周 閏,楊 亞,駱夏輝,劉躍榮,彭丁文,劉 偉,申超峰,徐 嚴(yán)
(郴州市農(nóng)業(yè)科學(xué)研究所/湖南省農(nóng)業(yè)科學(xué)院郴州分院,湖南郴州 423000)
葡萄作為重要的經(jīng)濟(jì)類果樹作物之一,具有悠久的栽培歷史和豐富多樣的品種,是世界第二大水果。我國作為葡萄(Vitis viniferaL.)的生產(chǎn)大國之一,葡萄的栽培面積和產(chǎn)量均居世界前列[1]?!鹈鬯{(lán)寶石’是近幾年所研發(fā)的一種葡萄新品,別名‘月光之淚’,該品種屬于歐亞種,天然無核,果色藍(lán)黑,果肉脆滑,果粒果穗著色均勻一致,果皮輕薄,果肉有淡淡的玫瑰及牛奶香味。果粒為長圓形,最長的超過了5.5 cm,平均粒質(zhì)量7.7 g,最大的果粒質(zhì)量在10 g 以上,果穗較大,穗質(zhì)量2~3 kg,最高產(chǎn)量可達(dá)4 000 kg/667 m2?!鹈鬯{(lán)寶石’優(yōu)質(zhì)、豐產(chǎn)、耐儲運(yùn),且抗病性強(qiáng)于其它歐亞種,近幾年的市場銷量形勢喜人,栽培該品種的果農(nóng)數(shù)量急劇增加[2],鑒于近年市場對種植藍(lán)‘甜蜜藍(lán)寶石’葡萄品種的急切需求,快速擴(kuò)繁該品種有助于獲得較高的經(jīng)濟(jì)效益。
葡萄主要通過扦插和嫁接等無性繁殖方法進(jìn)行繁殖,雖然該方法具有簡捷方便的特點(diǎn),但受到區(qū)域、季節(jié)變化的局限,且容易被病毒感染,最終導(dǎo)致葡萄品種的種性嚴(yán)重退化[3-5]。組織培養(yǎng)則能保持親本特性并在短期內(nèi)大量繁殖,加快市場上優(yōu)質(zhì)種苗的推廣速度[6],同時(shí),莖尖接種還可得到部分脫毒的優(yōu)質(zhì)種苗,一直以來,利用組織培養(yǎng)繁育優(yōu)良品種一直是葡萄苗木生產(chǎn)的研究重點(diǎn)[7]。培養(yǎng)基成分與激素的配比能夠影響外植體的啟動培養(yǎng)和繁殖體的增殖效率,研究表明,添加2 mg/L 6-卞氨基嘌呤(6-BA)和0.2 mg/L 萘乙酸(NAA)的MS 培養(yǎng)基作為‘巨峰’的初代培養(yǎng)基萌芽率達(dá)到71.1%,MS 培養(yǎng)基添加0.2 mg/L 3-吲哚丁酸(IBA)、1.0 mg/L 6-BA 和0.5 mg/L KT 啟動培養(yǎng)釀酒葡萄莖段外植體,萌芽率達(dá)73%以上,圓葉葡萄品種在僅加入6-BA 1 mg/L 的MS 培養(yǎng)基中,莖段增殖效率高,植株生長良好[8-9]?!鹈鬯{(lán)寶石’是一個(gè)新品種,其組織培養(yǎng)尚未見報(bào)道,建立其組織培養(yǎng)快速繁育體系,對加快其苗木生產(chǎn)和繁育以及提高苗木質(zhì)量具有重要意義。本試驗(yàn)以‘甜蜜藍(lán)寶石’葡萄當(dāng)年生半木質(zhì)化莖段為外植體,對‘甜蜜藍(lán)寶石’組培技術(shù)條件進(jìn)行篩選,從而獲得合適的培養(yǎng)體系,為組培進(jìn)行快速育苗研究提供技術(shù)支持。
1.1.1 研究對象
以‘甜蜜藍(lán)寶石’葡萄當(dāng)年生半木質(zhì)化莖段為試材,取自郴州市農(nóng)業(yè)科學(xué)研究所小埠果樹基地葡萄溫室大棚。
1.1.2 試劑
植物生長調(diào)節(jié)劑:包含6-BA,國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;IBA,上海稼豐園藝用品有限公司;NAA,國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。蔗糖、瓊脂(BR),國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。
1.2.1 培養(yǎng)基及配制
