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        滅菌方式對(duì)人參連作土壤養(yǎng)分及真菌群落結(jié)構(gòu)的影響

        2024-03-25 21:42:39戰(zhàn)宇苗馨月王二剛周一閆寧陳長(zhǎng)寶李瓊
        江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2024年2期
        關(guān)鍵詞:連作障礙土壤養(yǎng)分人參

        戰(zhàn)宇 苗馨月 王二剛 周一 閆寧 陳長(zhǎng)寶 李瓊

        摘要: 強(qiáng)還原土壤滅菌和氯化苦土壤熏蒸是2種常用的農(nóng)業(yè)措施,為了探尋2種滅菌方式對(duì)人參連作土壤養(yǎng)分及真菌群落結(jié)構(gòu)的影響,采用化學(xué)分析和高通量測(cè)序技術(shù)研究氯化苦土壤熏蒸技術(shù)加復(fù)合微生物菌肥(SFC_CB)、強(qiáng)還原土壤滅菌技術(shù)加復(fù)合微生物菌肥(RSD_CB)和氯化苦土壤熏蒸技術(shù)加強(qiáng)還原土壤滅菌技術(shù)(SFC_RSD)對(duì)人參連作土壤養(yǎng)分及真菌群落結(jié)構(gòu)的影響。結(jié)果表明,SFC_CB處理組顯著提高了土壤有機(jī)質(zhì)(SOM)和全鉀(TK)含量,RSD_CB 處理組顯著提高了土壤電導(dǎo)率(EC值)和速效鉀(AK)、水解氮(AN)含量,SFC_RSD處理組顯著提高了土壤pH值和有效磷(AP)含量;與RSD_CB處理組相比,SFC_CB、SFC_RSD處理組顯著降低了土壤真菌群落豐富度、多樣性和均勻度,提高了覆蓋度;從不同處理土壤樣本中共檢測(cè)到5個(gè)真菌門(mén)、9個(gè)真菌綱、15個(gè)真菌目、19個(gè)真菌科和24個(gè)真菌屬,其中共有OTU被劃分為20個(gè)真菌屬,有17個(gè)真菌屬的相對(duì)豐度發(fā)生顯著變化,特有OTU被劃分為47個(gè)真菌屬,SFC_CB、RSD_CB、SFC_RSD處理組分別包含15、29、18個(gè)屬。此外,土壤真菌群落多樣性與土壤養(yǎng)分密切相關(guān),其中EC值、pH值、SOM含量、AK含量和AP含量是主要驅(qū)動(dòng)因素。從不同處理土壤中共鑒定出12個(gè)真菌功能群,且各真菌功能群在不同處理中的相對(duì)豐度不同。綜上,2種滅菌方式均可顯著改善土壤結(jié)構(gòu),提高真菌多樣性,重組核心微生物群,因此強(qiáng)還原土壤滅菌技術(shù)有望替代傳統(tǒng)的化學(xué)熏蒸技術(shù)。

        關(guān)鍵詞: 人參;連作障礙;強(qiáng)還原土壤滅菌;土壤養(yǎng)分;真菌群落

        中圖分類(lèi)號(hào):S567.5+10.6 ?文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A

        文章編號(hào):1002-1302(2024)02-0235-10

        人參(Panax ginseng C. A. Mey.)為五加科人參屬多年生宿根草本植物[1],具有豐富的營(yíng)養(yǎng)價(jià)值和藥用功效,是我國(guó)中醫(yī)藥和大健康產(chǎn)業(yè)獨(dú)具特色的重要資源[2-3]。但是,人參忌地性極強(qiáng),栽過(guò)人參的土壤(俗稱(chēng)老參地)在30年內(nèi)不能重復(fù)種植,否則會(huì)出現(xiàn)“燒須”“紅皮”“爛根”等問(wèn)題,嚴(yán)重時(shí)甚至?xí)?dǎo)致植株死亡[4]。因此,重復(fù)利用有限參地資源、縮短參業(yè)土地資源再生周期顯得越來(lái)越迫切。

        土壤化學(xué)熏蒸是目前生產(chǎn)上應(yīng)用最廣泛的抑制土傳病原菌的方法,氯化苦是常用的土壤熏蒸劑之一,能殺死土壤中85%以上的細(xì)菌、真菌和放線菌,但是其土傳病原菌的數(shù)量在再植作物根系分泌物的誘導(dǎo)下會(huì)迅速回升[5-6]。同時(shí),隨著國(guó)家對(duì)農(nóng)業(yè)可持續(xù)發(fā)展和人類(lèi)健康關(guān)注度的日益提高,傳統(tǒng)的化學(xué)熏蒸劑已逐步被淘汰。強(qiáng)還原土壤滅菌法(reductive soil disinfestation,RSD)由日本[7]和荷蘭[8]科學(xué)家自主研發(fā),通過(guò)在土壤-作物-微生物關(guān)系中創(chuàng)造有利于作物生長(zhǎng)、不利于病原微生物生長(zhǎng)的土壤環(huán)境,達(dá)到降低土傳疾病發(fā)生率、提高作物產(chǎn)量的目的[9-10]。具有操作簡(jiǎn)單、改善土壤結(jié)構(gòu)、修復(fù)土壤酸化和鹽漬化、重建土壤微生物區(qū)系等多重效應(yīng)[11-12]。

