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        番茄CCCH類鋅指蛋白家族的鑒定及其表達(dá)分析

        2025-01-27 00:00:00李賢國(guó)戴麒王澤鵬陳兆龍閆會(huì)轉(zhuǎn)李寧

        摘要:CCCH(C3H)型鋅指蛋白是進(jìn)化上保守的RNA結(jié)合蛋白質(zhì),主要與DNA和RNA結(jié)合來(lái)調(diào)控基因表達(dá),不僅參與植物的生長(zhǎng)發(fā)育和激素調(diào)控過(guò)程,同時(shí)也響應(yīng)生物和非生物脅迫。運(yùn)用生物信息學(xué)方法,在番茄(Solanum Lycopersicum)中鑒定出47個(gè)SlC3H 基因,不均勻地分布在12條染色體上,主要定位于細(xì)胞核中。根據(jù)系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)將其分為3個(gè)亞族(Ⅰ~Ⅲ)。共線性分析發(fā)現(xiàn),SlC3H 基因家族存在基因復(fù)制現(xiàn)象,表明在進(jìn)化過(guò)程中SlC3H 基因可能通過(guò)復(fù)制進(jìn)行家族成員擴(kuò)增。番茄SlC3H 基因含有1~14個(gè)外顯子,其啟動(dòng)子區(qū)域存在與激素和非生物脅迫響應(yīng)的元件。Ka/Ks分析表明,SlC3H 基因家族成員和C3H 基因在進(jìn)化過(guò)程中經(jīng)歷了強(qiáng)烈的進(jìn)化選擇。qRT-PCR 分析發(fā)現(xiàn),在鹽脅迫下,SlC3H 基因家族有一半以上的基因表達(dá)上調(diào),其中SlC3H1 在8 h時(shí)表達(dá)量最高,是0 h的30倍;用0.1 mol·L?1 2,4-表油菜素內(nèi)酯(2,4-epibrassinolide,EBR)處理后所有SlC3H 基因在綠熟期都表達(dá)上調(diào),表達(dá)量是對(duì)照組的8~150倍,尤其是SlC3H28 在其他時(shí)期表達(dá)量幾乎為0,但在綠熟期其表達(dá)量是對(duì)照組的150倍,推測(cè)EBR對(duì)果實(shí)綠熟期的發(fā)育有促進(jìn)作用。上述研究結(jié)果為進(jìn)一步揭示番茄C3H 基因家族在響應(yīng)非生物脅迫以及果實(shí)發(fā)育中的功能提供了參考依據(jù)。

        關(guān)鍵詞:CCCH;番茄;生物信息學(xué);表達(dá)分析

        doi:10.13304/j.nykjdb.2023.0156

        中圖分類號(hào):S641.2

        文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A

        文章編號(hào):1008?0864(2025)01?0080?16

        CCCH(C3H)型鋅指蛋白是進(jìn)化上保守的RNA結(jié)合蛋白質(zhì),含有5個(gè)串聯(lián)的C3H鋅指結(jié)構(gòu)域。C3H鋅指轉(zhuǎn)錄因子(zinc finger,Znf)是一種新型的Znf 基因,其編碼的蛋白包含1~6個(gè)C3H 類型的鋅指基序,基序特征有3個(gè)基序半胱氨酸殘基和1個(gè)組氨酸殘基[1-4]。C3H型鋅指蛋白主要與DNA和RNA結(jié)合,從而調(diào)控基因表達(dá),但更多表現(xiàn)出與RNA 結(jié)合的特性,在RNA 加工中起作用[5]。C3H鋅指基序已在人類和酵母的生物體蛋白中發(fā)現(xiàn)[6?7]。在植物中,C3H型鋅指蛋白不僅參與植物的生長(zhǎng)發(fā)育、激素調(diào)控[8?9],同時(shí)也參與生物和非生物脅迫的響應(yīng)[10]。

        擬南芥(Arabidopsis thaliana)中有11 個(gè)C3H家族成員,不僅參與植物對(duì)干旱、鹽、冷和脫落酸(abscisic acid,ABA)等脅迫的響應(yīng),而且參與調(diào)控花發(fā)育[11]。此外,AtC3H14 和AtC3H15 被證實(shí)在擬南芥中調(diào)控次生細(xì)胞壁的生物合成,這也意味著它們的同源物可能也參與了擬南芥次生細(xì)胞壁的形成[12]。CCCH-ZFP 基因提高了西蘭花對(duì)鹽和滲透脅迫的耐受性[13]。水稻(Oryza sativa)中C3H 基因OsDOS 主要通過(guò)茉莉酸途徑的負(fù)調(diào)控進(jìn)行過(guò)度表達(dá),使葉片延緩衰老[14]。棉花GhZFP1 轉(zhuǎn)基因煙草對(duì)鹽、干旱、水楊酸(salicylic acid,SA)脅迫和真菌疾病的耐受性顯著增強(qiáng)[15]。

