劉娜娜 張俊嬌 張樊 吳聰英 姜玉武
(1.北京大學第一醫(yī)院兒科,北京 100034;2.兒科遺傳性疾病分子診斷與研究北京市重點實驗室,北京 100009;3.北京中醫(yī)藥大學東直門醫(yī)院針灸科,北京 101121)
神經(jīng)母細胞瘤(neuroblastoma, NB)是兒童時期最常見的顱外實體瘤,主要見于嬰幼兒,約占兒童癌癥相關(guān)死亡率的15%[1]。它是一種起源于神經(jīng)嵴的發(fā)育性腫瘤[2]。NB 預(yù)后差異較大,可自行消退,發(fā)展為良性神經(jīng)節(jié)細胞瘤,以及逐漸進展為難治性腫瘤[3]。促進腫瘤細胞分化及凋亡的分子可能為治療NB的有效候選藥物。
神經(jīng)元分化是一個復(fù)雜的生物過程,受多種信號通路調(diào)控,包括轉(zhuǎn)化生長因子-β信號通路[4]、SHH 信號通路[5]、Wnt 信號通路[6]、Notch 信號通路[7]和RARs 信號通路[8]等。神經(jīng)元凋亡是神經(jīng)元的程序性死亡,是一種由基因決定的自我破壞過程。誘導腫瘤細胞凋亡有利于阻止腫瘤細胞的無限增殖,能有效抑制腫瘤的發(fā)生與發(fā)展。明確神經(jīng)元分化及腫瘤細胞凋亡的發(fā)生,有利于神經(jīng)系統(tǒng)疾病的治療。
阿達帕林是一種人工合成的第三代維甲酸類藥物,目前主要用于普通型痤瘡等皮膚病的外用治療[9-10]。有研究表明,阿達帕林可誘導黑色素瘤細胞(A375 和M14 細胞)[11]和角質(zhì)形成細胞(HaCat 細胞)的增殖和凋亡[12];阿達帕林可抑制三陰性乳腺癌TNBC 細胞的生長、集落形成和遷移[13-14];在結(jié)直腸癌細胞系中抑制腫瘤細胞增殖及誘導其凋亡[15],從而發(fā)揮抗腫瘤作用。然而,該藥物對NB和神經(jīng)元發(fā)育的影響尚不明確。本研究旨在研究不同濃度阿達帕林對神經(jīng)母細胞瘤細胞系SH-SY5Y 的影響,為阿達帕林可能用于治療NB提供理論依據(jù)。
SH-SY5Y 細胞系由北京大學神經(jīng)科學研究所王韻教授所贈。SH-SY5Y 細胞用含10%胎牛血清(Gibco,美國)和1%青霉素-鏈霉素溶液(Gibco,美國)的DMEM/F12培養(yǎng)基(Thermo Scientific,美國),培養(yǎng)于細胞培養(yǎng)皿中。置于37℃、5% CO2及95%濕度的培養(yǎng)箱(Thermo Scientific,美國)中孵育。培養(yǎng)基每周更換2次。
將培養(yǎng)皿中密度為70%~80%的SH-SY5Y 細胞用0.25%胰蛋白酶(Gibco,美國)室溫消化30 s,加入SH-SY5Y細胞培養(yǎng)基終止消化,離心后取SHSY5Y 細胞沉淀,PBS 洗滌3 次后培養(yǎng)于新的培養(yǎng)皿中。SH-SY5Y 細胞傳代后第2 天,采用3 種不同濃度,即0.1 μM(低濃度)、1 μM(低濃度)、10 μM(高濃度)阿達帕林(Med Chem Express,美國)處理SH-SY5Y 細胞。在阿達帕林處理后7 d內(nèi),觀察SH-SY5Y 細胞的形態(tài)變化過程。細胞實驗分為對照組和0.1 μM、1 μM、10 μM 阿達帕林組。
采用延時顯微拍攝技術(shù)觀察各組SH-SY5Y 細胞形態(tài)的動態(tài)變化。將SH-SY5Y 細胞置于INU 顯微鏡培養(yǎng)箱(Tokai Hit,日本)中孵育,設(shè)置該培養(yǎng)箱參數(shù)為37℃和5% CO2。使用CKX41 倒置顯微鏡(Olympus,日本)于第1、3、7 天進行拍攝,觀察并記錄同一區(qū)域SH-SY5Y 細胞及其突起的形態(tài)變化情況。
