李華祥,戴嘉寧,王娟娟,劉泊伶,吉 丹,羅志珊,陸震鳴,楊振泉,*
(1.揚州大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,江蘇 揚州 225127;2.江南大學(xué)生物工程學(xué)院,工業(yè)生物技術(shù)教育部重點實驗室,江蘇 無錫 214122;3.江南大學(xué) 糧食發(fā)酵與食品生物制造國家工程研究中心,江蘇 無錫 214122)
樟芝(Antrodia cinnamomea),又名牛樟芝或牛樟菇,是一種珍稀藥食兩用真菌,隸屬于擔(dān)子菌門(Basidiomycetes)、多孔菌科(Polyporaceae)、薄孔菌屬(Antrodia)[1-2],具有保肝護肝[3]、抗癌、抗腫瘤[4]、降血糖、降血壓、抗病毒[5]、抑菌[6]、調(diào)節(jié)免疫及調(diào)節(jié)腸道菌群[7-8]等多種功效。目前,樟芝的人工培養(yǎng)方式主要有椴木栽培、平皿培養(yǎng)、固態(tài)發(fā)酵和液態(tài)發(fā)酵(又稱深層發(fā)酵)[9]。其中,采用樟芝深層發(fā)酵所產(chǎn)生的無性孢子(即節(jié)孢子)接種取代傳統(tǒng)菌絲接種的樟芝深層發(fā)酵工藝由于具有接種量及種子質(zhì)量可控、批次穩(wěn)定性好、發(fā)酵周期短、活性物質(zhì)產(chǎn)量高及易于規(guī)模化等優(yōu)點,已成為目前最高效、最受歡迎的樟芝人工培養(yǎng)方式[9-11]。但是,該發(fā)酵工藝仍然存在不足,尤其是作為接種物的樟芝無性孢子產(chǎn)量較低,進(jìn)而導(dǎo)致種子制備過程繁瑣耗時,并大幅增加了生產(chǎn)成本[12-13]。因此,提高樟芝深層發(fā)酵產(chǎn)孢量對提高樟芝深層發(fā)酵生產(chǎn)效益及促進(jìn)樟芝大規(guī)模工業(yè)化生產(chǎn)的發(fā)展至關(guān)重要?;诖耍緢F隊前期也對促進(jìn)樟芝深層發(fā)酵無性產(chǎn)孢效應(yīng)因子篩選及其作用機制進(jìn)行了大量研究[12-16]。
牛樟樹(Cinnamomum kanehiraeHay)是樟屬植物的一種,也是野生牛樟芝唯一的天然寄主,通常生長在氣候溫暖濕潤及土壤肥沃的高海拔地區(qū)[17-18]。牛樟樹本身具有抑菌、防腐、抗癌等功效[18-20]。此外,Zhang Zhang等[21]發(fā)現(xiàn),在平皿培養(yǎng)樟芝時添加牛樟樹枝勻漿,可提高樟芝菌絲體中的三萜含量。轉(zhuǎn)錄組學(xué)分析發(fā)現(xiàn),牛樟樹勻漿通過調(diào)節(jié)參與三萜生物合成的關(guān)鍵基因HMGR和SQS的表達(dá)來促進(jìn)三萜合成;Zeng Wenwen等[22]發(fā)現(xiàn),在固態(tài)發(fā)酵樟芝時添加牛樟樹葉乙醇提取物可有效促進(jìn)樟芝菌絲體的生長及酚類化合物的合成;同時,Hsu等[23]發(fā)現(xiàn),香樟樹枝水提物中的多糖類物質(zhì)顯著促進(jìn)樟芝菌絲體生長;Lu Zhenming等[24]發(fā)現(xiàn),低質(zhì)量濃度(0.05 g/L)的香樟樹枝石油醚提取物顯著促進(jìn)樟芝深層發(fā)酵菌絲生長及三萜類物質(zhì)的合成。以上研究證明,牛樟樹或其他樟屬植物中存在一些促進(jìn)樟芝生長、繁殖或活性產(chǎn)物合成的物質(zhì)。目前已從牛樟樹的樹干或樹葉中分離到香豆素、類固醇、木脂素、芝麻素、芫花素、苯甲酸-2-甲基丙酯等物質(zhì)[20,25-26]。