        番茄(Solanum lycopersicum)是我國(guó)重要的經(jīng)濟(jì)作物之一,發(fā)掘其C3H 基因的潛在功能將為提高番茄產(chǎn)量、品質(zhì)及抵抗逆境脅迫提供重要的理論支持[16]。目前,已在擬南芥、水稻[17]、玉米(Zeamays)[18]、玫瑰(Rosa rugosa)[19]、煙草(Nicotianatabacum)[20]、茄子(Solanum melongena)[21]、蕓苔屬(Brassica)[22?23]、柑橘(Citrus reticulata Blanco)[24]和葡萄(Vitis vinifera)[25]中進(jìn)行了全基因組C3H 鑒定,但在番茄中鮮有報(bào)道。鑒于此,本研究運(yùn)用生物信息學(xué)方法鑒定番茄C3H 基因家族,研究這些基因的結(jié)構(gòu)、保守結(jié)構(gòu)域和組織特異性表達(dá),并從系統(tǒng)進(jìn)化、染色體分布、蛋白質(zhì)理化性質(zhì)等方面分析番茄C3H類鋅指蛋白家族成員的特性;同時(shí),分析家族成員基因啟動(dòng)子順式作用元件,并進(jìn)行熒光定量分析,為分析C3H參與番茄生長(zhǎng)發(fā)育的機(jī)理提供理論依據(jù),為進(jìn)一步探究C3H類鋅指蛋白在番茄應(yīng)對(duì)非生物脅迫中的功能機(jī)理奠定理論基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 供試材料

        以番茄栽培品種‘M82’為研究材料,種子由新疆農(nóng)業(yè)科學(xué)院園藝作物研究所提供。將‘M82’種子清洗后放置培養(yǎng)皿中進(jìn)行萌發(fā),挑選長(zhǎng)勢(shì)一致的番茄幼苗,移入1/2改良型霍蘭格營(yíng)養(yǎng)液中進(jìn)行培養(yǎng),待番茄幼苗長(zhǎng)至4葉期用200 mol·L?1的NaCl溶液進(jìn)行脅迫處理,每個(gè)處理3次重復(fù),分別在處理0.0、0.5、2.0、4.0、6.0、8.0、12.0 h 時(shí)采集葉片。另采集膨大期(expansion period,EP)、綠熟期(green ripe period,GRP)、轉(zhuǎn)色期(veraiso period,VP)、紅熟期(red ripe period,RRP)4 個(gè)時(shí)期的番茄果實(shí)作為材料,分別采用0.00(E1)、0.05(E2)、0.10(E3)、0.20 mol·L?1(E4)的外源激素2,4-表油菜素內(nèi)酯(2,4-epibrassinolide, EBR)處理番茄果實(shí),連續(xù)噴施3 d后再自然生長(zhǎng)3 d,于第7天進(jìn)行果實(shí)取樣。為避免相互干擾,每3株設(shè)為1個(gè)分區(qū),共有7個(gè)區(qū)組,各個(gè)區(qū)組之間距離設(shè)置為1.5 m。收集的材料放入液氮中速凍,并貯存在?80 ℃冰箱。

        1.2 番茄SlC3H 基因家族鑒定

        為鑒定番茄中潛在的C3H 家族基因,從番茄基因組數(shù)據(jù)庫(kù)(http://solomics.agis.org.cn/tomato/)下載番茄亨氏1705 基因組數(shù)據(jù),并通過(guò)EnsemblPlants數(shù)據(jù)庫(kù)(http://plants.ensembl.org/)獲得擬南芥和煙草的基因組數(shù)據(jù);然后從Pfam數(shù)據(jù)庫(kù)(http://pfam-legacy.xfam.org/)下載C3H 結(jié)構(gòu)域隱馬爾可夫模型(ID:PF00642),并利用Hmmer工具對(duì)番茄C3H 全基因組蛋白質(zhì)進(jìn)行搜索和結(jié)構(gòu)域比較,E-value≤1×10?5[26]。最后,通過(guò)NCBI(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/)中Conserved Domain Database程序和Pfam(http://pfam-legacy.xfam.org/)在線軟件中Search程序?qū)λ蝎@得的蛋白進(jìn)行驗(yàn)證。通過(guò)Expasy在線軟件(https://web.expasy.org/tools/)預(yù)測(cè)番茄C3H蛋白的理化性質(zhì)[27]。采用Wolf Psort II(http://www.genscript.com/wolf-psort.html)進(jìn)行亞細(xì)胞定位預(yù)測(cè)分析[28]。

        1.3 番茄SlC3H 家族基因結(jié)構(gòu)分析

        通過(guò)MEGA 7.0軟件中的Muscle對(duì)番茄、擬南芥和煙草的C3H 蛋白序列進(jìn)行比對(duì),并采用鄰接法進(jìn)行分析,采用最大似然法(maximumlikelihood,ML)構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù),Bootstrap 重復(fù)值為1 000,使用在線網(wǎng)站EVOLVIEW(https://www. evolgenius. info/evolview-v2/)美化進(jìn)化樹(shù)[29]。采用DNAMAN 進(jìn)行結(jié)構(gòu)域序列多重比對(duì),利用MEME(https://meme-suite. org/tools/meme/)進(jìn)行保守基序分析[30],通過(guò)TBtools 軟件繪制基因結(jié)構(gòu)圖[31]。