        土壤微生物被廣泛認(rèn)為是維持土壤功能穩(wěn)定性、完整性的主要驅(qū)動(dòng)力,維持著土壤有機(jī)質(zhì)分解、腐殖質(zhì)形成及植物與環(huán)境間的物質(zhì)循環(huán)和能量交換等多個(gè)生態(tài)過(guò)程,對(duì)土壤肥力、土壤環(huán)境起到指示作用[13-14]。土壤真菌是土壤微生物的重要組成部分,在土壤養(yǎng)分循環(huán)、結(jié)構(gòu)形成、肥力提高、微生態(tài)平衡等方面具有積極作用。研究發(fā)現(xiàn),連作障礙會(huì)導(dǎo)致真菌多樣性、豐富度降低,使病原真菌數(shù)量增加[15]。同時(shí),人參根部病害主要由病原真菌引起,如尖孢鐮刀菌會(huì)引起人參根腐病,立枯絲核菌會(huì)引起人參立枯病,核盤(pán)菌會(huì)引起人參菌核病[16-17],是因?yàn)槿藚⒏鶇^(qū)特殊的土壤環(huán)境為微生物提供了可以生存的寄主和繁殖場(chǎng)所,隨著人參生長(zhǎng)年限的增加,人參根區(qū)土壤微生物代謝活性及物種多樣性逐漸增大,使土壤中的病原微生物數(shù)量增加、養(yǎng)分失衡、元素比例失調(diào),從而導(dǎo)致連作障礙加劇。

        因此,探尋2種滅菌方式對(duì)人參連作土壤養(yǎng)分及真菌群落結(jié)構(gòu)的影響顯得尤為重要。本研究設(shè)計(jì)了氯化苦土壤熏蒸加復(fù)合微生物菌肥、強(qiáng)還原土壤滅菌加復(fù)合微生物菌肥和氯化苦土壤熏蒸加強(qiáng)還原土壤滅菌3個(gè)處理,研究不同處理對(duì)人參連作土壤的改良效果,以期為消減人參連作障礙,實(shí)現(xiàn)人參綠色生態(tài)可持續(xù)發(fā)展及人參藥材穩(wěn)定供給提供技術(shù)支撐,同時(shí)對(duì)三七、西洋參等人參屬植物及其他中藥材連作障礙的研究提供參考。

        1 材料與方法

        1.1 研究區(qū)概況與試驗(yàn)設(shè)計(jì)

        田間試驗(yàn)在吉林省吉林市左家鎮(zhèn)北方藥用植物資源圃(44°02′N(xiāo)、126°15′E,海拔237 m)進(jìn)行,該地區(qū)屬溫帶大陸性季風(fēng)氣候,年平均氣溫5.8 ?℃,年平均降水量550 mm,年平均日照時(shí)數(shù)2 530 h。試驗(yàn)開(kāi)始前該地點(diǎn)已連續(xù)栽培人參3年,病害嚴(yán)重。試驗(yàn)開(kāi)始時(shí)的土壤理化性質(zhì)已在之前的試驗(yàn)中描述過(guò)[18]。

        試驗(yàn)設(shè)置3個(gè)處理組:(1)土壤中注射0.3 t/hm2 氯化苦,覆蓋藍(lán)色塑料薄膜,移栽前1周加入復(fù)合微生物菌肥(SFC_CB);(2)土壤中加入15 t/hm2動(dòng)物糞便,灌溉至100%持水能力,覆蓋藍(lán)色塑料薄膜,移栽前1周加入復(fù)合微生物菌肥(RSD_CB);(3)土壤中注射0.3 t/hm2氯化苦,覆蓋藍(lán)色塑料薄膜,滅菌完成后加入15 t/hm2動(dòng)物糞便,灌溉至100%持水能力,再次覆蓋藍(lán)色塑料薄膜(SFC_RSD)。采用隨機(jī)完全區(qū)組設(shè)計(jì),分為3個(gè)重復(fù),每個(gè)重復(fù) 30 m2。于2019年10月20日進(jìn)行人參移栽,采用斜栽法移栽大小相近的2年生健康人參苗,行距為20 cm,株距為15 cm,移栽時(shí)將人參苗傾斜30°~45°置于斜面上,覆蓋6 cm厚土,鋪上有葉樹(shù)枝,再用適量土壓住,保持土壤溫度、濕度。試驗(yàn)期間,田間管理措施與當(dāng)?shù)厣a(chǎn)實(shí)踐一致。

