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        基于Aβ病理學(xué)特征探討固本健腦液對(duì)APP/PS1睡眠障礙小鼠的作用①

        2023-11-30 02:08:40毛劍琴袁德培張譽(yù)丹曾楚華湖北中醫(yī)藥大學(xué)武漢430000
        中國免疫學(xué)雜志 2023年11期
        關(guān)鍵詞:健腦神經(jīng)細(xì)胞海馬

        毛劍琴 袁德培 張譽(yù)丹 曾楚華(湖北中醫(yī)藥大學(xué),武漢 430000)

        阿爾茨海默?。ˋlzheimer′s disease,AD)俗稱老年癡呆癥,其發(fā)病癥狀呈持續(xù)性腦部神經(jīng)系統(tǒng)衰退,患者逐步出現(xiàn)認(rèn)知功能障礙、記憶功能障礙及行為功能障礙,屬于癡呆癥的一種,統(tǒng)計(jì)顯示,AD患者人數(shù)占全球癡呆癥患者人數(shù)的50%~75%,且發(fā)病人數(shù)持續(xù)增長[1-2]。AD 發(fā)病隱匿、不可逆,目前臨床缺乏有效的治療方法,因此尋找具有防治AD 效果的藥物十分必要。AD 發(fā)病機(jī)制復(fù)雜,一方面已知其發(fā)病與遺傳有關(guān),另一方面睡眠障礙可能是導(dǎo)致AD 的原因之一。研究發(fā)現(xiàn),不同程度的晝夜節(jié)律紊亂多發(fā)生于AD 患者或動(dòng)物,國外學(xué)者也指出AD 病情發(fā)展進(jìn)程與睡眠障礙相關(guān),推測睡眠障礙可能是導(dǎo)致AD的重要病因[3-6]。中醫(yī)將AD歸于“癡呆”“善忘”一類,主治以“固本健腦”為原則[7-8]。固本健腦液是代表方劑,具有補(bǔ)腎健脾、健腦安神功效,能夠通過多靶點(diǎn)保護(hù)AD 小鼠神經(jīng)元不受損傷[9]。本實(shí)驗(yàn)以APP/PS1 雙轉(zhuǎn)基因癡呆小鼠為研究對(duì)象,觀察固本健腦液對(duì)其睡眠障礙的干預(yù)效果,并分析可能的作用機(jī)制。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        1.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 30 只雄性SPF 級(jí)6 月齡APP/PS1 小鼠及10 只雄性SPF 級(jí)6 月齡正常小鼠均由南京生物醫(yī)藥研究院提供,生產(chǎn)許可證號(hào):SCXK(蘇)2015-0001,小鼠適應(yīng)性喂養(yǎng)1周,APP/PS1小鼠隨機(jī)分為模型組及實(shí)驗(yàn)組(固本健腦液低、高劑量組)。本研究經(jīng)湖北中醫(yī)藥大學(xué)倫理學(xué)委員會(huì)批準(zhǔn)(HUCMS202011010),實(shí)驗(yàn)操作均符合醫(yī)學(xué)倫理學(xué)要求。

        1.1.2 藥物及試劑 固本健腦液方劑為15 g 板橋黨參、15 g枸杞、15 g茯苓、12 g酸棗仁、12 g山楂,加入藥材6 倍量冷水浸泡30 min 后武火煎煮30 min,轉(zhuǎn)文火煎煮30 min,濾出藥液(該過程重復(fù)2 次)。將2 次濾出的藥液混勻,高溫加熱濃縮制成0.625、2.5 g/ml 藥液,低溫保存?zhèn)溆茫?0]。HE 染液(貨號(hào):G1120,北京索萊寶科技有限公司);尼氏染液(貨號(hào):E607316-0100,上海生工生物工程股份有限公司);TNF-α、IL-1β、β 樣淀粉蛋白1-42(Aβ1-42,貨號(hào):AD20104、AD20079、AD21893)ELISA 試劑盒(武漢艾迪抗生物科技有限公司)。

        1.1.3 實(shí)驗(yàn)儀器 GS-15R 型離心機(jī)(美國Beckman 公司);BIOBASE-EL10A 型酶標(biāo)儀(山東博科再生醫(yī)學(xué)有限公司);CX23 型生物顯微鏡(日本Olympus 公司);CytoFLEX 流式細(xì)胞儀(美國Beckman Coulter公司)。