        1.4 番茄SlC3H 基因的染色體定位、共線性和Ka/Ks 分析

        根據(jù)SlC3H 基因的染色體位置信息,使用TBtools 軟件繪制位置分布圖。其中采用MCScanX 進(jìn)行番茄和擬南芥C3H 基因以及番茄和煙草C3H 基因的共線性分析[32];Circos工具用于生成染色體共線性圖[33];通過(guò)Ka/ks工具獲得番茄共線基因?qū)Φ腒a/Ks比值[34]。

        1.5 番茄SlC3H 基因順式元件分析

        利用TBtools軟件提取SlC3H 基因上游2 000 bp的序列,通過(guò)Plant Care 在線網(wǎng)站(http://bioinformatics.psb.ugent.be/webtools/plantcare/html/)預(yù)測(cè)啟動(dòng)子區(qū)域的順式作用元件。最后用TBtools軟件中的HeatMap工具制作表達(dá)熱圖。

        1.6 SlC3H 基因的qRT-PCR

        使用多糖多酚植物總RNA 提取試劑盒(DP432,北京天根生化科技有限公司)提取處理后番茄的總RNA, 通過(guò)BiomarkerScirpt-1stStrandcDNA-SynthesisKit反轉(zhuǎn)錄試劑盒(北京百邁客生物科技有限公司)合成cDNA,利用ChamQSYBR qPCR Master Mix熒光定量試劑盒(南京諾唯贊生物科技股份有限公司)進(jìn)行qRT-PCR 反應(yīng)。根據(jù)番茄C3H 基因家族成員保守基序設(shè)計(jì)熒光定量引物( 表1)。qRT-PCR 反應(yīng)體系20 μL:SuperReal Color PreMix(北京天根生化科技有限公司)10 μL、上下游特異性引物各0.4 μL,cDNA模板1 μL,ddH2O補(bǔ)到20 μL。PCR程序:94 ℃預(yù)變性120s;94 ℃變性5 s,(退火)15 s,72 ℃延伸10 s,45個(gè)循環(huán)。以番茄Actin 為內(nèi)參基因。采用3個(gè)生物重復(fù)和2?△△CT法[35]計(jì)算,相對(duì)表達(dá)量為處理組和對(duì)照組的相對(duì)值。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 番茄SlC3H 基因家族成員特征分析

        通過(guò)全基因組鑒定分析,初步鑒定到47個(gè)潛在的SlC3H 基因,依據(jù)家族成員在基因組染色體的位置將其命名為SlC3H1~SlC3H47。蛋白質(zhì)理化性質(zhì)分析結(jié)果(表2)表明,SlC3H 家族成員的氨基酸殘基數(shù)為93~1 064個(gè),蛋白分子量為10 025.25~121 235.49 Da,其中SlC3H31 最小,SlC3H20 最大;等電點(diǎn)為4.92~9.52,SlC3H24 最低,SlC3H39 最高;SlC3H 基因家族蛋白均表現(xiàn)為親水性。亞細(xì)胞定位預(yù)測(cè)結(jié)果表明,SlC3H2 和SlC3H13 位于細(xì)胞質(zhì),SlC3H7 位于葉綠體上,SlC3H31 處于細(xì)胞外基質(zhì),其余均位于細(xì)胞核內(nèi)。

        2.2 番茄SlC3H 基因家族染色體定位分析

        染色體定位分析結(jié)果如圖1所示。47個(gè)番茄SlC3H 基因家族成員分布在12條染色體上,其中,多數(shù)SlC3H 基因主要分布于Chr3(5個(gè))、Chr1(8個(gè))、Chr6(8個(gè))、Chr10(7個(gè))、Chr11(5個(gè)),其余7條染色體上C3H基因家族成員數(shù)量為1~3個(gè)。番茄SlC3H基因家族成員在同一條染色體上的分布也不均勻,大多分布在各染色體的上端和下端,除了Chr6、Chr7、Chr10、Chr11和Chr12染色體上的C3H 基因家族成員分布較為集中外,其余染色體上的C3H基因家族成員分布較為分散。

        2.3 番茄SlC3H 基因的系統(tǒng)進(jìn)化分析

        為明確C3H 基因的系統(tǒng)進(jìn)化關(guān)系,對(duì)擬南芥(AtC3H,50個(gè))、煙草(NtC3H,49個(gè))和番茄(SlC3H,47個(gè))的146個(gè)C3H保守結(jié)構(gòu)域的蛋白序列構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù),結(jié)果如圖2所示。將這3個(gè)物種的146個(gè)C3H基因劃分為Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ 3個(gè)組,同一組內(nèi)的C3H基因家族成員親緣關(guān)系較近。其中Ⅰ組有62個(gè)C3H,包含16個(gè)SlC3H、24個(gè)AtC3H 和22個(gè)NtC3H;Ⅱ組有19個(gè)C3H 基因,包含6個(gè)SlC3H、9個(gè)AtC3H和4個(gè)NtC3H;Ⅲ組有65個(gè)C3H 基因,包含25個(gè)SlC3H、17個(gè)AtC3H 和23個(gè)NtC3H。同時(shí),Ⅰ組又可劃分為Ⅰ-a、Ⅰ-b 2個(gè)亞組,分別包含6和10個(gè)SlC3H家族成員;Ⅲ組又可劃分為Ⅲ-a、Ⅲ-b 2個(gè)亞組,分別有11和14個(gè)SlC3H。同一組內(nèi)的基因通常具有相似的功能特征,多數(shù)番茄SlC3H 基因處于Ⅰ組與Ⅲ組內(nèi)。

