余 強(qiáng),李 祥,馬素芳
(1.山西醫(yī)科大學(xué) 醫(yī)學(xué)影像學(xué)院,山西 太原 030001;2.山西醫(yī)科大學(xué) 基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院,山西 太原 030001)
粘度作為細(xì)胞微環(huán)境的重要參數(shù)之一,不僅對(duì)細(xì)胞內(nèi)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)和新陳代謝具有重要意義,而且能夠通過影響活細(xì)胞內(nèi)生物分子和化學(xué)信號(hào)的相互作用直接或間接影響細(xì)胞的各種生理功能,如自噬等[1-5]。此外,細(xì)胞內(nèi)粘度的異常與許多疾病相關(guān),如神經(jīng)退行性疾?。?]、糖尿病[7]、癌癥[8]等,因此,檢測(cè)細(xì)胞內(nèi)粘度的變化不僅對(duì)細(xì)胞生物學(xué)基礎(chǔ)研究具有重要意義,而且對(duì)相關(guān)疾病的診斷和治療具有非常重要的指導(dǎo)作用。
傳統(tǒng)的粘度檢測(cè)方法有毛細(xì)管、落球和旋轉(zhuǎn)粘度計(jì)法等,然而以上方法僅適用于宏觀流體粘度的檢測(cè),且因檢測(cè)誤差大、取樣量多、會(huì)破壞生物樣品等缺陷,無法用于細(xì)胞微環(huán)境內(nèi)粘度的檢測(cè)[9-11]。因此,亟需開發(fā)一種能夠檢測(cè)細(xì)胞微環(huán)境中粘度的新技術(shù)。熒光探針法是近年來興起的一種新型檢測(cè)技術(shù),該方法具有操作簡(jiǎn)便、靈敏度高、可實(shí)時(shí)檢測(cè)、非侵入式等優(yōu)點(diǎn),被廣泛應(yīng)用于活性小分子的檢測(cè)[12-14]。近年來,熒光探針法與生物成像技術(shù)相結(jié)合,廣泛應(yīng)用于細(xì)胞內(nèi)生物標(biāo)志物的實(shí)時(shí)檢測(cè),大大加速了學(xué)者們對(duì)生物體內(nèi)相關(guān)疾病發(fā)生和發(fā)展過程的了解,為疾病的精準(zhǔn)診斷和治療開辟了新方法[15-17]。其中,用于粘度檢測(cè)的熒光探針也被相繼開發(fā)[18-20]。然而,熒光成像技術(shù)用于細(xì)胞微環(huán)境粘度檢測(cè)時(shí),熒光探針常受到細(xì)胞微環(huán)境中pH值、極性以及細(xì)胞內(nèi)活性物質(zhì)的干擾。因此,構(gòu)建一種特異性強(qiáng)、穩(wěn)定性好的粘度探針是當(dāng)前需解決的難點(diǎn)之一。此外,目前已報(bào)道的絕大多數(shù)粘度探針合成過程復(fù)雜,探針的純化常需經(jīng)過柱層析,甚至重結(jié)晶等方法,提高了探針制備成本。通過一步合成法構(gòu)建特異性粘度探針,并減少其純化過程是當(dāng)前探針領(lǐng)域需解決的關(guān)鍵科學(xué)問題之一。2022年,董川課題組報(bào)道了一種線粒體靶向的近紅外熒光探針,并實(shí)現(xiàn)了脂肪肝組織、炎癥小鼠等模型中粘度的實(shí)時(shí)、原位和可視化檢測(cè)[21]。