        1.2 試驗(yàn)材料

        2年生健康人參苗購(gòu)自撫松縣萬(wàn)良鎮(zhèn)人參交易市場(chǎng),品種為大馬牙;藍(lán)色塑料薄膜(厚度 0.04 mm)購(gòu)自吉林省鑫豐裕塑料有限公司;動(dòng)物糞便購(gòu)自吉林省吉林市昌邑區(qū)左家鎮(zhèn)居民養(yǎng)殖場(chǎng)(雞糞、牛糞、豬糞的體積比=1 ∶ 1 ∶ 1);土壤熏蒸用氯化苦購(gòu)自大連綠峰化學(xué)股份有限公司(有毒,用專(zhuān)用注射器注射);復(fù)合微生物菌肥購(gòu)自石家莊沃福沃肥業(yè)有限公司。

        1.3 試驗(yàn)儀器

        PHSJ-3F pH計(jì),購(gòu)自上海儀電科學(xué)儀器股份有限公司;WX-4000消解儀,購(gòu)自上海新儀微波化學(xué)科技有限公司;ZQZY-85CNS振蕩培養(yǎng)箱,購(gòu)自上海知楚儀器有限公司;M200pro型酶標(biāo)儀,購(gòu)自瑞士TECAN公司;PE Optima 8000電感耦合等離子體發(fā)射光譜儀,購(gòu)自美國(guó)珀金埃爾默公司。

        1.4 測(cè)定方法

        1.4.1 樣品采集與處理 在采收期(2020年10月1日)進(jìn)行土壤樣品采集,每個(gè)處理按“S”形設(shè)置15個(gè)土壤采樣點(diǎn)并采集0~20 cm的土壤,將5個(gè)土壤采樣點(diǎn)混成1個(gè)復(fù)合樣本,每個(gè)處理得到3個(gè)復(fù)合樣本。去除復(fù)合樣本中的根和雜質(zhì),一部分自然風(fēng)干磨碎,過(guò)2 mm篩網(wǎng)進(jìn)行養(yǎng)分分析,剩余部分裝在凍存盒中帶到實(shí)驗(yàn)室內(nèi),于低溫(-80 ℃)保存,用于微生物群落的測(cè)定。

        1.4.2 土壤性質(zhì)及養(yǎng)分含量測(cè)定 參考《土壤農(nóng)化分析》(第3版)對(duì)土壤性質(zhì)進(jìn)行測(cè)定[19]。土壤pH值和電導(dǎo)率(EC)分別通過(guò)pH計(jì)和電導(dǎo)率儀在1 ∶ 5(質(zhì)量 ∶ 體積)的土水比例下測(cè)定;有機(jī)質(zhì)(OM)含量采用重鉻酸鉀滴定法測(cè)定;水解氮(AN)含量采用堿解擴(kuò)散法測(cè)定;有效磷(AP)含量采用碳酸氫鈉浸提-鉬銻抗比色法測(cè)定;速效鉀(AK)含量采用M3浸提法測(cè)定;全鉀(TK)含量采用濃硝酸消煮法測(cè)定。

        1.4.3 土壤DNA的提取與群落檢測(cè) 根據(jù)E.Z.N.ASoil DNA kit試劑盒說(shuō)明書(shū),從土壤樣本中進(jìn)行微生物群落總DNA的提取,使用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)DNA提取質(zhì)量,用NanoDrop 2000測(cè)定DNA濃度和純度。用內(nèi)轉(zhuǎn)錄間隔區(qū)(ITS)序列可變區(qū)進(jìn)行PCR擴(kuò)增。用Illumina公司的Miseq PE300平臺(tái)進(jìn)行測(cè)序。

        1.4.4 真菌FUNGuild功能的預(yù)測(cè) 用FUNGuild數(shù)據(jù)庫(kù)預(yù)測(cè)真菌群落的功能組成,根據(jù)營(yíng)養(yǎng)方式不同,將真菌分為病理營(yíng)養(yǎng)型(pathotroph)、共生營(yíng)養(yǎng)型(symbiotroph)和腐生營(yíng)養(yǎng)型(saprotroph)3種,基于以上營(yíng)養(yǎng)方式,又分為動(dòng)物病原菌(animal pathogens)、叢枝菌根真菌(arbuscular mycorrhizal fungi)、外生菌根真菌(ectomycorrhizal fungi)、杜鵑花類(lèi)菌根真菌(ericoid mycorrhizal fungi)、葉內(nèi)生真菌(foliar endophytes)、地衣寄生真菌(lichenicolous fungi)、地衣共生真菌(lichenized fungi)、菌寄生真菌(mycoparasites)、植物病原菌(plant pathogens)、未定義根內(nèi)生真菌(undefined root endophytes)、未定義腐生真菌(undefined saprotrophs)和木質(zhì)腐生真菌(wood saprotrophs)12種。

