楊金梅,李云嵌,何霞紅,王振興,*
(1.西南林業(yè)大學(xué) 西南山地森林資源保育與利用教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,云南 昆明 650224;2.西南林業(yè)大學(xué)林學(xué)院,云南 昆明 650224;3.西南林業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,云南 昆明 650224)
三七(Panax notoginseng)為我國傳統(tǒng)名貴植物,為五加科(Araliaceae)人參屬,主要分布于我國云南文山、廣西、廣東、福建等地[1]。三七的葉、果以及根莖均可藥用,其味甘、微苦,性溫,現(xiàn)代藥理研究表明,三七具有鎮(zhèn)痛、抗炎、保肝利膽、抗心律失常、抗血栓等作用[2]。三七葉是云南當(dāng)?shù)靥厣称罚哂信c根部相似的藥用價(jià)值。研究表明三七葉富含皂苷、總黃酮、多酚、多糖等活性成分[3],具有活血化瘀、止痛消炎、促進(jìn)消化等多種功能活性[4-6]。但是目前對于三七葉的開發(fā)利用較少,只有三七葉茶、粉等產(chǎn)品,造成嚴(yán)重的資源浪費(fèi),因此迫切需要加大對三七葉的開發(fā)利用。
利用食用真菌或細(xì)菌發(fā)酵是對植物基食品進(jìn)行增效加工的有效手段之一,在發(fā)酵過程中,微生物發(fā)酵可作用于植物中多糖、蛋白質(zhì)等成分[7],促進(jìn)有效成分的釋放,同時(shí)將難于吸收的大分子代謝成小分子[8],增加植物有效成分的含量[9],或者可將低活性有效成分轉(zhuǎn)化為高活性有效成分,具有無污染、酶活性高、轉(zhuǎn)化率高、成本低、周期短、可以實(shí)現(xiàn)工業(yè)化等優(yōu)點(diǎn)[10]。目前已有利用食用微生物進(jìn)行發(fā)酵三七葉的相關(guān)研究,如張媛媛等[11]通過凝結(jié)芽孢桿菌發(fā)酵三七葉茶,發(fā)現(xiàn)發(fā)酵可以提高三七葉的總皂苷含量,提高其1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH)自由基和2,2’-聯(lián)氮雙(3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸)(2,2’-azino-bis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid),ABTS)陽離子自由基清除能力。陳紅惠等[12]發(fā)現(xiàn)經(jīng)黑曲霉發(fā)酵后的三七葉茶具有較好的抗氧化能力。Yang Min等[13]發(fā)現(xiàn)釀酒酵母和枯草芽孢桿菌共發(fā)酵三七葉后,其皂苷、酚酸、黃酮類化合物等活性物質(zhì)含量顯著增加,并表現(xiàn)出良好的抗氧化活性。此外,益生菌發(fā)酵對三七葉中主要活性成分皂苷具有一定的轉(zhuǎn)化作用,如Li Fei等[14]利用真菌Cordyceps sinensis和Ascomycotasp.將常見人參皂苷Rb1轉(zhuǎn)化為稀有人參皂苷Rg3和CK。Liu Chunying等[15]發(fā)現(xiàn)黑曲霉能將原人參二醇型皂苷Rb1、Rb2、Rc和Rd轉(zhuǎn)化為稀有人參皂苷CK。相對細(xì)菌而言,真菌對皂苷的轉(zhuǎn)化時(shí)間更短,轉(zhuǎn)化率更高,其產(chǎn)物中功能性較強(qiáng)的人參皂苷Rg3、Rg2和CK含量更高[16]。但這些研究主要是利用單一菌株或者復(fù)合菌株對三七葉進(jìn)行發(fā)酵,有必要針對不同菌株對三七葉的發(fā)酵性能進(jìn)行比較,從而篩選出適合三七葉發(fā)酵的優(yōu)質(zhì)菌株。