本團隊前期研究了牛樟樹木屑的4 種溶劑(水、甲醇、乙酸乙酯及石油醚)提取物對樟芝深層發(fā)酵無性產(chǎn)孢的影響,結(jié)果表明,只有牛樟樹水提物(aqueous extract ofC.kanehiraeHay,CWE)顯著促進(jìn)樟芝無性產(chǎn)孢,且在最佳質(zhì)量濃度(60 μg/mL)下使樟芝產(chǎn)孢量較對照組(不添加CWE)提高58%左右[27]。但前期研究未對CWE中促進(jìn)樟芝無性產(chǎn)孢效應(yīng)物進(jìn)行分離及鑒定等深入研究。因此,為了進(jìn)一步完善上述研究,本研究采用液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用(liquid chromatography-mass spectrometry,LC-MS)分析法對CWE的不同有機溶劑萃取物進(jìn)行成分分析,并對相關(guān)化合物促進(jìn)樟芝無性產(chǎn)孢的效果進(jìn)行驗證,最終明確CWE中促進(jìn)樟芝無性產(chǎn)孢的物質(zhì)并優(yōu)化其最佳添加量,為進(jìn)一步提高樟芝深層發(fā)酵無性孢子產(chǎn)量及促進(jìn)樟芝深層發(fā)酵工業(yè)化生產(chǎn)提供理論依據(jù)和實踐基礎(chǔ)。
樟芝菌株購自美國菌種保藏中心,編號為ATCC200183。
野生牛樟樹枯木 福建皓天生物科技有限公司;赤蘚糖醇(純度98%)、甜菜堿(純度98%)北京索萊寶科技有限公司;正丁醇、乙酸乙酯、氯仿、葡萄糖、酵母粉、硫酸鎂及磷酸二氫鉀等常規(guī)試劑(均為分析純)國藥集團化學(xué)試劑有限公司。
BSA124S電子天平 蘇州江東精密儀器有限公司;YXQ-50SII高壓蒸汽滅菌鍋 上海博迅實業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠;XSP-18A顯微鏡 上海彼愛姆光學(xué)儀器制造有限公司;QT-3多功能搖床 上海琪特分析儀器有限公司;TG-16WS高速離心機 湖南湘儀離心機儀器有限公司;RE-52B旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 上海雅蓉生物儀器設(shè)備有限公司;DGX-9053B-2烘箱 上海?,攲嶒炘O(shè)備有限公司;Dionex Ultimate 3000 LC-MS儀 美國賽默飛世爾科技公司。
1.3.1 CWE的制備
準(zhǔn)確稱取20 g牛樟樹木屑,加入400 mL去離子水,90 ℃水浴提取3 h后,用4 層紗布過濾并收集濾液。重復(fù)提取3 次,合并濾液并離心(6 000 r/min、10 min、4 ℃)收集上清,再用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀將上清濃縮至黏稠狀后,75 ℃烘干并稱質(zhì)量,即得CWE。用去離子水復(fù)溶CWE并使其最終質(zhì)量濃度為10 mg/mL,即得CWE母液,分裝成10 mL每管后保存于-20 ℃冰箱中備用[27]。
1.3.2 CWE醇沉及萃取
1.3.2.1 CWE醇沉
取10 mL CWE母液,加入30 mL無水乙醇,混勻后于4 ℃冰箱靜置過夜,8 000 r/min離心10 min(4 ℃),分別收集上清和沉淀部分。其中,上清液部分置于75 ℃烘箱中濃縮至10 mL(若體積不足則用去離子水定容),即得CWE醇沉上清液;沉淀部分置于75 ℃烘箱中干燥后用去離子水復(fù)溶并定容至10 mL,即得CWE醇沉沉淀溶液。將CWE醇沉上清液和沉淀溶液保存于4 ℃冰箱中備用。
1.3.2.2 上清液分級萃取
將10 mL上清液與10 mL正丁醇振蕩(200 r/min)混合30 min后,加入分液漏斗中靜置分層,收集上層正丁醇萃取相,75 ℃烘干后即得上清液正丁醇萃取物DCE;再將下層水相與乙酸乙酯等體積振蕩(200 r/min)混合30 min后,加入分液漏斗中靜置分層,收集上層乙酸乙酯萃取相,75 ℃烘干后即得上清液乙酸乙酯萃取物YZE;下層水相繼續(xù)與氯仿等體積振蕩(200 r/min)混合30 min,分液漏斗分層后,收集下層氯仿萃取相,75 ℃烘干后即得上清液氯仿萃取物L(fēng)FE;上層水相濃縮烘干后,即為上清液萃取剩余物WTE。