        1.5 數(shù)據(jù)分析

        用QIIME V1.9.1將經(jīng)過(guò)質(zhì)量篩選的真菌序列以97%的序列相似性聚類(lèi)到OTU中,基于OTU豐度表在各分類(lèi)學(xué)水平上分析樣本的群落組成。用OTU生成稀疏曲線,根據(jù)稀疏曲線OTU(指分類(lèi)操作單元,通常用OTU表示,不會(huì)寫(xiě)中文名稱(chēng))表,計(jì)算真菌多樣性、豐富度、均勻度和覆蓋度。應(yīng)用Adonis和PERMDISP分析,篩選不同處理土壤樣本中的共有OTU和特有OTU。通過(guò)分析不同樣本真菌群落結(jié)構(gòu)、組成和多樣性的變化,確定真菌群落與土壤環(huán)境因素間的相關(guān)性。

        利用IBM SPSS 21.0統(tǒng)計(jì)軟件,通過(guò)單因素方差分析(ANOVA)測(cè)定不同處理間的差異,用軟件Graphpad Prism 8.01繪圖。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 不同處理對(duì)人參連作土壤性質(zhì)及養(yǎng)分含量的影響

        從表1可以看出,SFC_CB處理組顯著提高了OM、TK含量,且均表現(xiàn)為SFC_CB>RSD_CB>SFC_RSD,其中OM含量分別為RSD_CB、SFC_RSD處理組的1.056、1.342倍,TK含量分別為RSD_CB、SFC_RSD處理組的1.018、1.027倍。RSD_CB處理組顯著提高了土壤EC值和AK、AN含量,且除AN含量外,均表現(xiàn)為RSD_CB>SFC_RSD>SFC_CB,其中EC值分別為SFC_RSD、SFC_CB處理組的1.152、1.942倍,AK含量分別為SFC_RSD、SFC_CB處理組的1.251、2.005倍。SFC_RSD 處理組顯著提高了土壤pH值和AP含量,且均表現(xiàn)為SFC_RSD> RSD_CB>SFC_CB,其中pH值分別為RSD_CB、SFC_CB處理組的1.012、1.042倍,AP含量分別為RSD_CB、SFC_CB處理組的1.755、2.446倍。

        2.2 不同處理對(duì)人參連作土壤真菌群落多樣性和組成的影響

        2.2.1 不同處理對(duì)人參連作土壤真菌群落多樣性和組成的影響 通過(guò)測(cè)序,從不同處理的12個(gè)土壤樣本(不同樣本序列數(shù)量范圍為69 292~71 961)中得到848 789條高質(zhì)量的基因序列,序列長(zhǎng)度為 143~425 bp。這些序列以97%的相似性分布在774個(gè)不同OTU中。所有處理的真菌稀釋曲線都趨于飽和,表明測(cè)序工作在覆蓋真菌多樣性方面較為全面(圖1-A)。同時(shí),3個(gè)處理共有的OTU數(shù)量為83個(gè),而特有的OTU數(shù)量以RSD_CB處理最多(圖1-B)。此外,與RSD_CB處理組相比,SFC_CB、SFC_RSD處理組土壤的真菌群落豐富度、多樣性和均勻度均顯著降低,覆蓋度均顯著提高,但在豐富度、覆蓋度上,SFC_CB和SFC_RSD處理組間的差異不顯著(表2)。

        2.2.2 不同處理對(duì)人參連作土壤真菌群落組成的影響 從不同處理土壤樣本的OTU中共檢測(cè)到5門(mén)9綱15目19科24屬。在門(mén)分類(lèi)水平下,將相對(duì)豐度大于10%的菌門(mén)定為優(yōu)勢(shì)菌門(mén),發(fā)現(xiàn)在SFC_CB、SFC_RSD處理組中僅有子囊菌門(mén)(Ascomycota,91.30%~98.22%)1個(gè)優(yōu)勢(shì)菌門(mén),而在RSD_CB處理組中的優(yōu)勢(shì)菌門(mén)為子囊菌門(mén)(54.13%)、被孢霉門(mén)(Mortierellomycota,31.02%)和擔(dān)子菌門(mén)(Basidiomycota,11.64%)(圖2-A)。 在綱分類(lèi)水平下,將相對(duì)豐度大于10%的菌綱定為優(yōu)勢(shì)菌綱,發(fā)現(xiàn)SFC_CB 處理組中的優(yōu)勢(shì)菌綱為錘舌菌綱(Leotiomycetes,80.79%)、 座囊菌綱( Dothideomycetes,11.83%),RSD_CB處理組中的優(yōu)勢(shì)菌綱為糞殼菌綱(Sordariomycetes,40.40%)、被孢霉綱(Mortierellomycetes,30.95%)和銀耳綱(Tremellomycetes,10.61%),SFC_RSD處理組中的優(yōu)勢(shì)菌綱為錘舌菌綱(29.35%)、散囊菌綱(Eurotiomycetes,26.07%)和糞殼菌綱(24.09%)(圖2-B)。在目分類(lèi)水平下,將相對(duì)豐度大于10%的菌目定為優(yōu)勢(shì)菌目,發(fā)現(xiàn)SFC_CB處理組的優(yōu)勢(shì)菌目為柔膜菌目(Helotiales,80.04%)、煤炱目(Capnodiales,11.65%),RSD_CB處理組中的優(yōu)勢(shì)菌目為被孢霉目(Mortierellales,30.95%)、肉座菌目(Hypocreales,18.05%)和糞殼菌目(Sordariales,17.68%),SFC_RSD處理組中優(yōu)勢(shì)菌目為柔膜菌目(Helotiales,26.80%)、肉座菌目(10.21%)、糞殼菌目(12.06%)和散囊菌目(Eurotiales,25.06%)(圖2-C)。在科分類(lèi)水平下,將相對(duì)豐度大于10%的菌科定為優(yōu)勢(shì)菌科,發(fā)現(xiàn)SFC_CB處理組中的優(yōu)勢(shì)菌科為柔膜菌科(76.75%)和枝孢霉科(Cladosporiaceae,11.65%),RSD_CB處理組中的優(yōu)勢(shì)菌科為被孢霉科(Mortierellaceae,30.95%)、毛殼菌科(Chaetomiaceae,13.51%)和叢赤殼科(Nectriaceae,16.65%),SFC_RSD處理組中的優(yōu)勢(shì)菌科為柔膜菌科(26.34%)、曲霉科(Aspergillaceae, 24.84%)和毛殼科(12.02%)(圖2-D)。