米根霉(Rhizopusoryzae)、粗糙脈孢菌(Neurosporo crassa)、紅曲霉(Monascus)和魯氏毛霉(Mucor rouxianus)是食品領(lǐng)域常用的4 種真菌,其中米根霉具有發(fā)達(dá)的淀粉和蛋白酶系,是藥和酒曲中的優(yōu)勢菌種,在我國傳統(tǒng)發(fā)酵中十分重要[17];粗糙脈孢菌高產(chǎn)纖維素酶、漆酶和多種消化酶,適合于發(fā)酵含纖維素較高的木本植物[18];紅曲霉在我國已有1000多年的食品發(fā)酵歷史,其能利用多種糖類和酸類、有機(jī)氮等,生成多種蛋白酶、淀粉酶等初級代謝產(chǎn)物和紅曲色素、抗菌素等次生代謝產(chǎn)物[19];魯氏毛霉是一種接合菌綱真菌,主要用于食品發(fā)酵,其分解纖維素的能力較強(qiáng)[20]。考慮到三七葉含有豐富的多糖、蛋白、纖維等成分[21],本研究選用上述4 種真菌對三七葉進(jìn)行發(fā)酵,研究其化學(xué)成分和功能活性的變化,篩選出對三七葉功能活性增效最明顯的菌株,并分析其發(fā)酵過程中的代謝物變化,以探討其發(fā)酵機(jī)制。旨在為三七葉發(fā)酵食品的菌株選擇提供參考,并為三七葉的開發(fā)利用提供理論基礎(chǔ)。
三七葉,2021年11月采收于云南省昆明市尋甸縣羊街鎮(zhèn)豐樂林下三七種植基地,經(jīng)西南林業(yè)大學(xué)植物學(xué)教研室戚建華副教授鑒定為三七的葉子,真空冷凍干燥,粉碎并過40目篩,-20 ℃保存。葉片橢圓形或倒卵形,長約5~9 cm,寬約2~5 cm。粗糙脈孢菌經(jīng)本實(shí)驗(yàn)室從發(fā)酵豆腐渣中分離純化所得;米根霉(CICC 3037)、紅曲霉(CDMCC 3.438)、魯氏毛霉(CICC 40933)購自廣東省微生物菌種保藏中心。
沒食子酸、D(+)-無水葡萄糖、阿卡波糖、ABTS、對硝基苯基-α-D-吡喃葡萄糖苷(4-nitrophenyl-α-Dglucopyranoside,PNPG)、水溶性VE(Trolox)、三七總皂苷 上海源葉生物科技有限公司;蘆丁、2,4,6-三(2-吡啶基)三嗪(2,4,6-tripyridin-2-yl-1,3,5-triazine,TPTZ)上海阿拉丁生化科技股份有限公司;DPPH西格瑪奧德里奇(上海)貿(mào)易有限公司;α-葡萄糖苷酶(700000 U/mL)北京索萊寶科技有限公司;乙腈、甲醇、甲酸(均為色譜級)美國Millipore公司;氨水(色譜級)德國Merck公司;其余試劑均為國產(chǎn)分析純。
FD-304箱式真空冷凍干燥機(jī) 濟(jì)南駿德儀器有限公司;XINYI-IID超聲波粉碎機(jī)、SB-400DTY超聲波清洗機(jī) 寧波新藝超聲設(shè)備有限公司;BSA224S電子天平賽多利斯科學(xué)儀器(北京)有限公司;Infinite F50酶標(biāo)儀帝肯貿(mào)易有限公司(上海);Nexera X2 LC-30AD超高效液相色譜系統(tǒng) 日本島津公司;Q Exactive plus質(zhì)譜儀美國賽默飛世爾科技公司;Concentrator plus真空離心濃縮儀 艾本德中國有限公司。
1.3.1 菌種活化與培養(yǎng)
將米根霉、粗糙脈孢菌、紅曲霉和魯氏毛霉分別接種于馬鈴薯葡萄糖瓊脂(potato dextrose agar,PDA)培養(yǎng)基上,25 ℃恒溫培養(yǎng)[22]。待菌種長滿平板后,用打孔器打取已活化好的菌種并接種到PDA液體培養(yǎng)基中,得到濃度為1×105個(gè)/mL的菌懸液[23]。
1.3.2 樣品及發(fā)酵液制備
取4 g三七葉粉末,加100 mL蒸餾水,121 ℃高壓蒸汽滅菌15 min,冷卻至室溫后,接種4 mL濃度為1×105個(gè)/mL的菌懸液,于28 ℃、150 r/min搖床中培養(yǎng)10 d,每隔24 h等體積取樣一次,取樣后置于4 ℃冰箱中停止發(fā)酵,并將所有樣品保存在-20 ℃冰箱備用[13]。在不含菌種的三七葉溶液中取樣,作為空白對照,即為第0天發(fā)酵液。隨后,加入無水乙醇使發(fā)酵液中乙醇的體積分?jǐn)?shù)為80%,然后置于50 ℃水浴超聲(160 W,40 kHz)提取2 h,離心后取上清液置于-20 ℃冰箱[24]。
1.3.3 總皂苷含量測定