1.3.3 上清液萃取物L(fēng)C-MS檢測分析
將上述DCE、YZE、LFE及WTE分別用去離子水配制成質(zhì)量濃度為20 mg/L的溶液,用0.22 μm微孔濾膜過濾后,取適量濾液加入檢測瓶進(jìn)行LC-MS檢測分析,檢測條件[28]為:色譜條件:色譜柱:
ACQUITY UPLC?HSS T3(2.1×150 mm,1.8 μm);自動進(jìn)樣器溫度8 ℃;流速0.25 mL/min;柱溫40 ℃;進(jìn)樣量2 μL;流動相:正離子0.1%甲酸溶液(C)-0.1%甲酸-乙腈(D),負(fù)離子5 mmol/L甲酸銨溶 液(A )-乙腈(B );梯度洗脫程序:0~1 min,2% B/D;1~9 min,2%~50% B/D;9~12 min,50%~98% B/D;12~13.5 min,98% B/D;13.5~14 min,9 8%~2% B/D;14~20 min,2% D(正模式)(14~17 min,2% B(負(fù)模式))。質(zhì)譜條件:儀器使用電噴霧離子源,正負(fù)離子電離模式,正離子噴霧電壓為3.50 kV,負(fù)離子噴霧電壓為2.50 kV,鞘氣壓力30 arb,輔助氣壓力10 arb。毛細(xì)管溫度325 ℃,以分辨率60 000進(jìn)行全掃描,掃描范圍m/z81~1 000,并采用高能碰撞解離進(jìn)行二級裂解,碰撞能為30 eV,同時采用動態(tài)排除去除無必要的MS/MS信息。
1.3.4 樟芝深層發(fā)酵培養(yǎng)
將樟芝無性孢子按1.0×106個/mL接種到裝有100 mL液體培養(yǎng)基(含葡萄糖20 g/L、酵母粉2 g/L、MgSO4?7H2O 3 g/L、KH2PO43 g/L,pH 4.5)的500 mL錐形瓶中,于搖床中26 ℃、150 r/min培養(yǎng)11 d[29]。
1.3.5 CWE不同組分對樟芝深層發(fā)酵產(chǎn)孢量的影響
1.3.5.1 不同醇沉組分對產(chǎn)孢量的影響
將1.3.1節(jié)制備的CWE母液及1.3.2.1節(jié)CWE醇沉上清液和沉淀溶液用0.45 μm無菌微孔濾膜過濾除菌后,分別吸取600 μL加入100 mL滅菌冷卻后的液體培養(yǎng)基中(各組分終質(zhì)量濃度均為60 μg/mL),再按1.3.4節(jié)方法進(jìn)行接種和發(fā)酵培養(yǎng),從第6天開始每日定時取樣檢測產(chǎn)孢量,以添加等體積(600 μL)去離子水作為空白對照。
1.3.5.2 不同上清液萃取組分對產(chǎn)孢量的影響
將1.3.2.2節(jié)CWE分級萃取后的4 個組分(DCE、YZE、LFE及WTE)分別用去離子水配制成質(zhì)量濃度為10 mg/mL的母液,用0.45 μm無菌微孔濾膜過濾除菌后,分別吸取100、300、500 μL加入100 mL滅菌冷卻后的液體培養(yǎng)基中(各組分終質(zhì)量濃度分別為10、30、50 μg/mL),再按1.3.4節(jié)方法進(jìn)行接種和發(fā)酵培養(yǎng),從第6天開始每日定時取樣檢測產(chǎn)孢量,以添加500 μL去離子水作為空白對照。
1.3.6 甜菜堿和赤蘚糖醇對樟芝深層發(fā)酵產(chǎn)孢量的影響
1.3.6.1 不同質(zhì)量濃度的甜菜堿對樟芝產(chǎn)孢量的影響
將甜菜堿用去離子水配制成質(zhì)量濃度為5 mg/mL的原液,再用去離子水分別稀釋至原液質(zhì)量濃度的1/5及1/25,將原液和所有稀釋液用0.45 μm微孔濾膜過濾除菌后,分別吸取100 μL加入100 mL滅菌冷卻后的液體培養(yǎng)基中(甜菜堿終質(zhì)量濃度分別為0.2、1.0、5.0 μg/mL),再按1.3.4節(jié)方法進(jìn)行接種和發(fā)酵培養(yǎng),從第6天開始每日定時取樣檢測產(chǎn)孢量,以添加等體積(100 μL)去離子水作為空白對照。
1.3.6.2 不同質(zhì)量濃度的赤蘚糖醇對樟芝深層發(fā)酵的影響
