李 敏,賀姍姍,王宏宇,莊家瑩,金永日,李緒文
(1. 鄭州輕工業(yè)大學(xué)食品與生物工程學(xué)院, 鄭州 450001;2. 吉林大學(xué)化學(xué)學(xué)院, 長(zhǎng)春 130012)
雜環(huán)胺(HAAs)是蛋白質(zhì)或氨基酸在加熱過程中產(chǎn)生的熱解產(chǎn)物,具有潛在的致癌致突變性,目前已經(jīng)發(fā)現(xiàn)并鑒定出超過30 種HAAs,可在經(jīng)熱處理的富含蛋白質(zhì)的食物[1,2]、 咖啡[3]、 環(huán)境水[4]及香煙煙氣[5,6]中檢測(cè)到. 香煙煙氣是使人類暴露于HAAs 的一種重要途徑,受到了廣泛關(guān)注. 1962 年,Poindexter 和Carpenter[7]首次在香煙煙氣中檢出2 種HAAs:β-咔啉和咔啉. 1997 年,Hoffmann[8]發(fā)現(xiàn)Harman,Norharman,AαC和MeAαC等8種雜環(huán)胺為香煙主流煙氣中的主要有害物質(zhì). AαC是香煙煙霧中含量最多的HAAs,其含量為25~260 ng/支[9]. 香煙煙氣中HAAs含量雖低,但具有顯著的生物毒性,長(zhǎng)期暴露于這些HAAs 中會(huì)對(duì)人體構(gòu)成潛在的健康威脅. 因此,有必要開發(fā)一種靈敏、 快速的評(píng)估和監(jiān)測(cè)HAAs暴露水平的方法.
評(píng)估和監(jiān)測(cè)HAAs 的暴露水平主要是通過檢測(cè)尿液、 血漿、 膽汁、 毛發(fā)和乳汁等生物樣品中的HAAs及其代謝產(chǎn)物的含量. 相比之下,尿液樣品采集方便、 無侵害性,常作為HAAs暴露水平監(jiān)測(cè)的有效生物樣品[5]. 雜環(huán)胺的檢測(cè)方法主要有高效液相色譜(HPLC)法和液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用(LC-MS)法.由于尿液中的基質(zhì)干擾和HAAs含量極低(通常為ng/g),為準(zhǔn)確測(cè)定其含量,在進(jìn)行HPLC或LC-MS分析之前,需要進(jìn)行適當(dāng)?shù)臉悠奉A(yù)處理. 目前,尿液中雜環(huán)胺分析常用的樣品前處理方法為液-液萃?。↙LE)串聯(lián)固相萃?。⊿PE)法. Fu 等[5]建立了一種LLE-SPE 法結(jié)合UHPLC-MS/MS 測(cè)定吸煙者尿液中HAAs 的方法,首先使用乙酸乙酯提取HAAs,然后使用ProElutPXC(150 mg)固相萃取柱純化. 但LLE-SPE 方法繁瑣、 耗時(shí)且需使用較多的有機(jī)溶劑. 基于此,Zhang 等[10]建立了一種磁性固相萃取(MSPE)方法用于分析吸煙者尿液中的HAAs,但該方法仍需使用有機(jī)溶劑(乙腈)洗脫目標(biāo)HAAs且磁性吸附劑的制備過程繁瑣且耗時(shí). 因此,開發(fā)簡(jiǎn)單、 快速且環(huán)保的樣品前處理方法對(duì)于尿液中HAAs的檢測(cè)分析具有重要意義.