        根據(jù)所有樣本各屬分類(lèi)平均豐度前20名作熱圖,發(fā)現(xiàn)在SFC_CB處理組中柱霉屬(Scytalidium)、枝孢菌屬(Cladosporium)、Tetracladium和unclassified_o_Helotiales的相對(duì)豐度顯著增加,曲霉屬(Aspergillus)、被孢霉屬(Mortierella)、鐮刀菌屬(Fusarium)、短梗蠕孢菌屬(Trichocladium)、毛殼菌屬(Chaetomium)、梭孢殼屬(Thielavia)、新赤殼屬(Neocosmospora)、Eleutherascus、Pseudeurotium和unclassified_k_Fungi的相對(duì)豐度顯著降低;在RSD_CB處理組中被孢霉屬、鐮刀菌屬、短梗蠕孢菌屬、毛殼菌屬、新赤殼屬、Tausonia、Pseudeurotium、Solicoccozyma和unclassified_k_Fungi的相對(duì)豐度顯著增加,柱霉屬、曲霉屬、梭孢殼屬、枝孢菌屬、Eleutherascus、Tetracladium和unclassified_o_Helotiales的相對(duì)豐度顯著降低;在SFC_RSD處理組中曲霉屬、梭孢殼屬(Thielavia)、Eleutherascus和unclassified_k_Fungi的相對(duì)豐度顯著增加,被孢霉屬、短梗蠕孢菌屬、枝孢菌屬、Tausonia、Pseudeurotium、Solicoccozyma和Tetracladium的相對(duì)豐度顯著降低(圖3)。

        此外,不同處理組也塑造了共有、特有真菌微生物群。3個(gè)處理土壤中共有的OTU數(shù)量為83個(gè),均占總保留OTU(774個(gè))的10.72%,保留OTU的46.11%、17.85%和17.04%(表3)。大多數(shù)共有OTU被劃分為20個(gè)真菌屬,其中17個(gè)真菌屬的相對(duì)豐度在不同處理間發(fā)生了顯著變化(圖4)。此外,3個(gè)處理土壤中特有的OTU數(shù)量為499個(gè),分別占總保留OTU(774個(gè))的64.47%和保留OTU的11.67%、52.47%和48.05%(表3)。特有OTU被劃分為47個(gè)真菌屬,SFC_CB、RSD_CB、SFC_RSD處理組分別包含15、29、18個(gè)屬,表明強(qiáng)還原土壤滅菌技術(shù)能夠比氯化苦土壤熏蒸技術(shù)重組更多特有微生物群(表4)。其中,毛球腔菌屬(Setosphaeria)、Glomus、Lipomyces、Gorgomyces、Farlowiella、Lophiotrema、Saitozyma和unclassified_f_Chionosphaeraceae僅在SFC_CB處理組中存在;Chaetosphaeria、Burgoa、Schizothecium、Syncephalis、 Cladophialophora、Chloridium、Cercophora、Mastigobasidium、 Thelonectria、Minimedusa、Eucasphaeria、Humicolopsis_f_Pezizomycotina_fam_Incertae_sedis、unclassified_f_Nectriaceae、unclassified_f_Helotiaceae、unclassified_f_Melanommataceae、Dactylonectria、unclassified_f_Sordariaceae、unclassified_f_Microascaceae和Mastigobasidium unclassified_f_Hypocreales_fam_Incertae_sedis僅在RSD_CB處理組中存在;梭孢殼屬、根囊壺菌屬(Rhizophlyctis)、黑孢霉屬(Nigrospora)、黑團(tuán)孢屬(Periconia)、青霉屬(Penicillium)、厚壁孔孢屬(Gilmaniella)、曲霉屬(Aspergillus)、Talaromyces和unclassified_p_Chytridiomycota僅在SFC_RSD處理組中存在。