將赤蘚糖醇用去離子水配制成質(zhì)量濃度為5 mg/mL的原液,再用去離子水分別稀釋至原液質(zhì)量濃度的1/2、1/5、1/10及1/20,將原液和所有稀釋液用0.45 μm微孔濾膜過濾除菌后,分別吸取200 μL加入100 mL滅菌冷卻后的液體培養(yǎng)基中(赤蘚糖醇終質(zhì)量濃度分別為0.5、1.0、2.0、5.0、10.0 μg/mL),再按1.3.4節(jié)方法進(jìn)行接種和發(fā)酵培養(yǎng),以添加等體積(200 μL)去離子水作為空白對照。從第6天開始每日定時取樣檢測產(chǎn)孢量。發(fā)酵結(jié)束(11 d)后,檢測對照組和赤蘚糖醇最佳添加質(zhì)量濃度組的生物量、胞內(nèi)多糖產(chǎn)量及總?cè)飘a(chǎn)量等指標(biāo)。
1.3.7 樟芝深層發(fā)酵相關(guān)指標(biāo)測定
1.3.7.1 產(chǎn)孢量和生物量測定
發(fā)酵結(jié)束后的發(fā)酵液用4 層紗布過濾,取適量濾液用血球計數(shù)板于光學(xué)顯微鏡下對樟芝節(jié)孢子進(jìn)行計數(shù)并計算產(chǎn)孢量,單位為個/mL;同時,濾渣(即樟芝菌絲體)用去離子水沖洗3 遍后,放入75 ℃烘箱中烘干并稱質(zhì)量,計算生物量,單位為g/L[27]。
1.3.7.2 胞內(nèi)多糖和總?cè)飘a(chǎn)量測定
將測完生物量的樟芝菌絲體粉碎后,準(zhǔn)確稱取2 g加入10 mL蒸餾水,95 ℃水浴提取2 h,收集上清。重復(fù)提取3 次并合并上清,用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀濃縮至10 mL左右,再加入3 倍體積的無水乙醇,混勻后放入4 ℃冰箱中靜置過夜,8 000 r/min離心10 min(4 ℃),收集沉淀并置于75 ℃烘箱中烘干,稱質(zhì)量并計算胞內(nèi)多糖產(chǎn)量[27]。同時,采用香草醛-高氯酸法測定樟芝菌絲體中總?cè)坪俊?側(cè)朴眉状继崛。捎梅止夤舛扔嬙?50 nm波長處檢測吸光度,以齊墩果酸為標(biāo)準(zhǔn)品繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線及生物量計算總?cè)飘a(chǎn)量[27]。
每組實驗均設(shè)置3 個生物重復(fù),所有數(shù)據(jù)均采用平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示,采用Origin Pro 8.5軟件進(jìn)行繪圖,采用SPSS 22.0軟件及單因素方差分析法進(jìn)行差異顯著性分析,差異顯著水平為P<0.05。
前期研究發(fā)現(xiàn),在培養(yǎng)基中添加60 μg/mL的CWE可顯著促進(jìn)樟芝深層發(fā)酵無性產(chǎn)孢,產(chǎn)孢量較對照組提高58%左右[27]。由圖1可知,CWE醇沉沉淀對樟芝產(chǎn)孢量無明顯影響,而CWE醇沉上清明顯促進(jìn)樟芝無性產(chǎn)孢且促進(jìn)效果與CWE相當(dāng)??梢姡珻WE中的效應(yīng)物主要存在于CWE醇沉上清中。
圖1 CWE不同醇沉組分對樟芝產(chǎn)孢量的影響Fig.1 Effects of different fractions obtained from CWE by alcohol precipitation on the sporulation of A.cinnamomea