采用香草醛-高氯酸-冰乙酸法[25]測定。40 μL樣品溶液,于80 ℃恒溫水浴鍋中蒸干溶劑后加入20 μL 5%香草醛-冰乙酸溶液和80 μL高氯酸,60 ℃水浴15 min,冰浴5 min后加入200 μL冰乙酸停止反應(yīng),在540 nm波長處測定吸光度。在同等條件下測定質(zhì)量濃度分別為50、100、150、200、250、300 μg/mL三七總皂苷溶液的吸光度,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得到公式Y(jié)=1.7768X+0.0586(R2=0.995),根據(jù)公式計(jì)算總皂苷含量。
1.3.4 總多糖含量測定
采用苯酚-硫酸法[26]測定總多糖含量。50 μL樣品溶液,加入50 μL 5%苯酚溶液,隨后緩慢加入250 μL濃硫酸,40 ℃水浴恒溫10 min,冷卻至室溫,于490 nm波長處測定吸光度。在同等條件下測定質(zhì)量濃度分別為20、40、60、80、100、150、200 μg/mL的D(+)-無水葡萄糖溶液的吸光度,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得到公式Y(jié)=4.818X+0.2156(R2=0.9915),根據(jù)公式計(jì)算總多糖含量。
1.3.5 總酚和總黃酮含量測定
采用福林-酚法[27]測定總酚含量。取50 μL樣品溶液,加入125 μL 0.1 mol/L福林-酚溶液,最后加入100 μL 75 g/L碳酸鈉溶液,避光反應(yīng)30 min后,于765 nm波長處測定吸光度,以100 μL蒸餾水代替碳酸鈉溶液作對照組。同等條件下測定沒食子酸質(zhì)量濃度為10、20、40、60、80、100 μg/mL時(shí)的吸光度,并繪制沒食子酸標(biāo)準(zhǔn)曲線,得到公式Y(jié)=0.009X+0.0365(R2=0.9978),根據(jù)公式計(jì)算總酚含量。
采用NaNO2-Al(NO3)3-NaOH法[28]測定總黃酮含量。取40 μL樣品溶液,加入20 μL 50 g/L亞硝酸鈉溶液,室溫反應(yīng)6 min,加入20 μL 100 g/L硝酸鋁溶液,室溫反應(yīng)6 min,加入140 μL 40 g/L氫氧化鈉溶液,室溫反應(yīng)15 min后,于510 nm波長處測定吸光度。80%乙醇溶液代替相應(yīng)的試劑為對照組。同等條件下測定蘆丁質(zhì)量濃度為20、40、60、80、100 μg/mL時(shí)的吸光度,并繪制蘆丁標(biāo)準(zhǔn)曲線,得到公式Y(jié)=0.0013X-0.0103(R2=0.9921),根據(jù)公式計(jì)算總黃酮含量。
1.3.6 體外抗氧化活性測定
1.3.61 DPPH自由基清除能力
參照Xiao Yecheng等[29]的方法測定不同發(fā)酵液的DPPH自由基清除活性,并作適當(dāng)修改。適宜濃度100 μL樣品溶液,加入100 μL DPPH自由基溶液,混勻,室溫避光反應(yīng)30 min,于517 nm波長處測定吸光度,其中,以80%乙醇溶液代替DPPH自由基溶液作為對照組。VC和2,6-二叔丁基-4-甲基苯酚(butylated hydroxytoluene,BHT)為陽性對照。以Trolox為標(biāo)準(zhǔn)品,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得到公式Y(jié)=-0.0197X+0.8968(R2=0.9906),計(jì)算樣品的Trolox當(dāng)量,結(jié)果以其與第0天發(fā)酵液DPPH自由基清除能力的比值表示(相對能力/%)。
1.3.62 ABTS陽離子自由基清除能力