粘度響應(yīng)的熒光探針的作用機(jī)制主要有以下幾種:(1)分子內(nèi)電荷轉(zhuǎn)移(ICT)機(jī)理。該類探針一般具有D(電子供體)-π-A(電子受體)的結(jié)構(gòu)特點(diǎn)。當(dāng)探針分子識(shí)別粘度后,分子體系的推拉電子能力發(fā)生改變,導(dǎo)致其最佳吸收光譜和最佳熒光發(fā)射光譜發(fā)生變化,進(jìn)而可通過光譜改變判斷探針分子對(duì)粘度的識(shí)別能力。如林偉英課題組構(gòu)建了一類基于ICT 機(jī)理的陽離子粘度探針,該探針可用于活細(xì)胞和斑馬魚線粒體中粘度的可視化檢測(cè)[22]。(2)熒光共振能量轉(zhuǎn)移(FRET)機(jī)理。基于FRET 識(shí)別機(jī)理的粘度探針,其最大的結(jié)構(gòu)特點(diǎn)是供體的最佳發(fā)射波長(zhǎng)和受體的最佳吸收波長(zhǎng)具有一定的重疊,導(dǎo)致體系發(fā)生非輻射能量躍遷,進(jìn)而實(shí)現(xiàn)對(duì)粘度的檢測(cè)。如林偉英課題組報(bào)道的基于FRET 識(shí)別機(jī)理的比率型熒光探針,成功應(yīng)用于線粒體中粘度的定量檢測(cè)[23]。(3)扭曲分子內(nèi)電荷轉(zhuǎn)移(TICT)機(jī)理。大多數(shù)粘度探針基于該機(jī)理構(gòu)建,此類探針一般具有可旋轉(zhuǎn)的D-π-A結(jié)構(gòu),高粘度環(huán)境將限制分子結(jié)構(gòu)中碳碳鍵的自由旋轉(zhuǎn),從而增大分子結(jié)構(gòu)的共軛程度,導(dǎo)致其熒光增強(qiáng)。如唐波課題組報(bào)道的花菁類粘度探針,可通過TICT機(jī)理有效識(shí)別粘度,并成功應(yīng)用于活體小鼠血栓中粘度的檢測(cè)[24]。
基于TICT 機(jī)理構(gòu)建的熒光探針,通常具備可旋轉(zhuǎn)的D-π-A 結(jié)構(gòu),且對(duì)粘度介質(zhì)具有較好的響應(yīng)性。本文以吲哚作為電子供體,半花菁作為電子受體,通過Knoevenagel縮合反應(yīng)制備了一種具有D-π-A結(jié)構(gòu)的熒光探針1,并用于細(xì)胞中粘度的檢測(cè),系統(tǒng)研究了探針熒光強(qiáng)度隨細(xì)胞粘度的變化。結(jié)果表明,隨著體系粘度的增加,探針的熒光強(qiáng)度逐漸增強(qiáng)。此外,該探針對(duì)粘度具有較好的特異性,能夠通過生物熒光成像實(shí)現(xiàn)對(duì)細(xì)胞中粘度變化的檢測(cè)。
Cary Eclipse 型熒光光譜儀(美國Varian 技術(shù)有限公司);Bruker AVANCE Ⅲ 400 MHz 核磁共振儀(德國Bruker公司);6210型質(zhì)譜儀(安捷倫科技公司);SGW? X-4顯微熔點(diǎn)儀(上海儀電物理光學(xué)有限公司);FV3000激光共聚焦顯微鏡(日本奧林巴斯株式會(huì)社)。
用于合成的原料化合物均購自安徽澤升科技有限公司;生物試劑魚藤酮和羰基氰化氯苯腙(CCCP)購自上海邁瑞爾生化科技有限公司;人宮頸癌細(xì)胞(HeLa cells)購自中國科學(xué)院細(xì)胞庫。
探針1的合成路線如圖1所示。
圖1 探針1的合成路線Fig.1 Synthetic route of probe 1
將1,2,3,3-四甲基-3H-吲哚鎓碘化物(1.0 g,2.8 mmol)和3-甲?;胚幔?.7 g,3.9 mmol)溶于乙醇中,回流反應(yīng)5 h。濃縮反應(yīng)液并抽濾,所得固體用無水乙醇重結(jié)晶,得到的熒光探針1 為橙色固體(0.5 g,收率33%)。
