然而,在10 μg/mL LPS 條件下加入Rb3 后,ALP 表達(dá)呈現(xiàn)劑量依賴性增加(圖2B、C)。

        2.3 Rb3 治療促進(jìn)牙周炎大鼠牙槽骨形成

        本實(shí)驗(yàn)通過結(jié)扎法建立實(shí)驗(yàn)性大鼠牙周炎模型,絲線結(jié)扎部位為上頜左側(cè)第一磨牙。micro-CT 影像分析顯示(圖3A,舌側(cè)),對(duì)照組第一磨牙與第二磨牙之間的牙槽骨未見明顯吸收,而結(jié)扎組的牙槽骨吸收至根尖1/3,結(jié)扎+Rb3 組的牙槽骨吸收至根中1/3。對(duì)3 組大鼠垂直切面第一磨牙與第二磨牙之間CEJ-AC的距離進(jìn)行測(cè)量分析(圖3A,垂直切面),結(jié)果顯示結(jié)扎組大鼠CEJ-AC 距離顯著大于對(duì)照組,而結(jié)扎+Rb3 組大鼠CEJ-AC距離較單純結(jié)扎組明顯減?。▓D3B)。

        Masson 染色及定量分析結(jié)果顯示,結(jié)扎組大鼠牙周組織膠原纖維相比對(duì)照組有明顯破壞,而相較結(jié)扎組,結(jié)扎+Rb3 組大鼠牙周組織膠原纖維的破壞程度明顯減輕(圖3C、D)。

        2.4 Rb3 治療促進(jìn)牙周炎大鼠Treg 細(xì)胞分化,減輕牙周組織炎癥反應(yīng)

        FITC-CD4 抗體、APC-CD25 抗體、PE-FOXP3抗體對(duì)大鼠外周血中的Treg 細(xì)胞進(jìn)行共定位。流式細(xì)胞術(shù)結(jié)果顯示,結(jié)扎組中Treg 細(xì)胞分化減少,結(jié)扎+Rb3 組中Treg 細(xì)胞分化增加(圖4A)。HE染色結(jié)果顯示,結(jié)扎組相比對(duì)照組,結(jié)合上皮離開CEJ 向根方移位,表明附著喪失程度加重。與結(jié)扎組相比,結(jié)扎+Rb3 組大鼠結(jié)合上皮根方移位的距離明顯減小,表明牙周附著喪失得到改善。此外,HE 染色結(jié)果顯示,相比于對(duì)照組,結(jié)扎組大鼠牙齦上皮下有明顯的炎細(xì)胞浸潤,而結(jié)扎+Rb3 組牙齦組織中炎細(xì)胞浸潤程度減輕(圖4B)。

        ELISA 與qRT-PCR 結(jié)果進(jìn)一步表明:與對(duì)照組相比,結(jié)扎組大鼠牙齦組中IL-6 蛋白表達(dá)顯著升高,TGF-β 基因表達(dá)顯著降低;而Rb3 治療可降低牙周炎大鼠牙齦組織中IL-6 蛋白的表達(dá),促進(jìn)TGF-β 基因表達(dá)(圖4C、D)。

        2.5 Rb3 治療上調(diào)RUNX2 蛋白表達(dá),抑制p-ERK蛋白活化

        本實(shí)驗(yàn)通過免疫熒光染色檢測(cè)牙周組織中RUNX2 蛋白、p-ERK 蛋白的表達(dá)情況。結(jié)果顯示, 同對(duì)照組相比, 結(jié)扎組大鼠牙周組織中RUNX2 蛋白的表達(dá)明顯降低; 而結(jié)扎+Rb3 組RUNX2 蛋白的表達(dá)較結(jié)扎組明顯增加(圖5A)。同時(shí),結(jié)扎組大鼠牙周組織中p-ERK 蛋白的表達(dá)水平較對(duì)照組顯著增高,而結(jié)扎+Rb3 組中p-ERK蛋白的表達(dá)較結(jié)扎組顯著降低(圖5B)。Westernblot 結(jié)果顯示,10 μg/mL LPS 組p-ERK蛋白表達(dá)水平相比對(duì)照組顯著升高,加入Rb3 后p-ERK 蛋白表達(dá)水平呈劑量依賴性顯著降低(圖5C、D)。