參照Tao Liang等[30]的方法,并作適當(dāng)修改。將7 mmol/L ABTS和140 mmol/L過硫酸鉀溶液混合,室溫避光反應(yīng)12~16 h,制得ABTS陽離子自由基儲(chǔ)備液,后稀釋至其吸光度在734 nm波長處為0.7±0.2,可得ABTS陽離子自由基工作液。取50 μL適宜濃度的樣品溶液于酶標(biāo)板中,加入200 μL ABTS陽離子自由基工作液,室溫避光反應(yīng)6 min后于734 nm波長處測吸光度。VC和BHT為陽性對照。其中,以80%乙醇溶液代替ABTS陽離子自由基溶液作為對照組。以Trolox為標(biāo)準(zhǔn)品,得到公式Y(jié)=-0.0089X+0.7406(R2=0.9933),根據(jù)公式計(jì)算,計(jì)算樣品的Trolox當(dāng)量,結(jié)果以其與第0天發(fā)酵液ABTS陽離子自由基清除能力的比值表示(相對能力/%)。
1.3.63 鐵離子還原能力
參照Xu Xiaoyan等[31]的方法測定樣品的鐵離子還原能力(ferric ion reducing antioxidant power,F(xiàn)RAP)。分別配制30 mmol/L pH 3.6的乙酸緩沖溶液、10 mmol/L TPTZ工作液及20 mmol/L的FeCl3溶液,將3 種溶液以體積比10∶1∶1混勻即得到FRAP工作液。取50 μL樣品溶液于酶標(biāo)板中,加入250 μL FRAP工作液,37 ℃水浴恒溫10 min后在593 nm波長處測定吸光度。其中,80%乙醇溶液代替FRAP工作液作為對照組。同等條件下測定硫酸亞鐵的吸光度,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得到公式Y(jié)=0.0056X+0.0206(R2=0.9929),根據(jù)公式計(jì)算,結(jié)果以其與第0天發(fā)酵液相應(yīng)FRAP的比值表示(相對能力/%)。
1.3.7α-葡萄糖苷酶抑制能力測定
參照Amirah等[32]的方法,略修改。50 μL樣品溶液中加入25 μL 0.2 U/mLα-葡萄糖苷酶溶液(磷酸緩沖液配制),37 °C水浴恒溫10 min,后加入50 μL 5 mmol/L PNPG溶液,37 ℃下水浴恒溫15 min后,加入100 μL 0.2 mol/L碳酸鈉溶液終止反應(yīng),并在405 nm波長處測定吸光度(A)。其中,以蒸餾水代替α-葡萄糖苷酶溶液作為對照組(A0),以80%乙醇溶液代替樣品溶液作為空白對照(A1)。以阿卡波糖為陽性對照。按下式計(jì)算α-葡萄糖苷酶抑制率:
1.3.8 代謝組學(xué)分析
米根霉、粗糙脈孢菌、紅曲霉和魯氏毛霉發(fā)酵后,綜合比較三七葉化學(xué)成分和體外抗氧化活性及抑制α-葡萄糖苷酶能力的變化情況,并篩選得到對功能活性增效最強(qiáng)的菌株,對該菌株發(fā)酵后的代謝物做進(jìn)一步分析。
代謝物提取[33]:樣品置于4 ℃解凍后吸取3 mL液體樣品于離心管中,凍干后加入1 mL甲醇-水溶液(4∶1,V/V)混勻,冰浴超聲30 min,于-20 ℃靜置2 h,然后于4 ℃、16000×g離心20 min,取上清液。將上清液在高速真空濃縮離心機(jī)中揮干,加入100 μL甲醇-水溶液(1∶1,V/V)復(fù)溶,4 ℃、20000×g離心20 min,取上清液用于質(zhì)譜分析,同時(shí)從每個(gè)樣品中取等體積樣品,混勻制備QC樣品,以驗(yàn)證系統(tǒng)的穩(wěn)定性和可重復(fù)性。
超高效液相色譜條件[34]:Waters ACQUITY UPLC?HSS T3色譜柱(2.1 mm×100 mm,1.8 μm);柱溫40 ℃;流速0.3 mL/min;進(jìn)樣量4 μL。整個(gè)分析過程樣品一直置于4 ℃自動(dòng)進(jìn)樣器中。梯度洗脫程序如表1所示。
表1 梯度洗脫過程Table 1 Gradient elution procedure
質(zhì)譜條件[35]:樣品采用電噴霧電離(electrospray ionization,ESI)進(jìn)行正離子和負(fù)離子模式檢測。噴霧電壓正離子模式為3800 V,負(fù)離子模式為3200 V;離子傳輸管溫度為320 ℃;母離子掃描范圍為m/z7~1050。