基本培養(yǎng)基為MS、1/2 MS 及1/4 MS,其中1/2 MS 是將MS 中大量元素成分減半,1/4 MS 是將MS 中大量元素成分減為1/4;所有培養(yǎng)基中均加3%蔗糖和0.65%瓊脂,pH 調(diào)節(jié)至5.80~5.95,高壓滅菌條件為壓力1.1 kg/cm2,121 ℃保持20 min。
1.2.2 材料消毒
以生長健壯的半木質(zhì)化莖段為外植體,莖段直徑約為0.8 cm,首先用軟毛刷蘸取洗潔精輕刷莖段表面,然后在流水下沖洗1 h,再剪成長2~3 cm 帶一個(gè)腋芽的莖段,置于超凈工作臺上。先用75%酒精消毒40 s,然后用無菌水清洗2 次,再分別用1%、3%次氯酸鈉及0.1%升汞三種試劑消毒,試驗(yàn)設(shè)6 個(gè)不同的消毒處理,見表1。
表1 不同消毒處理Table 1 Different disinfection treatment
1.2.3 接種
莖段消毒完后再用無菌水反復(fù)漂洗5 次,用滅菌的濾紙吸去表面多余水分。然后切去兩端褐化的傷口,將消毒過的材料切成長1.0 cm 左右?guī)б粋€(gè)腋芽的莖段,正插于啟動培養(yǎng)基上進(jìn)行培養(yǎng)。啟動培養(yǎng)基為1/2 MS,不添加任何激素,每瓶接種1 個(gè)莖段,每個(gè)處理接種20 個(gè)莖段,設(shè)3 次重復(fù)。設(shè)置培養(yǎng)室條件如下:保持溫度26 ℃左右,相對濕度為40%~60%,每日光照12 h。15 d 后,統(tǒng)計(jì)接種材料的污染率、褐變率和成活率,計(jì)算方法分別見公式(1)(2)(3),用以確定最佳的消毒方法。
1.2.4 快繁體系的建立
(1)初代培養(yǎng)
采用篩選出的最佳消毒方法進(jìn)行消毒,把消毒后的莖段接種于初代培養(yǎng)基上,設(shè)置四個(gè)配方(分別記作PC1、PC2、PC3、PC4),培養(yǎng)基成分見表2。每瓶接種1 個(gè)莖段,每個(gè)處理接種30 個(gè)莖段,3 次重復(fù)。培養(yǎng)條件為保持溫度26 ℃左右,相對濕度為40%~60%,每日光照12 h。30 d 后,記錄生長情況并統(tǒng)計(jì)萌芽率。萌芽率按照公式(4)計(jì)算得出。
表2 不同初代培養(yǎng)基配方Table 2 Different formulations of primary mediums
式中,A為萌芽的莖段總數(shù),T為接種的莖段總數(shù)。
(2)增殖培養(yǎng)
將初代培養(yǎng)腋芽生長最好的培養(yǎng)基作為篩選出的初代培養(yǎng)基配方,接種50 d 后,當(dāng)該培養(yǎng)基上腋芽生長至株高4~5 cm 時(shí),將其剪下,去掉葉片,從中剪取健康飽滿的處在中間節(jié)位的單芽莖段,長度約0.5~1 cm,做到莖段基本一致,然后接種于增殖培養(yǎng)基上,每瓶接種3個(gè)莖段,培養(yǎng)基設(shè)置5 個(gè)配方(分別記作PZ1、PZ2、PZ3、PZ4、PZ5),培養(yǎng)基成分見表3。每個(gè)處理接種15 個(gè)莖段,設(shè)3 次重復(fù),培養(yǎng)條件同初代培養(yǎng)。45 d 后統(tǒng)計(jì)萌芽率、平均株高、增殖系數(shù)和生長情況。其中增殖系數(shù)按照公式(5)計(jì)算。
表3 不同增殖培養(yǎng)基配方Table 3 Different formulations of breeding mediums
式中,B為可用于下次繼代的莖段總數(shù),W為接種的莖段總數(shù)。
(3)生根培養(yǎng)
增殖培養(yǎng)45 d 后,將腋芽生長最好的培養(yǎng)基作為篩選出的增殖培養(yǎng)基配方,將其中生長的腋芽剪下,去掉葉片,從中剪取健康飽滿的中間節(jié)位的單芽莖段,長度0.5~1 cm,做到莖段基本一致,接種于生根培養(yǎng)基,培養(yǎng)基設(shè)置5 個(gè)配方(分別記作PT1、PT2、PT3、PT4、PT5),培養(yǎng)基成分見表4。每瓶接種5 個(gè)莖段,每個(gè)處理接種20個(gè)莖段,設(shè)3 次重復(fù),培養(yǎng)條件與增殖培養(yǎng)條件一致。50 d后觀察生長情況,統(tǒng)計(jì)萌芽率、生根率、主根密度及平均根長。其中生根率按照公式(6)計(jì)算得出。