將HeLa 細(xì)胞接種于96 孔板中后,在37 ℃、5% CO2的環(huán)境中孵育24 h 待其貼壁。棄去原有培養(yǎng)液,分別向?qū)嶒?yàn)組加入濃度為2、4、6、8、10、15、20、25、30 μmol/L的探針溶液100 μL,繼續(xù)孵育24 h。將含有探針的培養(yǎng)液棄去,向每孔中加入3-(4,5-二甲基噻唑-2)-2,5-二苯基四氮唑溴鹽(MTT)溶液(0.5 mg/mL)100 μL,培養(yǎng)4 h后,再將二甲基亞砜(DMSO,100 μL)分別加入到實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組中,置于搖床上振蕩15 min后,用酶標(biāo)儀測(cè)定每孔于490 nm處的吸光度值。
將HeLa細(xì)胞接種于培養(yǎng)皿中,置于培養(yǎng)箱中孵育24 h待其貼壁后分為3組。第1組細(xì)胞中加探針溶液(20 μmol/L,1 mL)培養(yǎng)30 min;第2組細(xì)胞中先加CCCP 溶液(10 μmol/L,1 mL)培養(yǎng)10 h后,再加探針溶液(20 μmol/L,1 mL)繼續(xù)培養(yǎng)30 min;第3組細(xì)胞中先加魚藤酮溶液(10 μmol/L,1 mL)培養(yǎng)8 h后,再加探針溶液(20 μmol/L,1 mL)繼續(xù)培養(yǎng)30 min。培養(yǎng)完成后將3組細(xì)胞中的溶液分別棄去,加入磷酸鹽緩沖溶液(PBS)洗滌3 次,4%多聚甲醛固定15 min,重新加入PBS,在激光共聚焦顯微鏡下進(jìn)行細(xì)胞熒光成像實(shí)驗(yàn)。
探針分子采用核磁氫譜(1H NMR)、核磁碳譜(13C NMR)、質(zhì)譜(ESI-MS)和紅外光譜(IR)進(jìn)行表征,并進(jìn)行熔點(diǎn)測(cè)定。結(jié)果如下:1H NMR(400 MHz,DMSO-D6):δ8.71(s,1H),8.67(s,1H),8.29-8.26(m,1H),7.81-7.75(q,J=8.0 Hz,2H),7.63-7.61(m,1H),7.59(t,J=8.0 Hz,1H),7.51(t,J=8.0 Hz,1H),7.40-7.38(m,2H),7.21(d,J=16.0 Hz,1H),4.01(s,3H),1.81(s,6H);13C NMR(100 MHz,DMSO-D6):δ180.67,149.34,142.92,142.55,138.84,128.01,124.91,123.6,123.15,114.06,113.97,106.58,51.35,33.52,26.87;IR(cm-1):3 427,3 118,1 577,1 480,1 405,1 239,820,751;EST-MS(m/z):C21H22IN2計(jì)算值:429.082 8,實(shí)測(cè)值:429.084 0[M+H]+;熔點(diǎn)為276~277 ℃。
1H NMR 中,1.81 nm處為吲哚鹽部分C3原子所連2個(gè)—CH3的H,4.01 nm處為吲哚鹽部分N原子所連—CH3的H,7.21 nm 處為π 橋碳碳雙鍵的H;IR 結(jié)果顯示,3 427、3 118 cm-1處為N—H 鍵的伸縮振動(dòng)峰,1 577、1 480 cm-1處為苯環(huán)碳碳骨架的振動(dòng)峰,820 cm-1處為π 橋中碳碳雙鍵所在碳的碳?xì)湔駝?dòng)峰,751 cm-1處為苯環(huán)上的四氫峰。ESI-MS 也準(zhǔn)確測(cè)定出化合物的相對(duì)分子量。
以上表征數(shù)據(jù)均證明探針分子成功制備。