雙水相體系(ATPS)具有環(huán)保、 分離時(shí)間短及操作簡(jiǎn)便等特點(diǎn),被廣泛應(yīng)用于蛋白質(zhì)、 DNA、 金屬離子和抗生素等多種目標(biāo)化合物的提取與分離[11,12]. 按照其兩相物質(zhì)組成的不同,ATPS體系可分為高聚物-高聚物體系、 表面活性劑-表面活性劑體系、 高聚物-鹽體系和離子液體-鹽體系(IL-ATPS)[13,14]等. 與其它ATPS 相比,IL-ATPS 體系具有相分離快、 黏度低、 萃取效率高和無乳化現(xiàn)象等特點(diǎn),引起了研究者的重點(diǎn)關(guān)注[15,16]. 然而,大多數(shù)ILs制備困難、 成本高,其潛在生物毒性(如吡啶或咪唑基IL)對(duì)環(huán)境也有一定影響[17,18],從而限制了IL-ATPS的進(jìn)一步發(fā)展.
低共熔溶劑(DES)作為一種新興的綠色溶劑,克服了ILs的缺點(diǎn),它是由氫鍵供體(HBD)和氫鍵受體(通常為季銨鹽,HBA)組合而成的二元或三元共晶混合物,其熔點(diǎn)低于單獨(dú)任一組分的熔點(diǎn)[19,20].DES被稱為類離子液體混合物,具有與ILs相媲美的理化性質(zhì),還有制備簡(jiǎn)單、 生物降解性好及成本低等特性,可作為ILs的潛在替代品[21,22]. 2014年,Zeng等[23]首次提出DES-ATPS體系,用于從水溶液中提取牛血清白蛋白. 此后,DES-ATPS在蛋白質(zhì)、 DNA、 RNA和其它目標(biāo)化合物[24~26]的萃取研究中展現(xiàn)出較大的應(yīng)用潛力,成為近幾年研究的熱點(diǎn).
本文制備了7種以氯化膽堿(ChCl)為氫鍵受體的DES,與無機(jī)鹽構(gòu)建成雙水相體系,并結(jié)合UPLC檢測(cè)技術(shù),用于分析吸煙者尿液中5種HAAs(IQ,IQ[4,5-b],Harman,Norharman和Phe-P-1),以期為香煙煙氣中HAAs暴露風(fēng)險(xiǎn)評(píng)估提供新的研究思路.
2-氨基-3-甲基-咪唑并[4,5-f]-喹啉(IQ,純度>98%)、 2-氨基-1-甲基-咪唑并[4,5-b]-喹啉(IQ[4,5-b],純度>98%)、 1-甲基- 9H-吡啶并[3,4-b]吲哚(Harman,純度>98%)、 9H-吡啶并[3,4-b]吲哚(Norharman,純度>98%)和2-氨基-5-苯基吡啶(Phe-P-1,純度>95%),加拿大Toronto Research Chemicals公司; 甲醇和乙腈,色譜純,美國(guó)Thermo Fisher Scientific公司; 乙酸和乙酸銨,色譜純,天津大茂化學(xué)試劑廠; 氯化膽堿、 K2HPO4、 K3PO4、 1,4-丁二醇(1,4-Butanediol)、 乙二醇(Ethylene glycol)、甘油(Glycerol)、 木糖醇(Xylitol)、D-山梨醇(D-Sorbitol)、D-(+)-葡萄糖[D-(+)-Glucose]和meso-赤鮮醇(meso-Erythritol),分析純,上海阿拉丁生化科技股份有限公司.
吸煙者尿液樣本由中國(guó)煙草總公司鄭州煙草研究院提供,包括20名吸煙者(來自煙齡1~3年的健康成年男性)和20名非吸煙者. 在采集樣本前,志愿者禁止攝入肉食和烘烤類食物2天,實(shí)驗(yàn)期間吸煙者沒有吸煙限制. 然后,收集志愿者24 h的尿液樣品,儲(chǔ)存于-80 ℃冰箱中備用.
Agilent 1290 Infinity II 型超高效液相色譜儀(UPLC),美國(guó)Agilent 公司; Bruker Avance Ⅲ 600 M 型超導(dǎo)核磁共振波譜儀(1H NMR,600 MHz,TMS為內(nèi)標(biāo),DMSO-d6為溶劑),德國(guó)Bruker 公司; Vertex 70型傅里葉變換紅外光譜儀(溴化鉀壓片),德國(guó)Bruker公司.