由圖2可知,10~50 μg/mL WTE對樟芝無性產(chǎn)孢均無任何促進(jìn)效果,說明效應(yīng)物已被萃取到有機溶劑中,在萃取剩余物中已無殘留或殘留量甚微;添加10~50 μg/mL的DCE對樟芝產(chǎn)孢亦無任何促進(jìn)效果,相反,高質(zhì)量濃度(50 μg/mL)的DEC明顯抑制樟芝產(chǎn)孢,說明DCE中幾乎不含效應(yīng)物,甚至含有抑制樟芝無性產(chǎn)孢的物質(zhì);添加10~50 μg/mL的YZE和LFE均明顯促進(jìn)樟芝無性產(chǎn)孢,且LFE的促進(jìn)效果優(yōu)于YZE。其中,YZE的最佳添加質(zhì)量濃度為50 μg/mL,此時樟芝最大產(chǎn)孢量(6.33×107個/mL)較對照組提高35.35%;LFE的最佳添加質(zhì)量濃度為30 μg/mL,此時樟芝最大產(chǎn)孢量(7.10×107個/mL)較對照組提高52.02%。上述結(jié)果表明,效應(yīng)物主要存在于YZE和LFE中,且在LFE中的含量(質(zhì)量分?jǐn)?shù))明顯高于YZE。
圖2 不同質(zhì)量濃度的DCE(A)、YZE(B)、LFE(C)及WTE(D)對樟芝產(chǎn)孢量的影響Fig.2 Effects of different concentrations of DCE (A),YZE (B),LFE (C)and WTE (D) on the sporulation of A.cinnamomea
為明確CWE中促進(jìn)樟芝無性產(chǎn)孢的主要效應(yīng)物,對CWE醇沉上清的4 個萃取組分進(jìn)行LC-MS檢測分析,每個組分中質(zhì)量分?jǐn)?shù)排名前10的物質(zhì)信息見表1。
表1 CWE醇沉上清液分級萃取組分中含量排名前10的物質(zhì)Table 1 Top 10 most abundant compounds in different fractions obtained from the supernatant after alcohol precipitation of CWE
綜合表1和圖2的結(jié)果可知,LFE和YZE均明顯促進(jìn)樟芝無性產(chǎn)孢,而LFE中質(zhì)量分?jǐn)?shù)較高(10%以上)的物質(zhì)分別為赤蘚糖醇和7-甲氧基香豆素,YZE中質(zhì)量分?jǐn)?shù)較高(6%以上)的物質(zhì)分別為甲吡唑、赤蘚糖醇和甜菜堿。因此,效應(yīng)物應(yīng)為赤蘚糖醇、7-甲氧基香豆素、甲吡唑和甜菜堿中的一種或幾種。DCE和WTE均無任何促樟芝無性產(chǎn)孢效果,而DCE和WTE中質(zhì)量分?jǐn)?shù)最高(13%以上)的物質(zhì)均為甲吡唑,因此,可以確定甲吡唑并非效應(yīng)物。同時,高質(zhì)量濃度的DCE明顯抑制樟芝無性產(chǎn)孢(圖2),可見甲吡唑?qū)φ林o性產(chǎn)孢可能有抑制作用。此外,YZE中質(zhì)量分?jǐn)?shù)最高的物質(zhì)也是甲吡唑,而LFE中甲吡唑的質(zhì)量分?jǐn)?shù)相對較低(排名第6),這解釋了LFE促進(jìn)樟芝無性產(chǎn)孢的效果明顯優(yōu)于YZE的原因。YZE中質(zhì)量分?jǐn)?shù)排名前10的物質(zhì)并無7-甲氧基香豆素,LC-MS檢測7-甲氧基香豆素在YZE中的質(zhì)量分?jǐn)?shù)僅為0.37%??梢?,7-甲氧基香豆素并非效應(yīng)物。在促進(jìn)樟芝無性產(chǎn)孢效果最好的LFE中,質(zhì)量分?jǐn)?shù)最高的物質(zhì)為赤蘚糖醇,達(dá)12.78%。在促進(jìn)樟芝無性產(chǎn)孢效果僅次于LFE的YZE中,赤蘚糖醇的質(zhì)量分?jǐn)?shù)排名第2,為6.78%。此外,有文獻(xiàn)報道,以赤蘚糖醇為碳源可以顯著促進(jìn)哈茨木霉(Trichoderma harzianum)和棘孢木霉(Trichoderma asperellum)分生孢子的產(chǎn)生[30]。因此,赤蘚糖醇可能為CWE中促進(jìn)樟芝深層發(fā)酵無性產(chǎn)孢的主要效應(yīng)物;甜菜堿在YZE中的質(zhì)量分?jǐn)?shù)與赤蘚糖醇相當(dāng),均為6%以上。在LFE中,甜菜堿的質(zhì)量分?jǐn)?shù)也在3%以上。因此,甜菜堿亦可能為效應(yīng)物之一,但尚需進(jìn)一步驗證。