        2.3 人參連作土壤真菌群落變化與環(huán)境因子的相關(guān)性分析

        通過(guò)VIF方差膨脹因子分析,篩選去除VIF>10的環(huán)境因子。經(jīng)過(guò)篩選,保留下EC值、pH值、SOM含量、AK含量和AP含量進(jìn)行相關(guān)性分析(表5)。將相對(duì)豐度排前20名的真菌屬與環(huán)境因子進(jìn)行相關(guān)性分析,發(fā)現(xiàn)真菌群落與環(huán)境因子存在顯著相關(guān)性(圖5)。其中,AP含量與Aspergillus呈極顯著正相關(guān),與Tausonia呈顯著負(fù)相關(guān),與Cladosporium呈極顯著負(fù)相關(guān);pH值與Eleutherascus、Thielavia呈顯著正相關(guān),與Chrysosporium、Westerdykella呈極顯著正相關(guān);SOM含量與Tausonia呈顯著正相關(guān);AK含量與Chaetomium呈顯著正相關(guān),與unclassified_o_Helotiales呈顯著負(fù)相關(guān);EC值與Neocosmospora、Epicoccum和Mortierella呈顯著正相關(guān),與Chaetomium呈極顯著正相關(guān),與Trichoderma呈顯著負(fù)相關(guān)。

        2.4 土壤真菌群落FunGuild功能預(yù)測(cè)

        采用FunGuild對(duì)不同處理土壤真菌群落進(jìn)行功能預(yù)測(cè),共鑒定出12個(gè)主要功能分組(圖6)。在SFC_CB處理組中,木質(zhì)腐生真菌(wood saprotroph)的相對(duì)豐度最高,而動(dòng)物病原-植物病原-未定義腐生真菌(animal pathogen-plant pathogen-undefined saprotroph)、動(dòng)物病原-糞腐生-內(nèi)生- 附生-植物腐生- 木質(zhì)腐生真菌(animal pathogen-dung saprotroph-endophyte-epiphyte-plant saprotroph-wood saprotroph)和糞腐生-未定義腐生真菌(dung saprotroph-undefined saprotroph)基本沒(méi)有;在RSD_CB處理組中,內(nèi)生-垃圾腐生-土壤 腐生-未定義腐生真菌(endophyte-litter saprotroph- soil saprotroph-undefined saprotroph)的相對(duì)豐度最高,而木質(zhì)腐生真菌(wood saprotroph)和糞腐生-未定義腐生真菌(dung saprotroph-undefined saprotroph)的相對(duì)豐度最低。在SFC_RSD處理中,未定義腐生真菌(undefined saprotroph)的相對(duì)豐度最高,而植物病原菌(plant pathogen)的相對(duì)豐度最低。

        3 討論

        土壤為植物、微生物提供了生存環(huán)境,而其理化性質(zhì)和養(yǎng)分循環(huán)又直接影響著植物生長(zhǎng)發(fā)育和微生物群落組成,對(duì)土壤改良和腐殖質(zhì)形成起到至關(guān)重要的作用[17,20]。大量研究發(fā)現(xiàn),長(zhǎng)期連作會(huì)導(dǎo)致土壤養(yǎng)分含量減少和土傳病原菌發(fā)生,而強(qiáng)還原土壤滅菌和氯化苦土壤熏蒸技術(shù)可改善土壤酸化、鹽漬化,增加土壤養(yǎng)分含量[21-22]。在本研究中,SFC_RSD處理組顯著提高了土壤pH值,表明強(qiáng)還原土壤滅菌、氯化苦土壤熏蒸技術(shù)均可緩解土壤酸化,而2種技術(shù)相結(jié)合的效果更顯著,與前人研究結(jié)果[18]一致。進(jìn)一步分析發(fā)現(xiàn),土壤pH值與梭孢殼屬、Chrysosporium、Eleutherascus和Westerdykella顯著正相關(guān),表明pH值是轉(zhuǎn)化微生物的一個(gè)重要因素,與微生物豐富度、多樣性密切相關(guān)[23]。前人研究發(fā)現(xiàn),強(qiáng)還原土壤滅菌處理后,土壤鹽度(以EC值表示)顯著降低[24],這與本研究結(jié)果略有不同。這可能與有機(jī)基質(zhì)添加和厭氧過(guò)程有關(guān),導(dǎo)致特定微生物類(lèi)群和特定功能基因大量繁殖。劉世鵬等研究發(fā)現(xiàn),金銀花樹(shù)根系分泌N、P、S等在提高土壤肥力的同時(shí),對(duì)Solicoccozyma、Tausonia、曲霉屬等有害真菌有抑制作用[25]。土壤有機(jī)質(zhì)是植物營(yíng)養(yǎng)的主要來(lái) 源之一,能促進(jìn)植物生長(zhǎng)發(fā)育和營(yíng)養(yǎng)元素分解,?改善土壤性質(zhì)[26]。本研究發(fā)現(xiàn),SFC_CB、RSD_CB處理組均可顯著提高土壤SOM含量,且SOM含量與Tausonia顯著正相關(guān)。這可能與2個(gè)方面的原因有關(guān),一是土壤中的致病真菌增加,需要分泌更多營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)來(lái)抑制其生長(zhǎng)繁殖;二是土壤中添加的復(fù)合微生物菌肥加快了土壤中有機(jī)物質(zhì)的分解,從而提高了土壤SOM含量。此外,添加可分解碳源和灌水覆膜對(duì)營(yíng)養(yǎng)元素及其轉(zhuǎn)化的影響在不同研究中并不一致。營(yíng)養(yǎng)元素及其有效性的升高或降低可能直接源于有機(jī)物的厭氧降解,也可能間接來(lái)源于營(yíng)養(yǎng)元素的循環(huán)[27-28]。本研究發(fā)現(xiàn),RSD_CB處理組可顯著提高土壤AK、AN含量,降低土壤TK、AP含量。其中,AK含量與毛殼菌屬顯著正相關(guān),而毛殼菌屬是一種生防菌,可降解土壤中纖維素及木質(zhì)素等,從而導(dǎo)致土壤AK含量增加[17]。土壤水解氮又稱(chēng)堿解氮,包括無(wú)機(jī)態(tài)氮及易水解的有機(jī)態(tài)氮,土壤AN含量的增加可能與土壤中反硝化細(xì)菌的減少有關(guān)。前人研究發(fā)現(xiàn),強(qiáng)還原土壤滅菌可顯著提高土壤AP含量[29],這與本研究結(jié)果略有差異,可能因?yàn)锳P含量與曲霉屬呈極顯著正相關(guān),與Tausonia呈顯著負(fù)相關(guān),而曲霉屬、Tausonia均為致病真菌,抑制了磷的吸收,降低了磷的有效性。