1 μM 阿達帕林處理SH-SY5Y 細胞后,用4%多聚甲醛固定20 min,然后用0.3% Triton X-100 處理15 min。用含3%牛血清白蛋白和0.1% Triton X-100 的封閉液在室溫下封閉1 h,加入兔抗β-微管蛋白Ⅲ(βⅢ-tubulin;CST,美國;1∶400)和小鼠抗神經(jīng)絲重鏈多肽(neurofilament heavy polypeptide,NFH;CST,美國;1∶400)一抗,4℃下過夜。PBS 洗滌3 次后,加入Alexa Fluor 488(Invitrogen,美 國;1∶500) 和Alexa Fluor 568(Invitrogen,美國;1∶500)二抗,室溫下孵育1 h。在室溫下用2 μg/mL Hoechst 33258處理15 min以使細胞核染色,于共聚焦顯微鏡(Olympus,日本)下進行觀察。實驗獨立重復(fù)4次。
利用多電極陣列(3Brain,瑞士)技術(shù)記錄阿達帕林誘導SH-SY5Y 細胞的自發(fā)放電活動。將未處理的SH-SY5Y細胞培養(yǎng)在多電極陣列CMOS芯片(Plexon,中國香港)上,用1 μM阿達帕林進行處理后,繼續(xù)培養(yǎng)于CO2孵育箱中。予1 μM 阿達帕林處理4 d后進行自發(fā)放電活動監(jiān)測,每組于同一時間點均至少記錄5 min,使用BrainWave 4分析軟件(3Brain,瑞士)進行離線分析。實驗獨立重復(fù)3次。
將SH-SY5Y 細胞培養(yǎng)于共聚焦顯微鏡皿內(nèi),予10 μM 阿達帕林處理1 d,按照磷脂結(jié)合蛋白Annexin V-FITC細胞凋亡檢測試劑盒(C1062L,碧云天,中國)和活細胞半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶(caspase)-3 活性與Annexin V 細胞凋亡檢測試劑盒(C1077M,碧云天,中國)說明書進行檢測。Annexin V/碘化丙啶(propidium iodide, PI)雙染為每皿細胞加入195 μL Annexin V-FITC 結(jié)合液、5 μL Annexin V-FITC 和10 μL PI 染色液的混合液;caspase-3/Annexin V 雙染為每皿細胞中加入194 μL Annexin V-mCherry 緩 沖 液、 5 μL Annexin VmCherry 和1 μL GreenNuc ? caspase-3 Substrate(1 mM)混合液。將上述混合液分別搖勻后于室溫下避光孵育20 min。隨后于共聚焦顯微鏡下進行觀察。實驗均獨立重復(fù)5次。
使用GraphPad Prism軟件對數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計學分析。符合正態(tài)分布的計量資料以均值±標準差(±s)表示。組間比較采用單因素方差分析。P<0.05為差異具有統(tǒng)計學意義。
對照組SH-SY5Y 細胞突起較少且短。給予0.1 μM 阿達帕林處理后,SH-SY5Y 細胞被誘導形成較長突起,且突起可見分支,隨培養(yǎng)時間延長,突起之間可相互連接形成網(wǎng)絡(luò)。1 μM 阿達帕林處理后,SH-SY5Y 細胞被誘導形成較長且分支狀突起,隨培養(yǎng)時間延長,突起之間也可相互連接形成網(wǎng)絡(luò)。10 μM 阿達帕林處理后,第1 天SH-SY5Y細胞突起較長,可見分支;第3、7 天SH-SY5Y 細胞突起消失,胞體呈球形。見圖1。