        2.4 番茄SlC3H 基因家族成員基序和基因結(jié)構(gòu)分析

        由圖3 可知,C3H 蛋白有不同的基序類型。所有SlC3H 蛋白都含有motif 1,SlC3H36、SlC3H45、SlC3H30、SlC3H28、SlC3H25、SlC3H44、SlC3H20、SlC3H16、SlC3H23、SlC3H15、SlC3H9、SlC3H31、SlC3H2、SlC3H40、SlC3H21 只含編碼區(qū)(coding sequence,CDS),其他基因既有CDS,又有非翻譯區(qū)(untranslated region,UTR)?;蚪Y(jié)構(gòu)分析發(fā)現(xiàn),番茄SlC3H 基因的內(nèi)含子數(shù)為0~14個(gè),其中有5個(gè)基因(SlC3H37、SlC3H26、SlC3H5、SlC3H25、SlC3H44)僅含1 個(gè)內(nèi)含子,有4 個(gè)基因(SlC3H36、SlC3H28、SlC3H45、SlC3H30)不含內(nèi)含子。內(nèi)含子是阻斷基因線性表達(dá)的序列,增加了基因的長(zhǎng)度,提高了基因間的重組頻率,有利于物種進(jìn)化并具有調(diào)控作用。有內(nèi)含子的5個(gè)SlC3H 基因可能具有某項(xiàng)功能,但對(duì)番茄進(jìn)化作用不明顯;其余4個(gè)不含有內(nèi)含子的SlC3H 基因推測(cè)其可能不具有調(diào)控作用,且不利于番茄物種進(jìn)化。結(jié)合進(jìn)化樹(shù)分析可知,處于同一組內(nèi)的基因家族成員親緣關(guān)系較近,例如,SlC3H36、SlC3H37、SlC3H5 和SlC3H26 在同一組內(nèi),具有較近的親緣關(guān)系,并且由保守基序可知,這4 個(gè)SlC3H 基因具有相似的基因結(jié)構(gòu),即同組成員的motif 高度相似。由此可知,同一組內(nèi)成員的關(guān)系較近且基因結(jié)構(gòu)相似,可能具有相似的功能。

        2.5 番茄SlC3H 基因家族成員共線性和進(jìn)化壓力分析

        構(gòu)建番茄SlC3H 基因的共線性圖,結(jié)果(圖4)表明,有7對(duì)番茄SlC3H 基因具有同源關(guān)系,其成員之間存在共線性關(guān)系,分別是SlC3H1 與SlC3H41、SlC3H11與SlC3H18、SlC3H14與SlC3H24、SlC3H19 與SlC3H32、SlC3H30 與SlC3H45、SlC3H35與SlC3H38、SlC3H36 與SlC3H37,其余成員間不存在共線性關(guān)系。由上可知,SlC3H 基因家族存在基因復(fù)制現(xiàn)象,表明在進(jìn)化過(guò)程中C3H 基因可能通過(guò)復(fù)制進(jìn)行家族成員擴(kuò)增。

        為進(jìn)一步探索C3H 基因家族成員間的進(jìn)化關(guān)系,構(gòu)建了番茄SlC3H 與擬南芥AtC3H 家族以及番茄SlC3H 與煙草NtC3H 家族的比較共線性圖,結(jié)果(圖5)表明,番茄、擬南芥和煙草中存在直系同源C3H 基因?qū)Γ渲蟹雅c擬南芥之間的同源基因?qū)?shù)量多于番茄與煙草的同源基因?qū)?。由此說(shuō)明,番茄與擬南芥的C3H 基因家族具有更近的同源進(jìn)化關(guān)系。

        為探明物種間SlC3H 基因家族和C3H 基因的進(jìn)化,計(jì)算番茄中SlC3H 基因的復(fù)制和共線C3H基因之間的Ka/Ks值,結(jié)果(表3)顯示,6個(gè)SlC3H基因?qū)Φ腒a/Ks值均小于1,表明SlC3H 在進(jìn)化時(shí)受到純化選擇。由此可知,SlC3H 基因家族成員和C3H 基因在進(jìn)化過(guò)程中經(jīng)歷了強(qiáng)烈的選擇作用。