        3 討論

        牙周炎的致病機(jī)制涉及牙齦卟啉單胞菌(Porphyromonasgingivalis,P. gingivalis),該菌種的LPS、菌毛及蛋白酶等成分促進(jìn)菌群生長與增殖[12]。本實(shí)驗(yàn)利用P. gingivalis LPS 作為誘導(dǎo)劑,探討其對(duì)hPDLSCs 炎癥反應(yīng)的影響。既往研究[13]顯示P.gingivalis LPS 能夠有效促進(jìn)IL-8 與IL-6 的分泌。IL-8 通過募集炎癥區(qū)域中性粒細(xì)胞,加速牙周炎癥進(jìn)展。IL-6 促進(jìn)輔助性T 細(xì)胞Th17 分化,進(jìn)而加速牙周組織附著能力喪失及牙槽骨吸收[14-15]。

        因此,IL-6 與IL-8 可作為評(píng)估牙周炎癥嚴(yán)重程度的關(guān)鍵促炎因子。TGF-β 轉(zhuǎn)錄因子通過調(diào)控其下游信號(hào)分子Smad 蛋白,進(jìn)而促進(jìn)hPDLSCs 增殖與分化[16-17]。Treg 細(xì)胞通過分泌包括TGF-β 在內(nèi)的抗炎細(xì)胞因子,促進(jìn)牙齦成纖維細(xì)胞的活化,有利于牙槽骨的再生[18-19]。研究[20]表明,作為免疫抑制因子的TGF-β 在炎癥狀態(tài)下表達(dá)水平會(huì)受到抑制。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果驗(yàn)證了上述結(jié)論,即在炎癥條件下,IL-6 與IL-8 基因表達(dá)上調(diào),TGF-β 基因表達(dá)下調(diào)。

        本實(shí)驗(yàn)通過結(jié)扎上頜第一磨牙的方法建立大鼠牙周炎模型,該方法已被研究[21]證實(shí)操作簡便且能有效誘導(dǎo)牙周炎。實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,結(jié)扎4 周后,大鼠上頜第一磨牙牙齦組織出現(xiàn)明顯紅腫,探診時(shí)伴有出血癥狀。HE 染色進(jìn)一步表明,牙齦上皮下存在廣泛的炎癥細(xì)胞浸潤,且附著喪失程度顯著增加,提示大鼠牙齦炎癥明顯。micro-CT掃描顯示,結(jié)扎組大鼠牙槽骨吸收至根尖1/3 區(qū)域,Masson 染色結(jié)果證實(shí)牙周膠原纖維結(jié)構(gòu)破壞,表明已形成重度牙周炎。此外,對(duì)外周血的分析顯示,牙周炎大鼠Treg 細(xì)胞分化數(shù)量顯著減少,TGF-β 基因表達(dá)水平明顯降低,而IL-6 蛋白分泌量顯著增加。這些結(jié)果與體外細(xì)胞實(shí)驗(yàn)結(jié)果一致,進(jìn)一步驗(yàn)證了炎癥狀態(tài)下TGF-β 抑制及IL-6 升高的病理特征。

        在本項(xiàng)研究中初步評(píng)估了LPS 誘導(dǎo)的炎癥微環(huán)境對(duì)hPDLSCs 成骨分化的影響。實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,LPS 處理的hPDLSCs 的ALP 活性顯著降低,且qRT-PCR 檢測(cè)到RUNX2 基因表達(dá)下降,表明炎癥條件下hPDLSCs 成骨分化能力受到抑制。近年研究[22]表明,hPDLSCs 具有顯著的牙周組織修復(fù)的潛能,其分泌的外泌體能夠有效促進(jìn)細(xì)胞的成骨分化,有利于牙周組織的修復(fù)再生。然而,牙菌斑內(nèi)的病原體能夠激活牙周組織的免疫反應(yīng),導(dǎo)致炎癥因子的過度表達(dá),抑制hPDLSCs 成骨分化[23]。研究[24]表明,ALP、RUNX2 等生物標(biāo)志物在成骨分化早期有著重要意義。Nagasaki 等[25]發(fā)現(xiàn),ALP 作為成骨分化的早期關(guān)鍵標(biāo)志,通過水解焦磷酸鹽生成無機(jī)磷酸鹽,促進(jìn)了細(xì)胞礦化及牙周組織再生。Bronckers 等[26]研究發(fā)現(xiàn),RUNX2轉(zhuǎn)錄因子在成釉器、牙乳頭以及牙囊細(xì)胞中均有表達(dá),參與牙齒及牙槽骨發(fā)育。近期,Xu 等[27]的研究進(jìn)一步指出,RUNX2 表達(dá)減低會(huì)導(dǎo)致結(jié)合上皮及牙槽骨結(jié)構(gòu)的顯著缺損。