為驗證赤蘚糖醇和甜菜堿對樟芝深層發(fā)酵無性產(chǎn)孢是否具有促進(jìn)作用,考察不同質(zhì)量濃度商用赤蘚糖醇和甜菜堿對樟芝深層發(fā)酵無性產(chǎn)孢量的影響。由圖3可知,添加1.0 μg/mL甜菜堿對樟芝深層發(fā)酵無性產(chǎn)孢有輕微促進(jìn)作用,最大產(chǎn)孢量較對照組提高7.36%,但二者之間并無顯著差異??梢姡鸩藟A對樟芝深層發(fā)酵無性產(chǎn)孢無顯著促進(jìn)作用。相反,高質(zhì)量濃度(5.0 μg/mL)的甜菜堿對樟芝深層發(fā)酵無性產(chǎn)孢有明顯抑制作用。此外,添加1.0、2.0 μg/mL的赤蘚糖醇均明顯提高樟芝深層發(fā)酵無性孢子產(chǎn)量。其中,添加1.0 μg/mL的赤蘚糖醇時,最大產(chǎn)孢量達(dá)6.78×107個/mL,較對照組提高55.17%,促進(jìn)效果較為明顯;添加2.0 μg/mL的赤蘚糖醇對樟芝無性產(chǎn)孢的促進(jìn)效果略低于1.0 μg/mL;但當(dāng)赤蘚糖醇的添加質(zhì)量濃度高于5.0 μg/mL時,則對樟芝無性產(chǎn)孢表現(xiàn)出明顯的抑制效果,產(chǎn)孢量大幅下降。
圖3 不同質(zhì)量濃度的赤蘚糖醇(A)和甜菜堿(B)對樟芝產(chǎn)孢量的影響Fig.3 Effects of different concentrations of erythritol (A) and betaine (B)on the sporulation of A.cinnamomea
綜上所述,赤蘚糖醇確為CWE中促進(jìn)樟芝深層發(fā)酵無性產(chǎn)孢的主要效應(yīng)物,但促進(jìn)效果具有嚴(yán)重的濃度依賴性。最適添加質(zhì)量濃度范圍為1.0~2.0 μg/mL。當(dāng)添加質(zhì)量濃度過低(≤0.5 μg/mL)時,無明顯促進(jìn)效果;當(dāng)添加質(zhì)量濃度過高(≥5.0 μg/mL)時,則表現(xiàn)出明顯抑制效果。
最后,考察赤蘚糖醇在最佳添加質(zhì)量濃度(1.0 μg/mL)下對樟芝深層發(fā)酵生物量、胞內(nèi)多糖產(chǎn)量及總?cè)飘a(chǎn)量的影響。由表2可知,添加1.0 μg/mL的赤蘚糖醇對樟芝深層發(fā)酵過程中菌絲體的生長有顯著促進(jìn)作用(P<0.05),使生物量較對照組提高18.65%。同時,赤蘚糖醇對樟芝胞內(nèi)多糖的合成具有較為顯著促進(jìn)作用(P<0.05),使胞內(nèi)多糖產(chǎn)量較對照組提高260.13%,效果極其可觀。但是,赤蘚糖醇對樟芝深層發(fā)酵總?cè)频暮铣杉爱a(chǎn)量無顯著影響。
表2 赤蘚糖醇對樟芝深層發(fā)酵活性物質(zhì)產(chǎn)量的影響Table 2 Effect of erythritol on the biomass and bioactive substance yield from A.cinnamomea in submerged fermentation
CWE中促進(jìn)樟芝深層發(fā)酵無性產(chǎn)孢的主要效應(yīng)物為赤蘚糖醇,其最佳添加質(zhì)量濃度為1.0 μg/mL,使樟芝產(chǎn)孢量較對照組提高55.17%。此外,1.0 μg/mL的赤蘚糖醇還顯著促進(jìn)樟芝深層發(fā)酵過程中菌絲體生長及胞內(nèi)多糖的合成,使胞內(nèi)多糖產(chǎn)量較對照組提高260.13%,效果較為顯著。本研究成果可大幅提高樟芝深層發(fā)酵工業(yè)化生產(chǎn)過程中種子制備效率及胞內(nèi)多糖生產(chǎn)效率,對推動樟芝深層發(fā)酵工業(yè)化生產(chǎn)進(jìn)程具有重要意義。