1.2.1 UPLC色譜條件 色譜柱為Agilent ZORBAX XDB C18柱(4.6 mm×250 mm,5 μm),流動(dòng)相由乙腈(A)和水(B,含1 mmol/L 乙酸銨和0.05%乙酸)組成,梯度洗脫條件如下: 0~5.0 min,15%A; 5.0~5.1 min,15%~20%A;5.1~11.0 min,20%A; 11.0~11.1 min,20%~30%A; 11.1~23.0 min,30%A; 柱溫為30 ℃; 流速為1.0 mL/min; 檢測(cè)波長(zhǎng)為248 nm; 進(jìn)樣量為10 μL. 所得UPLC 色譜圖如圖1所示.
Fig.1 UPLC chromatograms of the mixed standardsolution(a), the spiked urine sample extracted with DES-APTS(b), the spiked urine sample extracted without DES-APTS(c) and the blank urine sample(d)Peak 1: IQ; peak 2: IQ[4,5-b]; peak 3: Harman; peak 4:Norharman; peak 5: Phe-P-1.
1.2.2 DES 的制備 以氯化膽堿(ChCl)為HBA,分別與1,4-丁二醇、 乙二醇、 甘油、木糖醇、D-山梨醇、D-(+)-葡萄糖和meso-赤鮮醇按摩爾比1∶1 混合于100 mL 燒杯中,于130 ℃加熱攪拌,直至形成無色透明的溶液. 冷卻至室溫后,置于干燥器(硅膠)中保存,備用. 7種DES的組成見表1.
Table 1 Compositions of the synthesized DES using ChCl as HBA
1.2.3 雙水相體系相圖的繪制 使用濁點(diǎn)滴定法繪制相圖[27]. 準(zhǔn)確稱量一定質(zhì)量的DES于10 mL離心管中,將已知濃度的無機(jī)鹽溶液逐滴加入到該離心管中直到混合溶液變渾濁,記錄此時(shí)加入的無機(jī)鹽溶液的質(zhì)量; 隨后滴加蒸餾水使之變澄清,記錄此時(shí)加入水的質(zhì)量; 然后再逐滴加入已知濃度的無機(jī)鹽溶液,使之再次變混濁,再次記錄此時(shí)加入的無機(jī)鹽溶液的質(zhì)量; 反復(fù)進(jìn)行上述操作,直至獲取足夠多的數(shù)據(jù)來繪制相圖,x和y軸分別代表無機(jī)鹽和DES的質(zhì)量分?jǐn)?shù).
1.2.4 雙水相萃取 將尿液樣本在室溫下自然解凍,取1 mL 尿液樣本與90 μL 12 mol/L HCl 混合,于70 ℃下加熱3 h. 冷卻至室溫后,用10 mol/L NaOH溶液將尿液的pH值調(diào)至中性; 然后向尿液中加入混合標(biāo)準(zhǔn)溶液并渦旋振蕩30 s 使其混合均勻; 隨后加入200 mg ChCl/Buta 和0.8 g K2HPO4,渦旋振蕩3 min,在8000 r/min轉(zhuǎn)速下離心3 min. 從離心機(jī)取出后尿液樣本上下界面清晰,用微量注射器移取上層富DES相并記錄其體積,經(jīng)0.22 μm濾膜過濾,待UPLC檢測(cè).
傅里葉變換紅外光譜(FTIR)可以用于檢測(cè)化合物的化學(xué)鍵和官能團(tuán),從而掌握其結(jié)構(gòu)信息. ChCl和7 種DES 的FTIR 譜圖如圖2 所示. 650.4 和1050.2 cm-1處的吸收峰可分別歸屬為O—H 鍵的彎曲振動(dòng)和醇或糖的C—O 鍵(C—O—H)的伸縮振動(dòng). 7 種DES 在3400 cm-1附近均有顯著寬峰,表明存在大量的氫鍵. 與ChCl(3421.1 cm-1)相比,ChCl/EG,ChCl/G,ChCl/Sor,ChCl/Buta,ChCl/Glu,ChCl/Xyl 和ChCl/Ery 中O—H 鍵的伸縮振動(dòng)峰向低波數(shù)方向發(fā)生了移動(dòng)[28](3398.0,3394.1,3390.2,3388.3,3380.6,3394.1 和3384.5 cm-1),進(jìn)一步證實(shí)了氫鍵的存在.
