陳偉毅,胡 柯,劉 雨,彭 靖,李小成,段紹毅,陳立軍,楊騏彰
(1.湖南醫(yī)藥學院醫(yī)學院,湖南 懷化 418000;2.湖南醫(yī)藥學院第一附屬醫(yī)院普外科,湖南 懷化 418000)
胃癌(gastric cancer)是消化系統(tǒng)常見的惡性腫瘤之一,全國腫瘤中心數(shù)據(jù)顯示,胃癌發(fā)病人數(shù)和死亡人數(shù)均居所有惡性腫瘤第2 位,已嚴重危害我國居民健康[1]?;熓侵委熚赴┑闹饕椒ㄖ?,然而胃癌對化療并不敏感,目前應用的多種藥物以及多種給藥方案的總體療效評價很不理想[2]?;熓≈饕怯捎谖赴熕幬锂a(chǎn)生了多藥耐藥性(multidrug resistance,MDR)[3]。胃癌多藥耐藥的產(chǎn)生嚴重影響了化療在胃癌治療中的效果,如何逆轉(zhuǎn)多藥耐藥已成為胃癌治療中的一個關鍵問題。硫化氫(hydrogen sulphide,H2S)是一種新的內(nèi)源性氣體信號分子,具有多種生理、毒理和藥理作用,如調(diào)節(jié)離子通道的開放和關閉、抑制細胞增殖、抗氧化應激、舒張平滑肌、抗內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激等[4]。研究表明[5],H2S 可以促進腫瘤耐藥性,但H2S 對胃癌耐藥性的影響目前尚未明確。本研究擬探討H2S 與胃癌多藥耐藥的關系,為逆轉(zhuǎn)胃癌多藥耐藥提供新的靶點。
1.1 藥物與試劑 RPMI 1640、胎牛血清(美國Gibco公司),順鉑(齊魯制藥有限公司),阿霉素(深圳萬樂藥業(yè)有限公司),5-氟尿嘧啶(海南卓泰制藥有限公司),CCK8 試劑盒(碧云天公司),BCA 蛋白定量試劑盒(北京索萊寶科技有限公司),NaSH(美國Sigma公司),胱硫醚-β-合成酶(Cystathionine-β-synthase,CBS)抗體、β-actin 抗體(美國CST 公司)。
1.2 儀器 UV2450 型亞甲基藍分光光度計(日本SHIMADZU 公司),AE2000 型光學倒置顯微鏡(美國Motic 公司),Mini-PROTEAN Tetra 型聚丙烯酰胺垂直電泳系統(tǒng)、ChemiDoc XRS+型凝膠成像系統(tǒng)(美國Bio-Rad 公司)。
1.3 細胞及培養(yǎng) 人胃癌MGC803 細胞購于中科院上海細胞庫,用含有10%的胎牛血清的RPMI 1640,培養(yǎng)于37 ℃、5% CO2孵箱中,每48 h 用0.25%的胰酶消化傳代進行后續(xù)實驗。
1.4 方法
1.4.1 順鉑誘導多藥耐藥胃癌細胞株的建立 取對數(shù)生長期的胃癌MGC803 細胞,用含1 mg/L 順鉑的培養(yǎng)基培養(yǎng)48 h 后更換為不含順鉑的培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)。待細胞恢復活力后,用含相同濃度順鉑的培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng),直至細胞能夠在含1 mg/L 順鉑的培養(yǎng)基里穩(wěn)定生長。采用同樣的方法將順鉑濃度逐步提高為2、3、4、5 mg/L,最終建立耐5 mg/L 順鉑的胃癌多藥耐藥細胞MGC803/MDR,倒置顯微鏡觀察細胞形態(tài)并拍照。