        2.6 番茄SlC3H 基因家族啟動(dòng)子順式作用元件分析

        對(duì)番茄SlC3H 基因家族成員的順式作用元件進(jìn)行分析,按照其功能可分為光響應(yīng)元件、脅迫響應(yīng)元件、植物激素響應(yīng)元件和植物生長(zhǎng)發(fā)育元件(圖6)。光響應(yīng)元件(Box 4、G-box、GT1-Box 4的數(shù)量最多(300個(gè)),G-box次之(195個(gè));SlC3H44 基因中的Box 4元件數(shù)量最多,SlC3H43與SlC3H19 次之;SlC3H38 基因中的G-box 元件數(shù)量最多。Box 4 是參與光反應(yīng)的一部分DNA模塊,G-box 是參與光反應(yīng)的順式作用元件,由此推斷,這些基因主要調(diào)控特征與光有關(guān)。在脅迫響應(yīng)元件中,ARE 元件決定調(diào)節(jié)蛋白的結(jié)合與厭氧誘導(dǎo)的表達(dá),其響應(yīng)元件數(shù)量最多,共142 個(gè),且ARE 元件在所有47 個(gè)基因中均被檢測(cè)到,這說(shuō)明番茄SlC3H 基因可能與番茄對(duì)厭氧響應(yīng)密切相關(guān)。與干旱相關(guān)的MBS元件的數(shù)量排在第2位,共62個(gè),其中有37個(gè)啟動(dòng)子檢測(cè)到MBS 元件。低溫(low temperature response,LTR)響應(yīng)元件共39 個(gè),防御和應(yīng)激(TC-richrepeats)反應(yīng)元件共40 個(gè)。除此之外還發(fā)現(xiàn)了一些與植物生長(zhǎng)發(fā)育有關(guān)的元件,其中分生組織表達(dá)相關(guān)的啟動(dòng)子元件最多,說(shuō)明其可能促使細(xì)胞進(jìn)行分裂分化,進(jìn)而對(duì)番茄生長(zhǎng)發(fā)育起調(diào)控作用;其他還包括玉米醇溶蛋白代謝(O2-site)、胚乳表達(dá)(GCN4-motif)和晝夜節(jié)律(circadian)相關(guān)的順式作用元件。

        與激素響應(yīng)相關(guān)的順式作用元件有3種,包括脫落酸響應(yīng)元件(ABRE)、茉莉酸甲酯響應(yīng)元件(CGTCA-motif、TGACG-motif)以及水楊酸響應(yīng)元件(TCA-element)。茉莉酸甲酯能夠促使番茄植株產(chǎn)生防御反應(yīng),從而表現(xiàn)出較強(qiáng)的抗病能力,其響應(yīng)元件最多,共246個(gè);脫落酸能夠有效控制番茄生長(zhǎng)、提高抗逆性,其響應(yīng)元件次之,共154 個(gè);水楊酸既可以誘導(dǎo)番茄細(xì)胞分化,又可以參與番茄植株對(duì)病原體的抗性,其響應(yīng)元件最少,共54 個(gè)。這說(shuō)明多種激素可參與調(diào)控C3H 基因的表達(dá),共同促進(jìn)番茄的生長(zhǎng),提高番茄的抗逆性。

        2.7 番茄SlC3H 基因響應(yīng)鹽脅迫和激素的表達(dá)模式分析

        鹽脅迫是制約農(nóng)業(yè)生產(chǎn)的重要環(huán)境因素,鑒定鹽脅迫相關(guān)基因以培育耐鹽品種是目前亟需解決的問(wèn)題。為了解番茄在鹽脅迫及果實(shí)生長(zhǎng)發(fā)育處理下SlC3H 基因的表達(dá)水平,利用qRT-PCR檢測(cè)番茄各器官中SlC3H 基因及其下游基因的轉(zhuǎn)錄水平,挑選了36個(gè)SlC3H 基因進(jìn)行了qRT-PCR分析,結(jié)果(圖7)顯示,在鹽脅迫下,SlC3H14、SlC3H10、SlC3H8、SlC3H3、SlC3H46、SlC3H7、SlC3H41、SlC3H42、SlC3H43、SlC3H45、SlC3H23、SlC3H24、SlC3H30、SlC3H32、SlC3H35、SlC3H1、SlC3H33和SlC3H26 表達(dá)上調(diào),尤其是SlC3H1 在8h 達(dá)到最大值,較0 h 的表達(dá)量上升了30 倍;SlC3H27、SlC3H40、SlC3H36 和SlC3H37 表達(dá)下調(diào),推測(cè)這4個(gè)基因在鹽脅迫下起負(fù)調(diào)控作用;剩下的SlC3H2和SlC3H12在鹽脅迫下均勻表達(dá)。

        為了進(jìn)一步研究激素脅迫下番茄SlC3H 基因在果實(shí)中表達(dá),挑選12個(gè)SlC3H 基因進(jìn)行了qRTPCR分析,結(jié)果(圖8)顯示,在0.1 mol·L?1 EBR處理下,12個(gè)SlC3H 基因在綠熟期均表達(dá)上調(diào),表達(dá)量是對(duì)照組的8~150倍,尤其是SlC3H28,該基因在其他時(shí)期的表達(dá)量幾乎為0,但在綠熟期其表達(dá)量是對(duì)照組的150倍。因此,推測(cè)EBR對(duì)果實(shí)綠熟期的發(fā)育有促進(jìn)作用,其他時(shí)期基因都均勻表達(dá)。