圖1 不同濃度阿達帕林處理第1、3、7天SH-SY5Y細胞形態(tài)變化(×20) 對照組細胞突起較少且短。不同濃度阿達帕林處理后,0.1 μM、1 μM阿達帕林組細胞突起較長,可見分支;隨培養(yǎng)時間延長,突起之間可相互連接形成網(wǎng)絡(luò)。10 μM阿達帕林組處理后第1天細胞突起較長,可見分支;第3、7天細胞突起消失,胞體呈球形。
圖2 1 μM阿達帕林處理4 d后SH-SY5Y細胞βⅢ-tubulin及NFH表達(共聚焦顯微鏡,×60) βⅢ-tubulin陽性表達為綠色熒光、NFH陽性表達為紅色熒光。與對照組相比,1 μM阿達帕林組βⅢ-tubulin和NFH的相對熒光強度升高。
與對照組相比,1 μM 阿達帕林組SH-SY5Y 細胞βⅢ-tubulin 和NFH 的相對熒光強度升高(分別為57.3±6.1 vs 65.4±3.5,44.5±1.7 vs 65.5±13.3;P<0.05)。提示低濃度阿達帕林可誘導SH-SY5Y 細胞突起形成,即神經(jīng)纖維的形成;同時,可誘導SH-SY5Y細胞向成熟神經(jīng)元分化。
結(jié)果顯示,0.1 μM 及1 μM 低濃度阿達帕林處理SH-SY5Y 細胞4 d 后,均可觀察到自發(fā)電活動(圖3);對照組中未觀察到自發(fā)電活動。提示低濃度阿達帕林可誘導SH-SY5Y 細胞分化成為成熟的功能性神經(jīng)元。
圖3 低濃度阿達帕林處理SH-SY5Y 細胞4 d 后電活動的多電極陣列測定 0.1 μM(A)和1 μM(B)阿達帕林組可觀察到自發(fā)電活動。
與對照組相比,10 μM 阿達帕林組Annexin V和PI 的相對熒光強度升高(分別為71.2±3.2 vs 96.3±19.5,51.4±1.1 vs 56.4±2.5;P<0.05),而且可觀察到Annexin V和PI的部分共染現(xiàn)象。見圖4。提示高濃度阿達帕林可誘導SH-SY5Y 細胞的凋亡。
圖4 10 μM阿達帕林處理1 d后SH-SY5Y細胞的細胞凋亡情況(共聚焦顯微鏡,×60) Annexin V-FITC為綠色熒光,PI為紅色熒光。與對照組相比,10 μM阿達帕林組Annexin V和PI相對熒光強度升高。
與對照組相比,10 μM阿達帕林組caspase 3和Annexin V 的相對熒光強度升高(分別為51.6±4.9 vs 77.8±13.5,65.4±3.5 vs 133.6±63.4;P<0.05),而且可觀察到caspase 3 和Annexin V 的部分共染現(xiàn)象。見圖5。提示高濃度阿達帕林可誘導SH-SY5Y細胞凋亡,這一凋亡作用可能由caspase 途徑介導。
圖5 10 μM 阿達帕林處理1 d 后SH-SY5Y 細胞中caspase 3 活性和細胞凋亡情況(共聚焦顯微鏡,×60)細胞內(nèi)caspase 3 活性高的凋亡細胞核呈綠色熒光,凋亡細胞的細胞膜呈紅色熒光。與對照組相比,10 μM 阿達帕林組caspase 3及Annexin V相對熒光強度升高。
SH-SY5Y 細胞是由人神經(jīng)母細胞瘤SK-N-SH細胞經(jīng)歷克隆形成,被廣泛用于神經(jīng)系統(tǒng)疾病研究[16-18]。未分化的SH-SY5Y 細胞不完全具備神經(jīng)元的特征,而分化成熟的SH-SY5Y 細胞可具備成熟神經(jīng)元的特征,如形態(tài)學上可見明顯細胞突起,功能上細胞興奮性增強,可通過添加多種化合物誘導SH-SY5Y 細胞的分化[19],并可通過添加特定物質(zhì)誘導其分化成特定類型神經(jīng)元[20]。該細胞系狀態(tài)穩(wěn)定且易于生長。