        1.2 方法

        1.2.1 建模及給藥 采用多平臺(tái)水環(huán)境法建立小鼠模型,用自制睡眠剝奪箱對(duì)除對(duì)照組外的其他組進(jìn)行睡眠剝奪,剝奪時(shí)間為每天12 h,連續(xù)剝奪4 周[11]。模型組及實(shí)驗(yàn)組(固本健腦液低、高劑量組)均為APP/PS1 雙轉(zhuǎn)基因小鼠,對(duì)照組為正常小鼠。實(shí)驗(yàn)組(固本健腦液低、高劑量組)分別灌胃0.625、2.5 g/ml 固本健腦液,劑量為10 ml/(kg·d),對(duì)照組及模型組灌胃等量生理鹽水。

        1.2.2 小鼠行為學(xué)檢測 采用Morris 水迷宮檢測小鼠行為,使用虛線將水迷宮水池分為4 個(gè)象限,第三象限內(nèi)放置1 個(gè)有機(jī)玻璃平臺(tái),加水至水面超過平臺(tái)2 cm,滴加牛奶將水池染白。提起小鼠尾部將其面朝4 個(gè)象限固定位置的池壁放入水池,記錄其找到平臺(tái)所用時(shí)間(即逃避潛伏期),時(shí)間越短表示小鼠學(xué)習(xí)記憶能力越強(qiáng)(實(shí)驗(yàn)前持續(xù)訓(xùn)練小鼠5 d,第6天開始實(shí)驗(yàn))。

        1.2.3 小鼠晝夜節(jié)律檢測 觀察小鼠自主活動(dòng)時(shí)間,將小鼠置于12 h/12 h 光暗循環(huán)條件下培養(yǎng)(光照時(shí)間為早8:00 至晚8:00,黑暗時(shí)間為晚8:00 到第2 天早8:00),每3 h 記錄1 次小鼠自由活動(dòng)時(shí)間(記錄時(shí)間為3 min),記錄各組小鼠光照活動(dòng)時(shí)間、黑暗活動(dòng)時(shí)間及總自由活動(dòng)時(shí)間。

        1.2.4 小鼠血清TNF-α、IL-1β 水平檢測 取小鼠尾靜脈血5 ml,3 000 r/min 離心10 min,取上清,采用ELISA 試劑盒檢測小鼠血清炎癥因子TNF-α、IL-1β水平。

        1.2.5 小鼠海馬組織Aβ1-42水平檢測 處死小鼠,取出完整腦組織,分離得到海馬組織,使用PBS緩沖液制成海馬組織混懸液,4 ℃、3 000 r/min離心10 min,取上清,采用ELISA 試劑盒檢測小鼠海馬組織Aβ1-42水平。

        1.2.6 小鼠海馬組織細(xì)胞凋亡水平檢測 取部分海馬組織加入胰蛋白酶消化,反復(fù)吹打制成單層細(xì)胞懸液,3 000 r/min離心10 min,棄上清,PBS緩沖液清洗2 次,Annexin X 染色,流式細(xì)胞儀、flowcytometry軟件檢測分析。

        1.2.7 小鼠海馬組織病理學(xué)特征檢測 取小鼠腦部海馬組織,4%多聚甲醛固定,脫水后石蠟包埋,切5 μm片,脫蠟,HE、Nissl染色觀察病理學(xué)情況。

        1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 使用SPSS20.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,符合正態(tài)分布的計(jì)量資料以xˉ±s 表示,單因素方差分析用于多組間比較,LSD 分析用于組間兩兩比較,P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 各組小鼠逃避潛伏期時(shí)間比較 相較于對(duì)照組,模型組小鼠逃避潛伏期時(shí)間明顯延長(P<0.05);相較于模型組,固本健腦液各劑量組小鼠逃避潛伏期時(shí)間均不同程度縮短(P<0.05,表1)。

        表1 各組小鼠逃避潛伏期時(shí)間比較(,n=10)Tab.1 Comparison of latency time of escape of mice in each group(,n=10)

        表1 各組小鼠逃避潛伏期時(shí)間比較(,n=10)Tab.1 Comparison of latency time of escape of mice in each group(,n=10)

        Note:Compared with control group,1)P<0.05;compared with model group,2)P<0.05.