Fig.2 FTIR spectra of ChCl and seven DES
為了進(jìn)一步驗(yàn)證DES 的結(jié)構(gòu),測(cè)定了以DMSO-d6為溶劑的7種DES 的1H NMR 譜圖. 圖3中δ3.17(s,9H),3.46(t,2H)和3.82(t,2H)處均為ChCl的質(zhì)子信號(hào),其余各信號(hào)均歸屬于相應(yīng)氫鍵供體的質(zhì)子信號(hào),并未出現(xiàn)其它新化學(xué)鍵的質(zhì)子信號(hào),說明制備過程中未發(fā)生化學(xué)反應(yīng)[29],進(jìn)一步說明氯化膽堿與氫鍵供體之間的作用力為氫鍵.
Fig.3 1H NMR spectra of ChCl and seven DES
雙水相相圖的每一條雙結(jié)線均由眾多成相臨界點(diǎn)構(gòu)成. 位于雙結(jié)線之上的區(qū)域代表該濃度下的鹽和低共熔溶劑具有成相能力,為雙水相體系; 雙結(jié)線之下的區(qū)域則是均一液體,無成相能力,為單相體系. 成相能力越強(qiáng),雙結(jié)線越接近坐標(biāo)原點(diǎn)[30]. 由圖4可知,當(dāng)無機(jī)鹽為K2HPO4時(shí),其與7種DES的成相能力依次為ChCl/Buta>ChCl/EG>ChCl/G>ChCl/Glu>ChCl/Sor≈ChCl/Ery>ChCl/Xyl. 由此可見,DES 種類不同,形成雙水相的能力不同,分析其原因可能與DES的親水性、 黏度和密度等多種因素有關(guān)[24,31].其中,親水性是影響相形成能力的主要因素之一,通常情況下氫鍵供體中羥基含量越少,親水性越弱,越有利于成相. 7種氫鍵供體[1,4-丁二醇、 乙二醇、 甘油、meso-赤鮮醇、 木糖醇、D-(+)-葡萄糖和D-山梨醇]含有的羥基數(shù)目分別為2,2,3,4,5,5和6,ChCl/Buta,ChCl/EG,ChCl/G,ChCl/Glu,ChCl/Sor與K2HPO4的成相能力符合上述規(guī)律,而ChCl/Ery 和ChCl/Xyl 則不符合,推測(cè)ChCl/Ery 和ChCl/Xyl 的成相能力還與DES 的黏度和密度有關(guān),進(jìn)一步證明了導(dǎo)致成相能力差異的原因是多種因素共同作用的結(jié)果.
Fig.4 Phase diagrams of DES-based ATPSWsalt, Wwater and WDES represent the weight of inorganic salt, water and DES, respectively; Wtotal is the sum of Wsalt, Wwater, and WDES.
進(jìn)一步比較了不同無機(jī)鹽(K2HPO4和K3PO4)對(duì)ChCl/Buta 相圖形成能力的影響. 由圖4 可知,ChCl/Buta-K2HPO4的成相能力強(qiáng)于ChCl/Buta-K3PO4.