        3 討論

        C3H蛋白在植物生長(zhǎng)發(fā)育的許多方面發(fā)揮著重要作用。前人對(duì)C3H 基因家族成員進(jìn)行了大量研究,在擬南芥和水稻中分別鑒定出68和67個(gè)[17],柑橘中62個(gè)[24],楊樹(shù)中91個(gè)[37],香蕉中89個(gè)[2],煙草中86個(gè)[20],然而在番茄中鮮有報(bào)道。對(duì)番茄C3H基因進(jìn)行全基因組分析,有助于更好地了解該基因家族。本研究從番茄基因組中鑒定出47個(gè)SlC3H 基因,分析基因結(jié)構(gòu)發(fā)現(xiàn),SlC3H基因的內(nèi)含子數(shù)量為0~14個(gè),其中有5個(gè)基因僅含1個(gè)內(nèi)含子,有4個(gè)基因不含內(nèi)含子;序列分析表明,SlC3H 基序高度保守,處于同一亞家族的SlC3H 基因結(jié)構(gòu)域高度相似,表明這些SlC3H 基因可能具有相似的功能;系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)分析將47個(gè)SlC3H 基因劃分為3個(gè)亞族,亞族內(nèi)的C3H基因有較高的同源性,同源基因發(fā)生復(fù)制時(shí)可能來(lái)自同一個(gè)祖先,推測(cè)其具有相似的功能。

        基因復(fù)制是導(dǎo)致基因家族快速擴(kuò)張和進(jìn)化的主要因素[38]。本研究發(fā)現(xiàn)7對(duì)同源基因,其成員之間存在共線性關(guān)系,這與香蕉中的9對(duì)相似[2]。這一結(jié)果進(jìn)一步表明,C3H 基因具有高度的同源性,家族成員存在基因復(fù)制現(xiàn)象,表明在進(jìn)化過(guò)程中C3H 基因可能通過(guò)復(fù)制進(jìn)行家族成員擴(kuò)增。SlC3H 基因家族成員中有6對(duì)同源基因的Ka/Ks值小于1,表明這些基因主要受進(jìn)化選擇的影響。

        順式元件在基因表達(dá)的轉(zhuǎn)錄調(diào)控中發(fā)揮著重要作用[39]。本研究分析了SlC3H 基因上游2 000 bp啟動(dòng)子區(qū)域的順式作用元件,檢測(cè)到多種與植物生長(zhǎng)發(fā)育相關(guān)的元件,包括參與細(xì)胞周期調(diào)控的順式作用元件、激素響應(yīng)元件以及與分生組織表達(dá)相關(guān)的順式作用調(diào)控元件;同時(shí)還檢測(cè)到與非生物脅迫相關(guān)的順式元件,如參與防御和脅迫響應(yīng)的順式作用元件、參與低溫響應(yīng)的順式作用元件,以及參與干旱誘導(dǎo)的MYB結(jié)合位點(diǎn)。因此,順式作用元件分析為SlC3H 成員的功能研究,特別是相關(guān)基因的調(diào)控和植物在不同脅迫下的發(fā)育提供參考。

        本研究運(yùn)用實(shí)時(shí)熒光定量PCR 首次對(duì)番茄SlC3H 基因家族的表達(dá)模式進(jìn)行了全面分析,結(jié)果表明,在NaCl脅迫時(shí),SlC3H基因家族中有一半以上的基因上調(diào)表達(dá),這與芝麻中的SiC3H1和香蕉中的CCCH-ZFP 表達(dá)相似[2,40],而SlC3H27、SlC3H40、SlC3H36 和SlC3H37 下調(diào)表達(dá),這與水稻中的OsC3H30、OsC3H50、OsC3H52 的表達(dá)模式一致[41],說(shuō)明它們可能起負(fù)調(diào)控作用。擬南芥CCCH類鋅指蛋白還參與激素響應(yīng)[11,42],本研究中SlC3H基因在激素處理后表達(dá)量發(fā)生變化,說(shuō)明SlC3H 基因參與番茄果實(shí)的生長(zhǎng)發(fā)育,同時(shí)在0.1 mol·L?1的EBR處理后,SlC3H基因在綠熟期表達(dá)量顯著升高,SlC3H28在激素處理后表達(dá)量提升了150倍,這與煙草NtC3H39基因的表達(dá)模式相似,進(jìn)一步說(shuō)明番茄SlC3H 基因家族的功能與擬南芥CCCH類鋅指蛋白相似[43]。

        參考文獻(xiàn)

        [1] GAO G, GUO X, GOFF S P, et al .. Inhibition of retroviral RNAproduction by ZAP, a CCCH-type zinc finger protein [J].Science, 2002, 297(5587):1703-1706.

        [2] MAZUMDAR P, LAU S E, WEE W Y, et al .. Genome-wideanalysis of the CCCH zinc-finger gene family in banana (Musaacuminata): an insight in to motif and gene structurearrangement, evolution and salt stress responses [J]. Trop.Plant Biol., 2017, 10(11):177-193.

        [3] DR?GE-LASER W, SNOEK B L, SNEL B, et al .. TheArabidopsis bZIP transcription factor family-an update [J].Curr. Opin. Plant Biol., 2018, 45(PtA):36-49.

        [4] SU L Y, XIAO X C, JIANG M Q, et al .. Genome-wide analysisof the CCCH zinc finger family in longan: characteristicidentification and expression profiles in Dimocarpus longanLour [J]. J. Integr. Agric., 2022, 21(1):113-130.

        [5] DELANEY K J, XU R, ZHANG J, et al .. Calmodulin interactswith and regulates the RNA-binding activity of an Arabidopsispolyadenylation factor subunit [J]. Plant Physiol., 2006, 140 (4):1507-1521.

        [6] CARRICK D M, LAI W S, BLACKSHEAR P J. The tandemCCCH zinc finger protein tristetraprolin and its relevance tocytokine mRNA turnover and arthritis [J]. Arthritis Res. Ther.,2004, 6 (6):248-264.