數(shù)據(jù)處理:原始數(shù)據(jù)采用MSDIAL軟件進(jìn)行峰對齊、保留時(shí)間校正和提取峰面積。代謝物結(jié)構(gòu)鑒定采用精確質(zhì)量數(shù)匹配(質(zhì)量偏差<0.02‰)和二級譜圖匹配(質(zhì)量偏差<0.02 Da)的方式,檢索HMDB、MassBank等公共數(shù)據(jù)庫及自建數(shù)據(jù)庫。對提取得到的數(shù)據(jù),刪除組內(nèi)缺失值>50%的離子峰;對正負(fù)離子數(shù)據(jù)分別進(jìn)行總峰面積歸一化,整合正負(fù)離子峰并應(yīng)用R軟件進(jìn)行模式識(shí)別,數(shù)據(jù)經(jīng)Unit variance scaling預(yù)處理后,進(jìn)行后續(xù)數(shù)據(jù)分析。
所有實(shí)驗(yàn)3 次重復(fù),使用Origin 2018和SPSS進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)、分析、繪圖。P<0.05,差異顯著。利用OmicStudio云平臺(tái)(https://www.omicstudio.cn/tool)和歐易集團(tuán)云平臺(tái)(https://cloud.oebiotech.cn/task/)進(jìn)行熱圖、火山圖、相關(guān)性以及主成分分析(principal component analysis,PCA)。
由圖1可知,不同菌株對三七葉總皂苷的影響存在顯著差異,其中隨著發(fā)酵時(shí)間的延長,米根霉、粗糙脈孢菌和魯氏毛霉發(fā)酵的三七葉皂苷含量均呈現(xiàn)先降低后升高然后又降低的趨勢,而紅曲霉則是先降低后升高。除米根霉外的3 種真菌發(fā)酵后的總皂苷含量均低于未發(fā)酵樣品,原因可能是由于皂苷發(fā)酵過程中轉(zhuǎn)化成了稀有人參皂苷,導(dǎo)致總皂苷含量降低[36]。陳紅惠等[12]同樣發(fā)現(xiàn)黑曲霉發(fā)酵可使三七葉中皂苷含量先增加后下降,原因是極性較低的稀有皂苷含量有所增加。閆炳雄等[37]報(bào)道了黑曲霉可以高效地轉(zhuǎn)化三七藥材中的皂苷類成分,且伴有幾種稀有人參皂苷和三七皂苷的生成。而米根霉發(fā)酵4 d后,其總皂苷含量從未發(fā)酵的170.19 mg/g增加到187.31 mg/g,原因可能是三七葉木質(zhì)部細(xì)胞的細(xì)胞壁被米根霉產(chǎn)生的某些纖維素酶水解,提高了皂苷提取率[38]。
圖1 真菌發(fā)酵對總皂苷含量的影響Fig.1 Effect of fungal fermentation on total saponin content
如圖2所示,隨著發(fā)酵時(shí)間的延長,4 種真菌發(fā)酵后的總多糖含量均明顯降低,其原因可能是微生物在生長過程中,需要不斷地消耗多糖等營養(yǎng)物質(zhì)[36]。進(jìn)入發(fā)酵后期,菌種活力下降,減少了對糖類的利用[39]。與梅玉立等[40]研究結(jié)果一致。
圖2 真菌發(fā)酵對多糖含量的影響Fig.2 Effect of fungal fermentation on polysaccharide content
由圖3可知,米根霉、粗糙脈孢菌和紅曲菌在發(fā)酵7~10 d后使三七葉的總酚含量分別提高40.4%、17.66%、8.1%;而魯氏毛霉發(fā)酵卻使三七葉總酚含量顯著下降。經(jīng)研究發(fā)現(xiàn),不同菌種、發(fā)酵時(shí)間和發(fā)酵方式會(huì)造成發(fā)酵前后總酚含量的不同[41-42]。張媛媛等[11]研究發(fā)現(xiàn)三七葉茶經(jīng)凝結(jié)芽孢桿菌發(fā)酵后,其醇提物的總酚和總黃酮含量顯著降低。陳紅惠等[12]研究發(fā)現(xiàn)三七葉發(fā)酵茶經(jīng)黑曲霉發(fā)酵后,其多酚含量顯著降低,黃酮含量在發(fā)酵第15天達(dá)到最大值。