        真菌是土壤生態(tài)系統(tǒng)的重要組分之一,能夠分解土壤有機(jī)質(zhì)和腐殖質(zhì),為植物生長(zhǎng)發(fā)育提供養(yǎng)分[30-31]。對(duì)真菌豐富度指數(shù)、多樣性指數(shù)、均勻度指數(shù)和覆蓋度指數(shù)進(jìn)行分析發(fā)現(xiàn),RSD_CB處理組顯著提高了土壤真菌群落豐富度、多樣性和均勻度,降低了覆蓋度,這與前人的研究結(jié)果[27]一致,可能是因?yàn)椴煌瑒?dòng)物糞便的發(fā)酵組合可以刺激真菌類(lèi)群,從而獲得更高的真菌多樣性。同時(shí),本研究從不同處理土壤樣本中共檢測(cè)到5門(mén)9綱15目19科24屬,其中共有優(yōu)勢(shì)菌門(mén)為子囊菌門(mén),占比達(dá)54.13%~98.22%,其之所以在該研究區(qū)占有較高的比重,與其遺傳特性有關(guān)。子囊菌門(mén)是分解有機(jī)物料的關(guān)鍵菌群,具有較高的物種多樣性和進(jìn)化速度[32-33]。但在RSD_CB處理組中,除子囊菌門(mén)外,擔(dān)子菌門(mén)也為優(yōu)勢(shì)菌門(mén)。擔(dān)子菌門(mén)多為腐生菌,可以促進(jìn)土壤物質(zhì)循環(huán),而許多菌根真菌也為擔(dān)子菌,可以拮抗根部病原菌,改良土壤微生態(tài)環(huán)境[34]。進(jìn)一步分析發(fā)現(xiàn),除在門(mén)水平各處理組成較為相似外,從目水平到科水平,不同處理的土壤優(yōu)勢(shì)菌群均存在差異,這可能歸因于有機(jī)物料的碳成分和分解特性,因?yàn)椴煌袡C(jī)物料在碳成分、分解特性上存在差異,這種差異對(duì)微生物群落組成的影響也不同[35]。從屬水平進(jìn)行分析,發(fā)現(xiàn)RSD_CB處理組雖然增加了鐮刀菌屬這一致病菌的相對(duì)豐度,但是也增加了被孢霉屬、毛殼菌屬等有益菌的相對(duì)豐度。被孢霉屬、毛殼菌屬均是具有較強(qiáng)分解纖維素能力的真菌,對(duì)改善土壤結(jié)構(gòu)、提高土壤養(yǎng)分有效性具有良好效果[17,36-37]。鐮刀菌屬是一種土傳致病菌,在多數(shù)土壤中均大量存在,總的來(lái)說(shuō),RSD_CB處理組中有益菌的數(shù)量大于致病菌數(shù)量,會(huì)使植物趨于正向生長(zhǎng),因此可忽略不計(jì)。此外,特定微生物類(lèi)群的豐度、多樣性和活性是決定特定土壤功能的重要因素。本研究發(fā)現(xiàn),大多數(shù)共有OTU被劃分為20個(gè)真菌屬,其中有17個(gè)真菌屬的相對(duì)豐度在不同處理間發(fā)生了顯著變化。而特有OTU被劃分為47個(gè)真菌屬,SFC_CB、RSD_CB、SFC_RSD處理組分別包含15、29、18個(gè)屬,可能因?yàn)椴煌袡C(jī)殘留物組合刺激了微生物種群,從而增加了微生物多樣性。