2.2.1 熒光探針的粘度響應(yīng)性研究為了考察探針對(duì)粘度的響應(yīng)性能,分別測(cè)定了探針在不同比例(g∶g)的水-甘油體系中的熒光發(fā)射強(qiáng)度。如圖2A 所示,隨著體系粘度的逐漸增加,探針(λem= 517 nm)的熒光強(qiáng)度逐漸增強(qiáng)。與純水體系相比,90%甘油體系的熒光強(qiáng)度增強(qiáng)了約100 倍,可能原因是,高粘度環(huán)境下,探針受體吲哚鎓鹽和供體吲哚環(huán)之間C—C單鍵的自由旋轉(zhuǎn)受限,使得整個(gè)分子能夠共平面,導(dǎo)致其熒光增強(qiáng)。此外,根據(jù)F?ster-Hoffmann 方程可知[25],探針熒光強(qiáng)度的對(duì)數(shù)與體系粘度的對(duì)數(shù)具有較好的線性擬合關(guān)系(r2= 0.998 0,圖2B),且檢出限(3σ/k)為1.167 cP。以上結(jié)果表明所合成的探針對(duì)于粘度檢測(cè)具有較高的靈敏度,有望用于微環(huán)境中粘度的檢測(cè)。
圖2 不同比例H2O-甘油體系中探針1的熒光發(fā)射光譜(A)及探針1熒光強(qiáng)度對(duì)數(shù)與體系粘度對(duì)數(shù)的線性關(guān)系(B)Fig.2 Fluorescence emission spectra of probe 1 in different ratios mixture of water-glycero(lA)and linear relationship between lgI and lgη(B)cprobe 1 = 10 μmol/L,λex = 480 nm
2.2.2 熒光探針的選擇性為了考察探針對(duì)粘度的選擇性,在探針?biāo)芤褐蟹謩e加入不同的活性小分子、離子等,并測(cè)定體系的熒光強(qiáng)度,結(jié)果如圖3A 所示:當(dāng)探針?biāo)芤褐屑尤肫渌》肿踊螂x子后,體系的熒光強(qiáng)度未發(fā)生明顯改變,僅在甘油溶液中的熒光強(qiáng)度明顯增強(qiáng)。此外,通過測(cè)定探針在不同溶劑體系中的熒光強(qiáng)度,發(fā)現(xiàn)其僅在甘油體系中的熒光明顯增強(qiáng),而在其它溶劑中的熒光強(qiáng)度均無明顯變化(圖3B)。由此可見,探針受其它物質(zhì)或周圍環(huán)境的影響較小,對(duì)粘度具有較好的選擇性,具有檢測(cè)細(xì)胞微環(huán)境中粘度變化的潛質(zhì)。
圖3 探針1在不同干擾物(A)及不同溶劑(B)中的熒光光譜Fig.3 Fluorescence spectra of probe 1 in the presence of various analytes(A) and in different solvents(B)cprobe 1 = 10 μmol/L,λex = 480 nm
2.2.3 熒光探針的穩(wěn)定性由于細(xì)胞內(nèi)環(huán)境組成復(fù)雜,一種性能優(yōu)良的粘度響應(yīng)熒光探針還應(yīng)具備良好的光穩(wěn)定性和pH 值穩(wěn)定性。為考察探針的光穩(wěn)定性和pH 穩(wěn)定性,分別測(cè)定了室溫光照下探針?biāo)芤杭疤结樀?0%甘油-水溶液在不同時(shí)間的熒光強(qiáng)度,結(jié)果如圖4A 所示。由圖可知,兩種體系中探針的熒光強(qiáng)度在60 min 內(nèi)均未發(fā)生明顯改變。此外,對(duì)探針?biāo)芤杭疤结樀?0%甘油-水溶液在不同pH 值下的熒光強(qiáng)度進(jìn)行檢測(cè),結(jié)果如圖4B 所示。在pH 4.0~9.0 范圍內(nèi),探針的熒光強(qiáng)度均未發(fā)生明顯變化。以上結(jié)果顯示探針本身及其響應(yīng)粘度后的熒光強(qiáng)度均不受光照和pH值的影響,說明探針具有較好的光穩(wěn)定性和pH值穩(wěn)定性。