此外,米根霉和魯氏毛霉在發(fā)酵1~2 d后使三七葉的總黃酮含量分別提高8.66%和17.11%;而粗糙脈孢菌和紅曲霉發(fā)酵后,三七葉的總黃酮含量顯著降低。米根霉和魯氏毛霉發(fā)酵三七葉后其總黃酮的含量顯著升高,原因可能是米根霉和魯氏毛霉在發(fā)酵過程中產(chǎn)生的水解酶降低了淀粉、纖維等高分子對活性成分的包裹作用,有利于黃酮類物質(zhì)的溶出[43]。粗糙脈孢菌和紅曲霉發(fā)酵三七葉后其總黃酮的含量顯著降低,這與發(fā)酵過程中三七葉的某些黃酮類成分轉(zhuǎn)化有關(guān)。
考慮到抗氧化機(jī)制的復(fù)雜性,采用DPPH自由基和ABTS陽離子自由基清除能力以及FRAP綜合評價(jià)其體外抗氧化活性。如圖4所示,米根霉、粗糙脈孢菌、紅曲霉發(fā)酵后,三七葉的DPPH自由基、ABTS陽離子自由基清除能力以及FRAP呈先降后升的趨勢,而魯氏毛霉發(fā)酵后,三七葉的DPPH自由基、ABTS陽離子自由基清除能力以及FRAP呈先降后平緩的趨勢。4 種真菌發(fā)酵3~5 d均可顯著增強(qiáng)三七葉的抗氧化活性,但不同菌株之間作用不一。對增效作用進(jìn)行分析比較,發(fā)現(xiàn)紅曲霉發(fā)酵3~10 d后,三七葉的DPPH自由基、ABTS陽離子自由基清除能力以及FRAP分別提高14.30%、29.46%、18.40%,顯著高于其他菌株。其中,三七葉的DPPH自由基清除能力和FRAP在紅曲霉發(fā)酵3 d后效果顯著,ABTS陽離子自由基清除能力在紅曲霉發(fā)酵3 d后提高5.13%,但顯著低于發(fā)酵10 d后。真菌發(fā)酵可以增強(qiáng)抗氧化活性,與凌阿靜等[44]研究結(jié)果相似。
圖4 真菌發(fā)酵對抗氧化活性的影響Fig.4 Effect of fungal fermentation on antioxidant activity of P. notoginseng leaves
由圖5可知,4 種真菌在發(fā)酵前期均降低了三七葉對α-葡萄糖苷酶抑制活性,但隨著發(fā)酵時(shí)間的延長,對α-葡萄糖苷酶抑制活性有所增強(qiáng)。米根霉、粗糙脈孢菌和魯氏毛霉發(fā)酵后,三七葉對α-葡萄糖苷酶抑制活性影響不明顯,而紅曲霉發(fā)酵6 d后,三七葉對α-葡萄糖苷酶的抑制活性提高16.03%,明顯高于其他菌株。這與王丹等[45]的研究結(jié)果一致,紅曲霉發(fā)酵可以提高α-葡萄糖苷酶抑制活性。因此,紅曲霉是增強(qiáng)α-葡萄糖苷酶抑制活性較合適的菌株。
圖5 真菌發(fā)酵對抑制α-葡萄糖苷酶活性的影響Fig.5 Effect of fungal fermentation on α-glucosidase inhibitory activity
基于前面的實(shí)驗(yàn)結(jié)果,紅曲霉發(fā)酵對三七葉的功能活性增效最好,因此采用非靶向代謝組學(xué)分析紅曲霉發(fā)酵3 d后三七葉中代謝物的變化。
2.6.1 代謝物分類
從三七葉中共鑒定出573 種代謝物,其中正離子模式下檢測到380 種,負(fù)離子模式下193 種,如圖6所示。其中,顏色代表分類,面積代表分類中代謝物的相對比例。三七葉中的代謝物在超類水平上主要包括脂質(zhì)和類脂分子、有機(jī)酸及其衍生物、有機(jī)雜環(huán)化合物;在類水平上主要包括羧酸及其衍生物、有機(jī)氧化合物、丙烯醇脂質(zhì);在亞類水平上以氨基酸、肽和類似物為主。
圖6 正(A)、負(fù)(B)離子模式下的代謝物分類Fig.6 Classification of metabolites identified in positive (A) and negative (B) ion modes
2.6.2 代謝物的相關(guān)分析