        [7] DE J, LAI W S, THORN J M, et al .. Identification of four CCCHzinc finger proteins in Xenopus, including a novel vertebrateprotein with four zinc fingers and severely restricted expression[J]. Gene, 1999, 228(1-2):133-145.

        [8] BOGAMUWA S P, JANG J C. Tandem CCCH zinc fingerproteins in plant growth, development and stress response [J].Plant Cell Physiol., 2014, 55(8):1367?1375.

        [9] ZHANG L Y, BAI M Y, WU J, et al .. Antagonistic HLH/bHLHtranscription factors mediate brassinosteroid regulation of cellelongation and plant development in rice and Arabidopsis [J].Plant Cell, 2009, 21(12):3767-3780.

        [10] ZHANG H, GAO X, ZHI Y, et al .. A non?tandem CCCH?typezinc-finger protein, IbC3H18, functions as a nuclear transcriptionalactivator and enhances abiotic stress tolerance in sweet potato [J].New Phytol., 2019, 223(4):1918?1936.

        [11] KIM D H, YAMAGUCHI S, LIM S, et al .. SOMNUS, a CCCHtypezinc finger protein in Arabidopsis, negatively regulateslight-dependent seed germination downstream of PIL5 [J].Plant Cell, 2008, 20(5):1260-1277.

        [12] LI J, JIA D, CHEN X. HUA1, a regulator of stamen and carpelidentities in Arabidopsis, codes for a nuclear RNA bindingprotein [J]. Plant Cell, 2001, 13(10):2269-2281.

        [13] JIANG M, JIANG J J, MIAO L X, et al.. Over-expression of a C3Htypezinc finger gene contributes to salt stress tolerance intransgenic broccoli plants [J]. Plant Cell, 2017, 130(2):239-254.

        [14] PRADHAN S, KANT C, VERMA S, et al .. Genome-wideanalysis of the CCCH zinc finger family identifies tissuespecific and stress responsive candidates in chickpea (Cicerarietinum L.) [J/OL]. PloS One, 2017, 12(7):e0180469 [2023-02-05]. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0180469.

        [15] GUO Y H, YU YP, WANG D, et al .. GhZFP1, a novel CCCHtypezinc fifinger protein from cotton, enhances salt stresstolerance and fungal disease resistance in transgenic tobaccoby interacting with GZIRD21A and GZIPR5 [J]. New Phytol.,2009,183(1):62-75.

        [16] 劉雨軒.番茄WRKY 基因家族成員鑒定及表達(dá)分析[D].沈陽(yáng):沈陽(yáng)農(nóng)業(yè)大學(xué),2020.

        LIU Y X. Identification and expression analysis of tomatoWRKY gene family members [D]. Shenyang: ShenyangAgricultural University, 2020.

        [17] WANG D, GUO Y, WU C, et al .. Genome-wide analysis ofCCCH zinc finger family in Arabidopsis and rice [J]. BMCGenomics, 2008, 9(1):44-64.

        [18] PENG X, ZHAO Y, CAO J, et al .. CCCH-type zinc finger family in maize: genome-wide identification, classification andexpression profiling under abscisic acid and droughttreatments [J/OL]. PloS One, 2012, 7(7): e40120 [2023-02-05].https://doi.org/10.1371/journal.pone.0040120.

        [19] LI C, FANG Q, ZHANG W, et al.. Genome-wide identification ofthe CCCH gene family in rose (Rosa chinensis Jacq.) reveals itspotential functions [J]. Biotechnol. Equip., 2021, 35(1):517-526.

        [20] 唐春閨,鄧兆龍,劉瓊,等.普通煙草CCCH類鋅指蛋白家族的全基因組鑒定和表達(dá)分析[J]. 河南農(nóng)業(yè)科學(xué), 2022, 51(4): 48-58.

        TANG C G, DENG Z L, LIU Q, et al .. Genome wide identificationand expression analysis of CCCH zinc finger like protein family intobacco [J]. J. Henan Agric. Sci., 2022, 51(4):48-58.

        [21] XU R. Genome-wide analysis and identification of stressresponsivegenes of the CCCH zinc finger family in Solanumlycopersicum [J]. Mol. Genet. Genomics, 2014, 289(5):965-979.

        [22] PI B, HE X, RUAN Y, et al .. Genome-wide analysis and stressresponsiveexpression of CCCH zinc finger family genes inBrassica rapa [J/OL]. BMC Plant Biol., 2018, 18(1):7 [2023-02-05]. https://doi.org/10.1186/s12870-018-1608-7.

        [23] PI B, PAN J, XIAO M, et al .. Systematic analysis of CCCH zincfinger family in Brassica napus showed that BnRR-TZFs areinvolved in stress resistance [J/OL]. BMC Plant Biol., 2021, 21(1):8 [2023-02-05]. https://doi.org/10.1186/s12870-021-03340-8.

        [24] LIU S, KHAN M R G, LI Y, et al .. Comprehensive analysis ofCCCH-type zinc finger gene family in citrus (Clementinemandarin) by genome-wide characterization [J]. Mol. Genet.Genomics, 2014, 289(5): 855-872.