        牙周炎的有效治療策略在于控制炎癥進(jìn)展并促進(jìn)成骨以實(shí)現(xiàn)牙周組織再生。前期研究[3-4]證實(shí),Rb3 能夠通過抗炎及抑制破骨作用有效控制牙周炎癥進(jìn)展。本研究探討了Rb3 對(duì)炎癥性hPDL-SCs 成骨分化的影響。結(jié)果顯示,Rb3 處理后,炎癥性hPDLSCs 在成骨誘導(dǎo)過程中TGF-β 基因顯著上調(diào),IL-6、IL-8 基因表達(dá)降低。此外,ALP 染色表明Rb3 能夠增強(qiáng)10 μg/mL LPS 條件下hPDLSCs 的ALP 活性,并且通過qRT-PCR 進(jìn)一步檢測(cè)到Rb3處理后的炎癥性hPDLSCs 中RUNX2 基因表達(dá)上調(diào)。這些結(jié)果表明,Rb3 可能通過調(diào)節(jié)關(guān)鍵信號(hào)通路和炎癥因子表達(dá)來促進(jìn)炎癥性hPDLSCs 的成骨分化。動(dòng)物實(shí)驗(yàn)進(jìn)一步驗(yàn)證,Rb3 治療能夠改善牙周炎癥并抑制牙槽骨吸收。

        為更深入探究Rb3 在調(diào)控牙周炎癥進(jìn)程及促進(jìn)成骨分化方面的潛在機(jī)制,本實(shí)驗(yàn)采用了免疫熒光染色技術(shù)和Western blot 方法,結(jié)果顯示Rb3顯著抑制炎癥微環(huán)境下p-ERK 蛋白的過度表達(dá)。關(guān)于MAPK信號(hào)通路在牙周炎中的作用,Liu 等[28]研究表明,當(dāng)免疫細(xì)胞發(fā)揮防御反應(yīng)時(shí),核因子κB 配體活化因子會(huì)激活破骨細(xì)胞受體,進(jìn)而激活ERK、p-38 和JNK 等MAPK 通路,誘導(dǎo)破骨細(xì)胞分化。

        Lu 等[29]研究表示,抑制ERK磷酸化過程能夠有效降低IL-6、腫瘤壞死因子-α 等多種炎癥因子的表達(dá)水平,從而有助于減輕hPDLSCs 的炎癥反應(yīng)。同時(shí),Liang 等[10]研究表明抑制p-ERK的過度表達(dá)能夠增強(qiáng)hPDLSCs 的成骨分化能力。研究[30-31]表明,利鈉肽受體3 (natriuretic peptide receptor-3,NPR3) 是MAPK 的上游通路, 可限制骨生長。Zhang 等[11]的研究發(fā)現(xiàn),在高糖培養(yǎng)條件下,未經(jīng)藥物處理的hPDLSCs會(huì)激活NPR3,促進(jìn)p-ERK過度表達(dá),進(jìn)而抑制hPDLSCs 的成骨分化能力。然而有研究[32, 5]得出相反的研究結(jié)果,調(diào)控ERK通路促進(jìn)p-ERK表達(dá)可促進(jìn)成骨。Jiang 等[33]研究表明,隨著藥物濃度的改變,通過激活ERK 信號(hào)通路,進(jìn)而正向調(diào)控Wnt/β-cantenin 通路,促進(jìn)人骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的成骨分化。因此ERK通路可因不同的藥物濃度及處理時(shí)間、不同的細(xì)胞體系在成骨分化過程中表現(xiàn)出雙向調(diào)控作用。

        本次體外細(xì)胞實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證了Rb3 通過抑制炎癥微環(huán)境下p-ERK 蛋白的過度表達(dá),有效抑制炎性細(xì)胞因子釋放。這一機(jī)制進(jìn)一步促進(jìn)了ALP 及RUNX2 基因的表達(dá),從而顯著增強(qiáng)了hPDLSCs 在炎性環(huán)境中的成骨分化能力。此外,動(dòng)物實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,Rb3 能夠降低牙周炎大鼠牙周組織中p-ERK蛋白的表達(dá),同時(shí)提升RUNX2 蛋白的表達(dá)水平,因此減輕了牙周組織的炎癥反應(yīng)并促進(jìn)牙周炎大鼠牙槽骨再生。綜上所述,Rb3 可能通過調(diào)控p-ERK 信號(hào)通路,減輕牙周炎大鼠的牙齦炎癥及牙槽骨吸收程度,同時(shí)促進(jìn)了炎癥微環(huán)境下hPDLSCs的成骨分化。

        利益沖突聲明:作者聲明本文無利益沖突。

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        (本文編輯 洪瀟)

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