根據(jù)代謝物的主成分分析(principal component analysis,PCA),如圖7A所示,三七葉和發(fā)酵三七葉在正、負(fù)離子模式下分布距離較遠(yuǎn),表明發(fā)酵前后的代謝物種類和含量有顯著差異。正負(fù)離子模式下樣品點(diǎn)集中,表明樣品重復(fù)性好。根據(jù)P<0.05和|log2倍數(shù)變化(fold change,F(xiàn)C)|≥1.5構(gòu)建火山圖,如圖7B所示,正離子模式下代謝物有380 種,其中28 種顯著上調(diào),63 種顯著下調(diào);負(fù)離子模式下代謝物有193 種,其中顯著上調(diào)的有24 種,顯著下調(diào)的有46 種。綜上,正負(fù)離子模式下上調(diào)的代謝物均明顯少于下調(diào)的代謝物。
圖7 代謝物的相關(guān)分析Fig.7 Correlation analysis among metabolites
根據(jù)正交偏最小二乘判別分析獲得的投影中變量重要性(variable importance in projection,VIP)值,選擇VIP值排在前50的差異代謝物繪制聚類熱圖,如圖7C所示。結(jié)果發(fā)現(xiàn)發(fā)酵前后變化的代謝物主要集中在氨基酸、生物堿、碳水化合物、脂類、酚類、類黃酮以及一些萜類化合物等。在發(fā)酵過程中,三七葉中的蛋白質(zhì)發(fā)生部分水解,促進(jìn)氨基酸形成;而氨基酸能與可溶性糖等產(chǎn)生反應(yīng),生成新物質(zhì);同時(shí)三七葉中的黃酮苷也可以被降解成黃酮苷元和糖體。總之,三七葉在發(fā)酵過程中發(fā)生復(fù)雜的代謝反應(yīng),也是發(fā)酵后三七葉化學(xué)成分變化的原因。
2.6.3 差異代謝物與功能活性的相關(guān)性分析
將功能活性與代謝物之間進(jìn)行Spearman相關(guān)性分析,如圖8所示。在正、負(fù)離子模式下,只有少量代謝物與DPPH自由基、ABTS陽離子自由基清除能力、FRAP和α-葡萄糖苷酶抑制活性顯著相關(guān),這些代謝物所屬類別較多,這意味著發(fā)揮功能活性是各種代謝物協(xié)同作用的結(jié)果,而不是單一作用。
圖8 功能活性與代謝物的相關(guān)性Fig.8 Correlation between functional activity and metabolites
2.6.4 皂苷類化合物分析
由于皂苷被認(rèn)為是三七中最主要的活性成分之一,因此針對代謝物中的皂苷類化合物進(jìn)行分析。紅曲霉發(fā)酵三七葉發(fā)酵前后代謝物中的皂苷類化合物如表2所示,共鑒定到21 種皂苷類化合物,其中正離子模式下10 種,負(fù)離子模式下11 種,并發(fā)現(xiàn)其中9 種皂苷類化合物經(jīng)發(fā)酵后含量發(fā)生了顯著變化。由圖9可知,人參皂苷F2顯著上調(diào),其余皂苷顯著下調(diào)。其中,人參皂苷F2是由楊秀偉等[46]從人參莖葉中鑒定出來的稀有皂苷。研究表明,稀有人參皂苷具有較好的藥理活性,如人參皂苷C-K具有抗結(jié)直腸癌、抗炎作用[47];人參皂苷F2是原人參二醇型皂苷如Rb1、Rb2、Rc和Rd等失去若干糖而代謝降解形成的次級皂苷之一[48-49],被證明具有抗氧化、降脂等生物活性[50]。稀有人參皂苷因含量低而受到限制,利用生物轉(zhuǎn)化法對普通人參單體皂苷進(jìn)行結(jié)構(gòu)修飾是獲得稀有人參皂苷的重要途徑[51]。陳旸等[52]發(fā)現(xiàn)植物乳桿菌發(fā)酵人參后,人參Rd含量顯著提高,Rd作為稀有人參皂苷轉(zhuǎn)化過程中的中間產(chǎn)物,其作用極為重要。而依據(jù)上述總皂苷含量實(shí)驗(yàn)結(jié)果,推測出三七葉在發(fā)酵過程中同樣存在著皂苷類物質(zhì)的轉(zhuǎn)化。
圖9 9 種皂苷類化合物含量的變化Fig.9 Changes in contents of nine saponins
表2 三七葉發(fā)酵前后代謝物中的皂苷類化合物Table 2 Saponins in metabolites of raw and fermented P. notoginseng leaves
2.6.5 京都基因與基因組百科全書(Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes,KEGG)代謝通路分析