2.3.1 DES類型的選擇 制備了以ChCl為氫鍵受體的7種DES,雖然氫鍵受體相同,但由于氫鍵供體的極性、 親水性等性質(zhì)的不同,制備得到的DES性質(zhì)也不同,影響了萃取溶劑與目標(biāo)物之間的相互作用,進(jìn)而影響萃取率[32]. 考察了7種不同DES對(duì)尿液中雜環(huán)胺回收率的影響,平行測(cè)定3次. 如圖5所示,當(dāng)使用ChCl/Xyl,ChCl/Glu和ChCl/Sor為萃取劑時(shí),雜環(huán)胺的回收率均低于40%,其原因可能是氫鍵供體[木糖醇、D-(+)-葡萄糖、D-山梨醇]含有—OH的數(shù)量較多,形成的DES(ChCl/Xyl,ChCl/Glu和ChCl/Sor)黏度較大,阻礙了ChCl/ATPS體系與雜環(huán)胺目標(biāo)分子之間的相互作用,故而出現(xiàn)較低的回收率. 相比之下,ChCl/Buta體系表現(xiàn)出較好的雜環(huán)胺回收率,且結(jié)合雙水相相圖的分相能力,實(shí)驗(yàn)選擇DES類型為ChCl/Buta.
Fig.5 Effect of the type of DES on recovery
2.3.2 DES用量的選擇 DES的用量直接影響到萃取效率,是能否將目標(biāo)分析物提取完全的關(guān)鍵性因素. 考察了不同DES使用量(50~350 mg)對(duì)雜環(huán)胺回收率的影響,平行測(cè)定3 次,結(jié)果如圖6所示. 結(jié)果表明,隨著DES使用量的不斷增加,回收率也不斷升高,當(dāng)DES 使用量增加到200 mg 時(shí),回收率達(dá)到最大值; 再繼續(xù)增大DES 的使用量,回收率略有下降,這可能是隨著DES使用量的進(jìn)一步增加,DES 相的黏度也會(huì)增加,不利于HAAs向DES相轉(zhuǎn)移,從而導(dǎo)致回收率的輕微下降. 因此,實(shí)驗(yàn)選擇ChCl/Buta使用量為200 mg.
Fig.6 Effect of the amount of DES on recoverySpiked concentration in 1 mL urine sample: IQ, 1.5 μg/mL; IQ[4,5-b], 3.0μg/mL; Harman, 1.5 μg/mL; Norharman, 1.5 μg/mL; Phe-P-1, 3.0 μg/mL.
2.3.3 無機(jī)鹽類型的選擇 無機(jī)鹽的加入能夠促進(jìn)雙水相的形成,不同種類的鹽與DES的成相能力不同,進(jìn)而影響目標(biāo)分析物的提取效率[33]. 首先,考察了4 種含鉀無機(jī)鹽(K2HPO4,KCl,K3PO4和KH2PO4)與ChCl/Buta的成相能力. 實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),KH2PO4和KCl與ChCl/Buta均不能形成雙水相體系,可能是因?yàn)镵H2PO4和KCl的水溶性較低. 然后,重點(diǎn)考察了ChCl/Buta-K2HPO4和ChCl/Buta-K3PO4兩種雙水相體系對(duì)雜環(huán)胺回收率的影響,平行測(cè)定3次,結(jié)果如圖7所示. 結(jié)果表明,ChCl/Buta-K2HPO4雙水相體系中雜環(huán)胺回收率稍高于ChCl/Buta-K3PO4體系. 另外,結(jié)合相圖可知K2HPO4比K3PO4具有更強(qiáng)的成相能力,且得到體積相同的DES 相時(shí),K2HPO4的用量少于K3PO4. 綜合考慮,實(shí)驗(yàn)選擇K2HPO4作為雙水相的無機(jī)鹽.
Fig.7 Effect of the type of inorganic salt on recoverySpiked concentration in 1 mL urine sample: IQ, 1.5μg/mL; IQ[4,5-b], 3.0 μg/mL; Harman, 1.5 μg/mL;Norharman, 1.5 μg/mL; Phe-P-1, 3.0 μg/mL.