1.4.2 細胞分組及處理 將MGC803/MDR 細胞隨機分成對照組和氨基氧乙酸(AOAA)組,AOAA 組予以1 mmol/L AOAA 處理24 h,對照組予以等量的培養(yǎng)基處理24 h。另取MGC803 細胞隨機分成對照組和NaSH 組,NaSH 組予以200 μmol/L NaSH 處理24 h,對照組予以等量的培養(yǎng)基處理24 h。
1.4.3 CCK8 法計算IC50值 取對數(shù)生長期的胃癌MGC803 或MGC803/MDR 細胞以每孔1×105/ml,100 μl/孔接種在96 孔板中,常規(guī)培養(yǎng)細胞達到板底80%,分別予以0、1、2、3、4、6 mg/L 順鉑、5-氟尿嘧啶、0、0.5、1、1.5、2 mg/L 阿霉素處理24 h 后,吸去培養(yǎng)液,每孔加入含10 μl CCK8 的培養(yǎng)液110 μl,同時在空白孔內(nèi)加入含10 μl CCK8 的培養(yǎng)液110 μl 進行空白對照,繼續(xù)孵育1 h,酶標儀檢測450 nm 出吸光度OD 值,計算細胞活力=(加藥孔OD 值-空白孔OD值)/(不加藥孔OD 值-空白孔OD 值)×100%,采用改良寇式法計算IC50值[6]。
1.4.4 亞甲基藍分光光度計法檢測H2S 含量 取對數(shù)生長期的胃癌MGC803 或MGC803/MDR 細胞以每孔1×106/ml,500 μl/孔接種在24 孔板,收集細胞培養(yǎng)基于含2%醋酸鋅30 μl 離心管中,超聲波裂解細胞后將其置于之前的離心管中,采用亞甲基藍分光光度計法檢測H2S 含量[7]。
1.4.5 Western blot 檢測蛋白表達 提取細胞蛋白,采用BCA 法測量蛋白濃度,每組取60 μg 蛋白樣品進行聚丙烯酰胺凝膠電泳,然后將蛋白轉(zhuǎn)移到NC 膜上,封閉后加入一抗4 ℃過夜,再加入二抗孵育2 h,曝光顯影,以β-actin 作為內(nèi)參,采用Quantity one軟件分析蛋白表達量。
1.5 統(tǒng)計學方法 采用SPSS 26.0 軟件進行統(tǒng)計分析,實驗數(shù)據(jù)均以()表示,兩兩比較采用獨立樣本檢驗,<0.01 視為統(tǒng)計學意義顯著。
2.1 細胞形態(tài)學觀察 采用倒置顯微鏡觀察細胞形態(tài):MGC803 細胞形態(tài)規(guī)則,呈多邊性或三角形,胞體較大,細胞之間連接緊密,邊界清晰。MGC803/MDR細胞排列松散,細胞之間界限不清,胞體較小,細胞形態(tài)呈梭形或不規(guī)則形,見圖1。
圖1 胃癌細胞形態(tài)觀察(×200)
2.2 兩種胃癌細胞株IC50值 MGC803/MDR 細胞對順鉑、阿霉素、5-氟尿嘧啶的IC50值高于MGC803細胞(<0.01),見圖2。
圖2 兩種胃癌細胞株IC50 值
2.3 兩種胃癌細胞株H2S、硫化氫生成酶CBS 表達MGC803/MDR 細胞H2S(91.8±4.36)、CBS(0.85±0.02)表達高于MGC803 細胞(62.53±1.86)、(0.32±0.01)(<0.01),見圖3。
圖3 兩種胃癌細胞CBS 表達
2.4 AOAA 對MGC803/MDR 細胞H2S 表達和IC50值的影響 采用CBS 抑制劑 AOAA 作用于MGC803/MDR 細胞24 h 后,H2S 生成顯著減少,見圖4A;對順鉑、阿霉素、5-氟尿嘧啶的IC50值顯著降低,見圖4B。
圖4 AOAA 對H2S 表達和IC50 值的影響