對差異代謝物參與的通路進(jìn)行KEGG富集分析,結(jié)果如圖10所示。圖中C(細(xì)胞過程)、E(環(huán)境信息處理)、G(遺傳信息處理)、H(人類疾?。?、M(新陳代謝)、O(生物體系統(tǒng)),圓圈大小表示注釋到該通路中的差異代謝物數(shù)量,圓圈顏色越藍(lán)越顯著。由于本實(shí)驗(yàn)研究三七葉在發(fā)酵過程中的代謝物變化,因而針對M(新陳代謝)進(jìn)行分析。嘌呤代謝、嘧啶代謝、類黃酮生物合成、輔助因子的生物合成等是紅曲霉在發(fā)酵三七葉過程中最可能的代謝通路,其富集到的差異代謝物數(shù)量分別為5、4、4 個(gè)和6 個(gè)。其中,嘧啶代謝往往與氨基酸代謝緊密聯(lián)系,如5-甲基胞嘧啶和胸腺嘧啶會(huì)參與纈氨酸、亮氨酸和異亮氨酸降解;輔助因子是碳代謝與能量代謝的中心代謝物,對氨基酸代謝、脂類代謝、植物次生代謝等有重要作用。
真菌發(fā)酵對三七葉中的皂苷、多糖、總酚和總黃酮含量有較大的影響,其中皂苷和多糖含量在發(fā)酵后顯著降低,而總酚與總黃酮含量在不同真菌中差異較大,原因可能是三七葉中皂苷和多糖含量較高,而總酚和總黃酮含量較低。真菌發(fā)酵對三七葉的功能活性有一定的影響,4 種真菌的抗氧化活性在發(fā)酵3~5 d后明顯增強(qiáng),其中紅曲霉發(fā)酵3 d后,三七葉的DPPH自由基和ABTS陽離子自由基清除能力和FRAP分別提高14.30%、5.13%、18.40%;相比其他真菌,其增效作用更顯著。此外,隨著發(fā)酵時(shí)間的延長,發(fā)酵對α-葡萄糖苷酶抑制活性有所增強(qiáng),其中紅曲霉發(fā)酵6 d后增強(qiáng)16.03%,在4 種真菌發(fā)酵中增效作用最大。通過上述結(jié)果可得,紅曲霉發(fā)酵3 d后,對三七葉的抗氧化活性和α-葡萄糖苷酶抑制活性的增效作用較顯著,因此選擇紅曲霉作為本研究中最適宜發(fā)酵三七葉的菌株。有趣的是,三七葉中含有豐富的纖維,但本研究選用的分解纖維素能力較強(qiáng)的兩株菌株(粗糙脈孢菌、魯氏毛霉菌)并非是對三七葉功能活性增效最明顯的菌株,原因可能是三七葉除了富含纖維外,也含有豐富的多糖、蛋白質(zhì)、維生素、礦物質(zhì)、氨基酸等營養(yǎng)成分,而這些營養(yǎng)成分可以被真菌所利用,產(chǎn)生具有各種功能活性的次生代謝產(chǎn)物。
進(jìn)一步的非靶向代謝組學(xué)分析揭示了三七葉在發(fā)酵過程中代謝物的變化,發(fā)酵后上調(diào)的代謝物明顯少于下調(diào)的代謝物,主要集中在氨基酸、生物堿、碳水化合物、脂類、酚類、類黃酮以及萜類化合物等,這些代謝物可能作為三七葉發(fā)酵的底物,被逐漸氧化消耗,意味著這些代謝物可能參與三七葉發(fā)酵的過程。對其中的21 種皂苷類化合物進(jìn)行進(jìn)一步分析,發(fā)現(xiàn)其中只有人參皂苷 F2顯著上調(diào),另有8 種皂苷顯著下調(diào)。且只有少量代謝物與DPPH自由基和ABTS陽離子自由基清除能力、FRAP和α-葡萄糖苷酶抑制活性顯著相關(guān)。通過KEGG富集分析發(fā)現(xiàn)嘌呤代謝、嘧啶代謝、類黃酮生物合成、輔助因子的生物合成等是紅曲霉在發(fā)酵三七葉過程中最可能的代謝通路,這解釋了紅曲霉發(fā)酵三七葉后功能活性發(fā)生變化的原因,揭示了其代謝途徑。本研究基于代謝組學(xué)技術(shù)研究了發(fā)酵過程中的差異代謝物以及皂苷類化合物的變化情況,并初步推測了其可能的代謝途徑。然而,由于發(fā)酵過程復(fù)雜,對其代謝機(jī)制的研究仍需深入探討。此外,本研究是在同樣的條件下利用不同真菌對三七葉進(jìn)行發(fā)酵,在今后的研究中可對不同菌株的發(fā)酵條件進(jìn)行優(yōu)化,以提高菌株的發(fā)酵能力。同時(shí)進(jìn)一步對三七葉中皂苷的發(fā)酵轉(zhuǎn)化進(jìn)行深入研究,為三七稀有皂苷的生物轉(zhuǎn)化機(jī)制提供思路。以期為三七葉的開發(fā)利用提供理論依據(jù)。