2.3.4 無機(jī)鹽使用量的選擇 無機(jī)鹽的用量決定著是否能形成雙水相體系,同時(shí)也會(huì)降低目標(biāo)物在水相的溶解度,促使更多的目標(biāo)物轉(zhuǎn)移到DES 相,進(jìn)而影響萃取效率[34].考察了不同K2HPO4的使用量(0.2~1.4 g)對(duì)雜環(huán)胺回收率的影響,平行測(cè)定3 次. 如圖8 所示,當(dāng)K2HPO4加入量增加至0.4 g時(shí),還不能形成DES-ATPS 雙水相體系. 當(dāng)加入量為0.6 g 時(shí),開始形成雙水相體系,呈現(xiàn)清晰的兩相,此時(shí)雜環(huán)胺回收率急劇增加. 當(dāng)K2HPO4達(dá)到0.8 g 時(shí),雜環(huán)胺回收率達(dá)到最大值. 當(dāng)K2HPO4使用量繼續(xù)增加至1.2 g,雜環(huán)胺回收率趨于平穩(wěn),可能是因?yàn)镈ES 相中DES 含量趨于飽和,萃取效率增加緩慢; 當(dāng)K2HPO4用量大于1.2 g時(shí),可能是因?yàn)槿芤后w系黏度的增加不利于HAAs向DES相擴(kuò)散,導(dǎo)致萃取效率略有下降. 因此,實(shí)驗(yàn)選擇無機(jī)鹽用量為0.8 g.
Fig.8 Effect of the amount of K2HPO4 on recovery
2.3.5 pH值的選擇 由于HAAs是兩性物質(zhì),體系的pH值影響著溶液中HAAs的存在狀態(tài),進(jìn)而影響其萃取效率[35]. 實(shí)驗(yàn)中通過在尿液樣品中加入適量的氨水來調(diào)節(jié)體系的pH 值,考察了體系pH 值從7.5 到11.5 對(duì)雜環(huán)胺回收率的影響,平行測(cè)定3 次,結(jié)果如圖9 所示. 結(jié)果表明,當(dāng)體系的pH=10.5時(shí),雜環(huán)胺的回收率最高,這可能是因?yàn)榇藭r(shí)雜環(huán)胺以游離堿形式存在于樣品溶液中,更容易被萃取到DES相中. 因此,實(shí)驗(yàn)選擇體系pH值為10.5.
Fig.9 Effect of pH value of sample solution on recovery
2.3.6 萃取時(shí)間的選擇 采用渦旋振蕩輔助的方式提取目標(biāo)物,渦旋振蕩能夠促進(jìn)DES與樣品溶液充分接觸,促進(jìn)目標(biāo)物向DES相轉(zhuǎn)移,進(jìn)而提高雜環(huán)胺的萃取效率. 渦旋萃取時(shí)間太短會(huì)導(dǎo)致雜環(huán)胺提取不完全,時(shí)間過長(zhǎng)又會(huì)增加時(shí)間成本[36]. 考察了不同萃取時(shí)間(1~11 min)對(duì)雜環(huán)胺回收率的影響,平行測(cè)定3次. 如圖10所示,當(dāng)萃取時(shí)間從1 min增加到3 min時(shí),雜環(huán)胺回收率略有增加,繼續(xù)增加萃取時(shí)間,回收率變化不大. 因此,實(shí)驗(yàn)選擇萃取時(shí)間為3 min.
Fig.10 Effect of vortex time on recovery
2.3.7 離心時(shí)間的選擇 離心可以促進(jìn)DES相與水相之間形成清晰穩(wěn)定的界面,實(shí)驗(yàn)考察了不同離心時(shí)間(1~11 min)對(duì)界面清晰度的影響,平行測(cè)定3 次. 結(jié)果表明,當(dāng)離心時(shí)間為3 min 時(shí),上下兩相界面即能達(dá)到清晰.
通過測(cè)定線性、 檢出限(LODs)、 定量限(LOQs)、 準(zhǔn)確度和精密度,評(píng)估了所建立方法的分析性能,結(jié)果列于表2. 以待測(cè)樣品中雜環(huán)胺的濃度為橫坐標(biāo)(x),相應(yīng)的峰面積為縱坐標(biāo)(y)繪制工作曲線,其相關(guān)系數(shù)(R2)均大于0.999,表明該方法線性關(guān)系良好. 分別用3倍和10倍信噪比(S/N)確定方法的檢出限(LODs)和定量限(LOQs),分別為0.020~0.097 ng/g和0.19~0.39 ng/g.