以往研究中,維甲酸是維生素A 活性代謝產(chǎn)物之一,通常被用來將神經(jīng)母細胞瘤細胞系SHSY5Y細胞誘導分化為神經(jīng)元[21]。本研究中,使用阿達帕林研究其對SH-SY5Y細胞的誘導分化作用,使用不同濃度阿達帕林處理SH-SY5Y 細胞,通過采用延時顯微拍攝技術(shù)于不同時間點觀察SHSY5Y 細胞形態(tài),結(jié)果提示低濃度阿達帕林可促進SH-SY5Y 細胞的突起形成,突起之間形成網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)進而促進細胞之間的相互聯(lián)系。由此可知,SHSY5Y 細胞可被誘導分化為神經(jīng)元樣細胞,可以觀察到神經(jīng)元樣突起形成。為明確低濃度阿達帕林可誘導SH-SY5Y 細胞成神經(jīng)元,本研究通過免疫熒光觀察神經(jīng)元特異性標志物βⅢ-tubulin 和成熟神經(jīng)元標志物NFH 的表達情況。結(jié)果表明,低濃度阿達帕林組SH-SY5Y 細胞βⅢ-tubulin 和NFH 表達高于對照組。NFH具有穩(wěn)定神經(jīng)元軸突的作用,常作為成熟神經(jīng)元的重要標志物。以上提示,低濃度阿達帕林可誘導SH-SY5Y 細胞分化為成熟神經(jīng)元。為了明確低濃度阿達帕林誘導分化的成熟神經(jīng)元功能,本研究采用多電極陣列技術(shù)對誘導分化后的SH-SY5Y 細胞進行電生理記錄,觀察到低濃度阿達帕林誘導分化后的SH-SY5Y 細胞有自發(fā)放電活動,提示低濃度阿達帕林可誘導SHSY5Y 細胞成為成熟的功能性神經(jīng)元。這與以往研究中使用AM580 誘導SH-SY5Y 細胞分化為有功能的成熟神經(jīng)元的研究結(jié)果一致[19]。
促進腫瘤細胞凋亡是大多數(shù)抗腫瘤藥物發(fā)揮藥效的重要機制。既往研究證實,隨培養(yǎng)時間延長,不同濃度阿達帕林(2.5 μM、5 μM、10 μM)可抑制黑色素瘤A375 和M14 細胞的集落形成,通過抑制DNA 修復(fù)進而引發(fā)細胞顯著的S 期阻滯和凋亡[11];另有研究表明,不同濃度阿達帕林(2 μM、4 μM、6 μM)可抑制HaCat細胞的克隆形成,引起細胞S期阻滯和凋亡,這一機制可能使阿達帕林用于表皮增生性疾病的治療[12]。在本研究中,為了明確高濃度阿達帕林對SH-SY5Y 細胞的影響,阿達帕林處理濃度升至10 μM,發(fā)現(xiàn)SHSY5Y 細胞突起逐漸消失,胞體逐漸回縮成球形,隨培養(yǎng)時間延長,上述現(xiàn)象逐漸明顯。為了進一步明確高濃度阿達帕林對SH-SY5Y 細胞凋亡的影響,通過檢測細胞凋亡標志物,結(jié)果表明,高濃度阿達帕林組SH-SY5Y 細胞表達神經(jīng)元早期凋亡標志物磷脂結(jié)合蛋白Annexin V、晚期凋亡及壞死標志物PI 以及神經(jīng)元凋亡標記物caspase 3 均高于對照組。以上表明,高濃度阿達帕林可以誘導SHSY5Y細胞凋亡。
綜上所述,本研究發(fā)現(xiàn)低濃度和高濃度阿達帕林對SH-SY5Y 細胞分別具有誘導分化為成熟的功能性神經(jīng)元和誘導凋亡的作用。為NB的臨床有效藥物治療提供實驗依據(jù)。
作者貢獻聲明:劉娜娜負責SH-SY5Y 細胞多電極陣列檢測細胞放電實驗及細胞凋亡檢測實驗、實驗數(shù)據(jù)分析、文章撰寫和修改;張俊嬌負責SHSY5Y 細胞的培養(yǎng)及形態(tài)學觀察實驗;張樊負責SH-SY5Y 細胞的培養(yǎng)及不同濃度藥物處理;吳聰英老師提供實驗技術(shù)支持,幫助進行數(shù)據(jù)分析和統(tǒng)計,修訂文章初稿;姜玉武教授提供基金支持,負責課題的設(shè)計、指導和監(jiān)督,并在實驗過程中提供寶貴的專業(yè)意見。
利益沖突聲明:所有作者聲明不存在利益沖突。