圖4 光照(A)及pH值(B)對(duì)探針熒光強(qiáng)度的影響Fig.4 Effects of light(A) and pH values(B) on fluorescence of probe 1 cprobe 1 = 10 μmol/L,λex = 480 nm
2.3.1 熒光探針的細(xì)胞毒性研究利用MTT 法測(cè)定了不同濃度的探針溶液對(duì)細(xì)胞存活率的影響。將不同濃度(0~30 μmol·L-1)的探針溶液分別置于HeLa 細(xì)胞中培養(yǎng)24 h 后,細(xì)胞的存活率均達(dá)到85%以上(圖5),證明探針溶液的濃度對(duì)細(xì)胞存活率影響不大,可應(yīng)用于細(xì)胞微環(huán)境中粘度的檢測(cè)。
圖5 HeLa細(xì)胞在不同濃度探針1中的存活率Fig.5 The viabilities of HeLa cells in different concentrations of probe 1
2.3.2 細(xì)胞熒光成像研究探針響應(yīng)粘度主要通過熒光強(qiáng)度變化進(jìn)行?;诖?,將HeLa 細(xì)胞與探針溶液共孵育30 min,可觀察到微弱的熒光(圖6A);分別將CCCP 或魚藤酮兩種藥物作用于HeLa細(xì)胞一段時(shí)間后,再加入探針溶液孵育30 min,可觀察到細(xì)胞熒光強(qiáng)度明顯增加(圖6B、圖6C、圖6D)。這是因?yàn)镃CCP和魚藤酮均可導(dǎo)致細(xì)胞線粒體功能異常,進(jìn)而引起細(xì)胞微環(huán)境的粘度增加。藥物刺激誘導(dǎo)細(xì)胞前后,探針?biāo)尸F(xiàn)的明顯的熒光增強(qiáng)現(xiàn)象表明該探針可對(duì)細(xì)胞微環(huán)境中的粘度變化進(jìn)行有效檢測(cè)。
圖6 HeLa細(xì)胞的熒光成像Fig.6 Fluorescence imagings of HeLa cells A. cultured with probe 1(20 μmol/L) for 30 min;B. incubated with CCCP(10 μmol/L) for 10 h,and then incubated with probe 1(20 μmol/L)for another 30 min;C. incubated with rotenone(10 μmol/L) for 8 h,and then incubated with probe 1(20 μmol/L) for another 30 min;D. relative fluorescence intensity comparison of A,B and C,scale bar:20 μm
以1,2,3,3-四甲基-3H-吲哚鎓碘化物為電子受體,吲哚為電子供體,通過一步反應(yīng)成功制備了具有D-π-A結(jié)構(gòu)的熒光探針。通過考察探針的光學(xué)性質(zhì)及細(xì)胞成像情況,系統(tǒng)探究了探針對(duì)不同粘度的響應(yīng)性能及其對(duì)細(xì)胞中粘度變化的檢測(cè)能力。結(jié)果表明,探針的熒光強(qiáng)度隨著細(xì)胞粘度的增加而增強(qiáng),且不受其它物質(zhì)的干擾,探針對(duì)粘度具有較好的特異性。此外,探針對(duì)細(xì)胞的毒性較小,可以靈敏地檢測(cè)藥物刺激后細(xì)胞的粘度變化,證明該探針有進(jìn)一步應(yīng)用于生物體內(nèi)粘度檢測(cè)的潛力。