2.5 NaSH 對MGC803 細胞IC50值的影響 采用NaSH(外源性H2S)作用MGC803 細胞24 h 后,MGC803 細胞對順鉑、阿霉素、5-氟尿嘧啶的IC50值顯著升高,見圖5。
圖5 NaSH 對MGC803 細胞IC50 值的影響
胃癌多藥耐藥的產(chǎn)生嚴重影響了化療在胃癌治療中的效果,并導致腫瘤復發(fā)和轉(zhuǎn)移,引起胃癌治療失敗[8,9]。如何逆轉(zhuǎn)多藥耐藥已成為胃癌治療中的關鍵問題[10]。H2S 是機體內(nèi)一種新型氣體信號分子,具有分子量小、擴散快、效應廣等特點[11,12]。研究表明,H2S 與腫瘤耐藥形成有關[5],但其與胃癌多藥耐藥的關系目前尚未明確。本研究擬探討H2S 與胃癌多藥耐藥的關系,為防治胃癌多藥耐藥提供新的思路。H2S 是繼一氧化氮(NO)和一氧化碳(CO)后第3 種氣體信號分子,廣泛參與多種生理和病理過程[13,14]。近來越來越多的文獻報道H2S 與腫瘤耐藥相關,如Untereiner AA 等[15]發(fā)現(xiàn)H2S 和CBS 在5-氟尿嘧啶耐藥結(jié)腸癌細胞中顯著上調(diào),Bhattacharyya S 等[16]報道CBS 可以促進卵巢癌細胞對順鉑耐藥,Wang L等[17]發(fā)現(xiàn)CBS 過表達可引起肝癌細胞對多柔比星和舒尼替尼產(chǎn)生耐藥。上述研究表明H2S 與多種腫瘤耐藥密切相關,但H2S 與胃癌耐藥的關系尚未明確。
本研究首先采用藥物濃度遞增法建立了胃癌多藥耐藥細胞株MGC803/MDR。通過CCK8 實驗發(fā)現(xiàn)MGC803/MDR 細胞對順鉑、阿霉素、5-氟尿嘧啶的IC50值顯著高于MGC803 細胞,表明其具有多藥耐藥性。其次通過亞甲基藍分光光度計法、Western blot 等實驗發(fā)現(xiàn)MGC803/MDR 細胞H2S 含量、H2S生成酶CBS 表達高于MGC803 細胞,表明MGC803/MDR 細胞多藥耐藥性與H2S 生成增多有關。之后采用CBS 抑制劑AOAA 降低MGC803/MDR 細胞H2S后,發(fā)現(xiàn)MGC803/MDR 細胞H2S 生成減少,同時對順鉑、阿霉素、5-氟尿嘧啶的IC50值降低,表明抑制H2S 生成可以逆轉(zhuǎn)MGC803/MDR 細胞的多藥耐藥性。為了進一步驗證H2S 對胃癌多藥耐藥的影響,給予MGC803 細胞NaSH(外源性H2S)處理,發(fā)現(xiàn)在NaSH 的作用下,MGC803 細胞對順鉑、阿霉素、5-氟尿嘧啶的IC50值升高,表明增加H2S 生成可以促進MGC803 細胞多藥耐藥性。上述研究結(jié)果表明H2S介導了胃癌細胞多藥耐藥性的形成。
有研究報道[18],內(nèi)源性H2S 可以促進人胃癌細胞增殖。另有文獻報道[19],抑制H2S 生成可以減少胃癌血管生成。此外,有資料發(fā)現(xiàn)[20],降低H2S 生成可以抑制胃癌細胞的增殖、遷移。本實驗發(fā)現(xiàn)升高H2S濃度可以促進胃癌多藥耐藥,降低H2S 濃度可以逆轉(zhuǎn)胃癌多藥耐藥,表明H2S 介導了胃癌的多藥耐藥,H2S 可能是防治胃癌多藥耐藥的一個新的靶點。
綜上所述,本研究發(fā)現(xiàn)H2S 介導了胃癌的多藥耐藥的形成,發(fā)掘了胃癌多藥耐藥形成的新機制,為防治胃癌多藥耐藥提供了新的思路。然而,本研究也有一些不足之處,比如只進行了體外細胞實驗驗證,沒有進行體內(nèi)動物實驗驗證,以及H2S 通過何種途徑介導胃癌多藥耐藥,其機制還需進一步研究。