        [25] WANG X L, ZHONG Y, CHENG Z M. Evolution andexpression analysis of the CCCH zinc finger gene family inVitis vinifera [J]. Plant Genome, 2014, 7(3):16-25.

        [26] PRAKASH A, JEFFRYES M, BATEMAN A, et al .. TheHMMER web server for protein sequence similarity search [J].Curr. Prot. Bioinf., 2017, 60:15-23.

        [27] GASTEIGER E, GATTIKER A, HOOGLAND C, et al ..ExPASy: the proteomics server for in-depth protein knowledgeand analysis [J]. Nucl. Acids Res., 2003, 31(13):3784-3788.

        [28] HORTON P, PARK K J, OBAYASHI T, et al .. WoLF PSORT:protein localization predictor [J]. Nucl. Acids Res., 2007, 35:585-587.

        [29] KUMAR S, STECHER G, LI M, et al .. MEGA X: molecularevolutionary genetics analysis across computing platforms [J].Mol. Biol. Evol., 2018, 35(6):1547-1579.

        [30] BAILEY T L, BODEN M, BUSKE F A, et al .. MEME SUITE:tools for motif discovery and searching [J]. Nucl. Acids Res.,2009, 37:202-208.

        [31] CHEN C, CHEN H, ZHANG Y, et al .. TBtools: an integrativetoolkit developed for interactive analyses of big biological data [J].Mol. Plant, 2020, 13(8):1191-1202.

        [32] WANG Y P, TANG H B, DEBARRY J D, et al .. MCScanX: atoolkit for detection and evolutionary analysis of gene syntenyand collinearity [J/OL]. Nucl. Acids Res., 2012, 40(7): e49[2023-02-05]. https://doi.org/10.1093/nar/gkr1293.

        [33] KRZYWINSKI M, SCHEIN J, BIROL I, et al .. Circos: aninformation aesthetic for comparative genomics [J]. GenomeRes., 2009, 19(9):1639-1645.

        [34] WANG D, ZHANG Y, ZHANG Z, et al.. KaKs_Calculator 2.0: atoolkit incorporating gamma-series methods and sliding windowstrategies [J]. Genom Proteom. Bioinf., 2010, 8(1):77-80.

        [35] LIVAK K J, SCHMITTGEN T D. Analysis of relative geneexpression data using real-time quantitative PCR and the2-ΔΔCT method [J]. Methods, 2001, 25(4):402-408.

        [36] YAO Q, BAI Y, KUMAR S, et al.. Minimal residual diseasedetection by next-generation sequencing in multiple myeloma: Aomparison with real-time quantitative PCR [J/OL]. Front. Oncol.,2020, 10: 611021 [2023-02-05]. https://doi.org/10.1111/bjh.15075.

        [37] CHAI G, HU R, ZHANG D, et al .. Comprehensive analysis ofCCCH zinc finger family in poplar (Populus trichocarpa ) [J/OL].BMC Genomics, 2012, 13(1):253 [2023-02-05]. https://doi.org/10.1186/1471-2164-13-253.

        [38] JOUFFREY V, LEONARD A S, AHNERT S E. Geneduplication and subsequent diversification strongly affectphenotypic evolvability and robustness [J]. Roy Soc. Open Sci.,2021, 8(6):1636-1642.

        [39] WANG W, JIANG W, LIU J G, et al .. Genome-widecharacterization of the aldehyde dehydrogenase gene superfamilyin soybean and its potential role in drought stress response [J/OL].BMC Genomics, 2017, 18(1): 518 [2023-02-05]. https://doi. org/10.1186/s12864-017-3908-y.

        [40] 魏夢(mèng)園,劉愛(ài)麗,黎冬華,等. 芝麻CCCH 鋅指蛋白基因SiC3H1 的克隆及表達(dá)分析[J].分子植物育種,2020,18(24):7982-7988.

        WEI M Y, LIU A L, LI D H, et al .. Cloning and expressionanalysis of CCCH zinc finger protein gene SiC3H1 fromsesame [J]. Mol. Plant Breed., 2020, 18(24):7982-7988.

        [41] 劉小艷,孫艷俠,王亞男,等.水稻CCCH型鋅指蛋白亞家族Ⅰ基因的表達(dá)分析[J]. 山東農(nóng)業(yè)科學(xué),2015,47(2):7-11.

        LIU X Y, SUN Y X, WANG Y N, et al .. Expression analysis ofCCCH zinc finger protein subfamily Ⅰ genes in rice [J].Shandong Agric. Sci., 2015, 47(2):7-11.

        [42] VERMA V, RAVINDRAN P, KUMAR P P. Plant hormonemediatedregulation of stress responses [J]. BMC Plant Biol.,2016, 16:1-10.

        [43] LIN P C, POMERANZ M C, JIKUMARU Y, et al .. TheArabidopsis tandem zinc finger protein AtTZF1 affects ABA?andGA?mediated growth, stress and gene expression responses [J].Plant J., 2011, 65(2):253-268.

        基金項(xiàng)目:國(guó)家自然科學(xué)基金項(xiàng)目(32260763);新疆農(nóng)業(yè)科學(xué)院科技創(chuàng)新專項(xiàng)孵化項(xiàng)目(xjkcpy-2021001)。

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