        2.2 各組小鼠自由活動(dòng)時(shí)間比較 相較于對(duì)照組,模型組小鼠光照活動(dòng)時(shí)間、黑暗活動(dòng)時(shí)間及總活動(dòng)時(shí)間均明顯延長(P<0.05);相較于模型組,固本健腦液各劑量組小鼠光照活動(dòng)時(shí)間、黑暗活動(dòng)時(shí)間及總活動(dòng)時(shí)間均不同程度縮短(P<0.05,表2)。

        表2 各組小鼠自由活動(dòng)時(shí)間比較(,n=10)Tab.2 Comparison of free movement time of mice in each group(,n=10)

        表2 各組小鼠自由活動(dòng)時(shí)間比較(,n=10)Tab.2 Comparison of free movement time of mice in each group(,n=10)

        Note:Compared with control group,1)P<0.05;compared with model group,2)P<0.05.

        2.3 各組小鼠血清TNF-α、IL-1β 水平比較 相較于對(duì)照組,模型組小鼠血清TNF-α、IL-1β 水平均明顯升高(P<0.05);相較于模型組,固本健腦液各劑量組小鼠血清TNF-α、IL-1β 水平均不同程度降低(P<0.05,表3)。

        表3 各組小鼠海馬組織TNF-α、IL-1β 水平比較(,n=10,pg/L)Tab.3 Comparison of TNF-α and IL-1β levels in hippocampal tissues of mice in each group(,n=10,pg/L)

        表3 各組小鼠海馬組織TNF-α、IL-1β 水平比較(,n=10,pg/L)Tab.3 Comparison of TNF-α and IL-1β levels in hippocampal tissues of mice in each group(,n=10,pg/L)

        Note:Compared with control group,1)P<0.05;compared with model group,2)P<0.05.

        2.4 各組小鼠海馬組織Aβ1-42水平比較 相較于對(duì)照組,模型組小鼠海馬組織Aβ1-42水平明顯升高(P<0.05);相較于模型組,固本健腦液各劑量組小鼠海馬組織Aβ1-42水平均不同程度降低(P<0.05,表4)。

        表4 各組小鼠海馬組織Aβ1-42水平比較(,n=10)Tab.4 Comparison of Aβ1-42 level in hippocampal tissues of mice in each group(,n=10)

        表4 各組小鼠海馬組織Aβ1-42水平比較(,n=10)Tab.4 Comparison of Aβ1-42 level in hippocampal tissues of mice in each group(,n=10)

        Note:Compared with control group,1)P<0.05;compared with model group,2)P<0.05.

        2.5 各組小鼠海馬組織細(xì)胞凋亡率比較 相較于對(duì)照組,模型組小鼠海馬組織細(xì)胞凋亡率明顯升高(P<0.05);相較于模型組,固本健腦液各劑量組小鼠海馬組織細(xì)胞凋亡率均出現(xiàn)不同程度降低(P<0.05,表5、圖1)。

        圖1 各組小鼠海馬組織細(xì)胞凋亡率比較Fig.1 Comparison of apoptosis rate in hippocampal tissues of mice in each group

        表5 各組小鼠海馬組織細(xì)胞凋亡率比較(,n=10)Tab.5 Comparison of apoptosis rate in hippocampal tissues of mice in each group(,n=10)

        表5 各組小鼠海馬組織細(xì)胞凋亡率比較(,n=10)Tab.5 Comparison of apoptosis rate in hippocampal tissues of mice in each group(,n=10)

        Note:Compared with control group,1)P<0.05;compared with model group,2)P<0.05.

        2.6 各組小鼠海馬組織病理學(xué)特征比較 對(duì)照組小鼠海馬組織神經(jīng)細(xì)胞排列整齊,形狀完整且數(shù)量較多,細(xì)胞內(nèi)尼氏體數(shù)量密集豐富;模型組小鼠海馬組織神經(jīng)細(xì)胞排列混亂,細(xì)胞體積皺縮且數(shù)量減少,細(xì)胞內(nèi)尼氏體數(shù)量減少;相較于模型組,固本健腦液各劑量組小鼠海馬組織神經(jīng)細(xì)胞及尼氏小體均明顯改善(圖2)。

        圖2 各組小鼠海馬組織病理學(xué)特征比較(×400)Fig.2 Comparison of histopathological characteristics of hippocampus in each group of mice(×400)