        采用FunGuild對(duì)不同處理土壤真菌群落進(jìn)行功能預(yù)測(cè),共鑒定出12個(gè)主要功能分組。根據(jù)營(yíng)養(yǎng)類(lèi)型主要分為腐生營(yíng)養(yǎng)型、病理營(yíng)養(yǎng)型和復(fù)合營(yíng)養(yǎng)型,其中腐生營(yíng)養(yǎng)型、復(fù)合營(yíng)養(yǎng)型所占比例較高,病理營(yíng)養(yǎng)型所占比例較低。病理營(yíng)養(yǎng)型真菌主要從宿主細(xì)胞獲取營(yíng)養(yǎng)來(lái)源,可以抑制植物生長(zhǎng),表明3種處理均可減少病原真菌的數(shù)量[38-39]。但在本研究土壤中,幾乎沒(méi)有發(fā)現(xiàn)共生營(yíng)養(yǎng)型真菌,這可能與試驗(yàn)前期該地區(qū)連續(xù)多年種植人參有關(guān),土壤連續(xù)多年種植人參會(huì)導(dǎo)致土壤養(yǎng)分降低,從而降低共生真菌的相對(duì)豐度[40]。同時(shí),不同處理土壤真菌功能組相對(duì)豐度并不相同,在SFC_CB處理組中,木質(zhì)腐生真菌的相對(duì)豐度最高,在RSD_CB處理組中,內(nèi)生-垃圾腐生-土壤腐生-未定義腐生真菌的相對(duì)豐度最高,在SFC_RSD處理中,未定義腐生真菌的相對(duì)豐度最高。這可能與人為翻動(dòng)土壤和施入復(fù)合微生物菌肥有關(guān),由于改變了真菌生存環(huán)境,使易受人為干擾的真菌功能進(jìn)行了轉(zhuǎn)換,趨于復(fù)雜化[41]。此外,不同處理中未明確分類(lèi)的真菌仍有很多,還需通過(guò)宏基因組進(jìn)行進(jìn)一步的功能挖掘。

        4 結(jié)論

        本研究結(jié)果表明,氯化苦土壤熏蒸技術(shù)和強(qiáng)還原土壤滅菌技術(shù)均能顯著改變土壤養(yǎng)分含量和真菌群落結(jié)構(gòu)。其中,SFC_CB處理組顯著提高了土壤SOM、TK含量,RSD_CB處理組顯著提高了土壤EC值和AK、AN含量,SFC_RSD處理組顯著提高了土壤pH值和AP含量,且土壤真菌群落組成與土壤養(yǎng)分密切相關(guān),其中EC值、pH值、SOM含量、AK含量和AP含量是主要驅(qū)動(dòng)因素。同時(shí),不同處理除在門(mén)水平組成較為相似外,從目水平到屬水平土壤優(yōu)勢(shì)菌群均存在差異,且RSD_CB處理組顯著增加了被孢霉屬、毛殼菌屬等有益菌的豐度。此外,從不同處理土壤中共鑒定出12個(gè)真菌功能群,不同處理均表現(xiàn)為腐生營(yíng)養(yǎng)型和復(fù)合營(yíng)養(yǎng)型所占比例較高,病理營(yíng)養(yǎng)型所占比例較低。綜上,強(qiáng)還原土壤滅菌技術(shù)有望替代傳統(tǒng)的化學(xué)熏蒸技術(shù),用于消減連作障礙土壤。

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        收 稿日期:2023-02-08

        基金項(xiàng)目:國(guó)家自然科學(xué)基金(編號(hào):82204558);吉林省重大科技專(zhuān)項(xiàng)(編號(hào):20200504003YY);吉林省自然科學(xué)基金(編號(hào):YDZJ202101ZYTS015);吉林省重點(diǎn)研發(fā)項(xiàng)目(編號(hào):20220204078YY);長(zhǎng)春市科技發(fā)展規(guī)劃(編號(hào):21ZGY13);長(zhǎng)春中醫(yī)藥大學(xué)青年科學(xué)家項(xiàng)目(編號(hào):QNKXJ2-2021ZR19)。

        作者簡(jiǎn)介:戰(zhàn) 宇(1995—),女,吉林長(zhǎng)春人,博士研究生,主要從事中藥學(xué)方面的研究。E-mail:2507546505@qq.com。

        通信作者:李 瓊,博士,助理研究員,主要從事藥用植物栽培研究。E-mail:wode17k@163.com。

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