Table 2 Analytical performances of the method
通過日內(nèi)和日間重復(fù)性實(shí)驗(yàn)考察了方法的精密度,5種雜環(huán)胺的日內(nèi)和日間相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)分別低于2.9%和3.2%,表明該方法具有較好的精密度和穩(wěn)定性.
通過加標(biāo)回收率考察了方法的準(zhǔn)確性,結(jié)果表明,在低、 中、 高3個(gè)加標(biāo)水平下雜環(huán)胺的回收率分別為81.9%~100.6%,82.5%~106.2%和84.0%~99.5%,均處于70%~120%之間,表明該方法準(zhǔn)確性良好.
將本文方法的加樣回收率、 檢出限、 精密度和有機(jī)溶劑消耗量等參數(shù)與文獻(xiàn)報(bào)道的其它方法進(jìn)行了比較,結(jié)果列于表3. 結(jié)果表明,LLE-SPE串聯(lián)法和兩步固相萃取串聯(lián)法需使用大量的有機(jī)溶劑,預(yù)處理過程繁瑣且耗時(shí),而本文方法不使用有機(jī)溶劑、 操作簡(jiǎn)單且前處理時(shí)間短; 磁性固相萃取法中磁性材料的制備步驟繁瑣、 操作麻煩、 耗時(shí)長(zhǎng),本文方法中DES合成簡(jiǎn)單,成本低廉且更綠色環(huán)保.
此外,表3數(shù)據(jù)還表明,DES-APTS方法具有更好或相當(dāng)?shù)臏?zhǔn)確度和精密度,檢出限高于LC-MS測(cè)定的檢出限,但在可接受的范圍內(nèi),符合相關(guān)標(biāo)準(zhǔn); 與LC-MS 相比,HPLC 儀器更易實(shí)現(xiàn)普及. 以上結(jié)果驗(yàn)證本文方法具有快速、 簡(jiǎn)便、 單樣品成本低及不使用有機(jī)溶劑等特點(diǎn),適用于尿液樣品中HAAs分析.
Table 3 Comparison of the present method with other methods
利用本文方法對(duì)20份非吸煙者和20份吸煙者尿液樣本進(jìn)行了分析,結(jié)果表明,僅在其中2份吸煙者尿液中檢測(cè)出Harman,但均低于定量限.
建立了一種低共熔溶劑/無機(jī)鹽雙水相萃取(DES-APTS)結(jié)合超高效液相色譜法測(cè)定吸煙者和非吸煙者尿液中5種雜環(huán)胺含量的方法. 首先,以氯化膽堿為氫鍵受體,與不同的氫鍵供體制備7種不同的DES,利用FTIR和1H NMR對(duì)其結(jié)構(gòu)進(jìn)行了表征,并討論了不同的氫鍵供體對(duì)成相能力的影響規(guī)律; 其次,通過單因素實(shí)驗(yàn)確定了DES-APTS體系的最優(yōu)萃取條件,并評(píng)價(jià)了其分析性能. 結(jié)果表明,本文方法具有良好的線性、 準(zhǔn)確性和重現(xiàn)性. 與文獻(xiàn)報(bào)道的方法相比,本文方法具有環(huán)境友好、 操作簡(jiǎn)單、 快速及單樣品成本低等特性,為評(píng)估香煙煙氣中雜環(huán)胺的暴露水平提供一種有效方法,為卷煙危害性評(píng)價(jià)提供新的研究思路,同時(shí)拓寬了DES-ATPS體系的應(yīng)用領(lǐng)域. 此外,低共熔溶劑合成簡(jiǎn)單,成本低廉且更綠色環(huán)保,可作為離子液體的潛在替代品,在樣品前處理領(lǐng)域具有良好的發(fā)展前景和應(yīng)用潛力.