        3 討論

        隨著社會(huì)老齡人口不斷增加,AD 患病率也逐漸升高,目前仍普遍認(rèn)為其發(fā)病機(jī)制為腦組織Aβ異常沉積,因此臨床可通過調(diào)節(jié)Aβ 沉積影響AD 發(fā)病進(jìn)程[10-11]。另有研究表明,睡眠是調(diào)節(jié)學(xué)習(xí)記憶和情緒的重要腦部活動(dòng),而睡眠障礙會(huì)導(dǎo)致記憶功能減退、認(rèn)知能力降低,從而增加患AD 的可能性,且大部分AD 患者均存在不同程度的睡眠節(jié)律紊亂[12-14]。固本健腦液是具有健腦安神功效的一種方劑,早期研究提示其湯劑能夠明顯改善AD 模型小鼠睡眠障礙及學(xué)習(xí)記憶能力[15]。本研究在此基礎(chǔ)上進(jìn)一步分析其作用機(jī)制。

        腦組織Aβ 沉積是目前已知的AD 主要發(fā)病機(jī)制之一,研究表明通過慢性睡眠剝奪能夠促進(jìn)AD模型小鼠腦組織Aβ 沉積,進(jìn)一步損害AD 小鼠記憶功能,推測睡眠節(jié)律紊亂可能造成腦組織內(nèi)Aβ 異常沉積,促發(fā)AD[16]。AD 患者腦組織內(nèi)存在大量炎癥反應(yīng),腦組織炎癥反應(yīng)能夠抑制神經(jīng)元新生、加速神經(jīng)元丟失,進(jìn)一步加重腦組織損傷[17];AD 腦組織炎癥反應(yīng)主要由神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞及星形膠質(zhì)細(xì)胞在病理?xiàng)l件下過度激活引發(fā)[18]。以上兩種細(xì)胞被腦組織內(nèi)Aβ 等毒性物質(zhì)過度激活促進(jìn)炎癥因子表達(dá),包括TNF-α、IL-1β 等,TNF-α、IL-1β 一方面加速神經(jīng)細(xì)胞凋亡,另一方面降低神經(jīng)細(xì)胞增殖分化能力,兩方面作用共同造成腦神經(jīng)損傷[19]。

        本研究表明,與正常小鼠相比,AD 模型小鼠逃避潛伏時(shí)間、光照活動(dòng)時(shí)間、黑暗活動(dòng)時(shí)間及總活動(dòng)時(shí)間、血清TNF-α、IL-1β 水平、海馬組織Aβ1-42水平及細(xì)胞凋亡率均明顯升高,通過HE、Nissl 染色觀察其海馬組織病理情況,對(duì)照組小鼠海馬組織神經(jīng)細(xì)胞排列整齊,形狀完整且數(shù)量較多,細(xì)胞內(nèi)尼氏體數(shù)量密集豐富,而模型組小鼠海馬組織神經(jīng)細(xì)胞排列混亂,細(xì)胞體積皺縮且數(shù)量減少,細(xì)胞內(nèi)尼氏體數(shù)量減少。提示相較于正常小鼠,AD 模型小鼠睡眠節(jié)律紊亂、學(xué)習(xí)記憶能力下降、炎癥反應(yīng)加劇、海馬組織神經(jīng)細(xì)胞凋亡增加且Aβ1-42含量增多,與既往研究結(jié)果相符。與AD 模型小鼠相比,固本健腦液灌胃給藥后小鼠睡眠障礙、學(xué)習(xí)記憶能力、炎癥反應(yīng)、海馬組織神經(jīng)細(xì)胞凋亡水平及病理情況均明顯改善,海馬組織Aβ1-42含量比較發(fā)現(xiàn)實(shí)驗(yàn)組小鼠Aβ1-42含量明顯降低,推測可能由于固本健腦液抑制了AD 腦組織Aβ1-42沉積,在一定程度對(duì)AD 小鼠發(fā)揮了治療作用。

        綜上,固本健腦液對(duì)APP/PS1 睡眠障礙小鼠的神經(jīng)功能具有一定保護(hù)作用,其作用機(jī)制可能與抑制AD 腦組織Aβ 沉積、進(jìn)一步抑制腦組織炎癥反應(yīng)及神經(jīng)細(xì)胞凋亡有關(guān)。固本健腦液對(duì)AD 患者的臨床治療作用未來還需進(jìn)一步驗(yàn)證。

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