表4 不同生根培養(yǎng)基配方Table 4 Different formulations of rooting mediums
式中,C為生根的莖段總數(shù),W為接種的莖段總數(shù)。
(4)煉苗和移栽
生根培養(yǎng)50 d 以上,當(dāng)生根良好的組培苗株高達(dá)到5~7 cm、帶5~7 個(gè)葉片時(shí),將試管苗置于煉苗室,先擰松瓶蓋煉苗2~3 d,再完全打開瓶口煉苗7~10 d,待莖稈顏色加深,葉片發(fā)亮?xí)r即可出瓶移栽,將植株小心取出,用自來水洗凈組培苗根部的培養(yǎng)基,準(zhǔn)備配制好的基質(zhì)(含椰糠、草炭土、珍珠巖和蛭石四種成分,比例為2∶1∶1∶1),用多菌靈溶液攪拌至基質(zhì)土坨不散,分裝至營養(yǎng)缽(直徑約6.5 cm),然后移栽組培苗。將苗子置于育苗箱中,蓋上蓋子保濕,然后保持溫度在25 ℃左右,注意通風(fēng),防止基質(zhì)發(fā)霉,當(dāng)出現(xiàn)新生葉1~2 片時(shí),打開蓋子通風(fēng)2 d,將苗再次轉(zhuǎn)入營養(yǎng)袋,觀察成活情況。
采用Excel 2007 軟件和SPSS 22.0 軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理及分析。
用次氯酸鈉消毒后,外植體易出現(xiàn)褐化現(xiàn)象,且影響腋芽的萌發(fā),而用升汞消毒則顏色較正常。由表5 可知,0.1%升汞消毒的表現(xiàn)優(yōu)于1%、3%次氯酸鈉,莖段外植體的最佳消毒處理是T6,即0.1%升汞消毒15 min,外植體污染率、褐變率和成活率分別是46.7%、13.3%和40.0%。因此,外植體的消毒方法采用先用75%酒精消毒40 s,再用0.1%升汞消毒15 min。
表5 外植體最佳消毒方法的篩選Table 5 Selection of the best method for disinfection of explants
莖段外植體接種到不同初代培養(yǎng)基上,30 d 后統(tǒng)計(jì)莖段外植體萌芽率(見表6)。結(jié)果表明,外植體在四種培養(yǎng)基配方上都有萌芽,但是在不添加任何激素的1/2 MS上的表現(xiàn)最好,萌芽率達(dá)到57.8%,新芽生長正常;以1/2 MS 為基本培養(yǎng)基的另兩個(gè)配方,其中添加了6-BA 和IBA 兩種激素,莖段基部產(chǎn)生較多愈傷組織,且新芽生長不正常,后期出現(xiàn)玻璃化現(xiàn)象;在不添加任何激素的MS培養(yǎng)基上,莖段基部膨大明顯,影響腋芽的生長,導(dǎo)致出芽慢且有玻璃化現(xiàn)象。所以確定最佳初代培養(yǎng)基配方為1/2 MS+30 g/L 蔗糖+6.5 g/L 瓊脂。
表6 不同初代培養(yǎng)基莖段誘導(dǎo)情況Table 6 Stem segment induction in different primary mediums
增殖培養(yǎng)過程中,5 種培養(yǎng)基上的莖段生長表現(xiàn)各不相同,第45 天統(tǒng)計(jì)情況,結(jié)果見表7。以不添加任何激素的1/2 MS 增殖效果最好,增殖系數(shù)高達(dá)5.2,顯著高于其他處理,基本不產(chǎn)生愈傷,生長正常,還能同時(shí)生根;在PZ1、PZ2 和PZ3 三種培養(yǎng)基上,莖段基部愈傷率都達(dá)到100%,隨著6-BA 濃度的提高,萌芽率逐漸升高,但是愈傷組織越來越大,新芽葉片短小、節(jié)間短縮,且部分出現(xiàn)叢生芽及玻璃化的現(xiàn)象;PZ4 中生長激素用NAA 替換IBA,但是其產(chǎn)生的愈傷組織更大,葉片小且偏黃,新芽生長不正常,說明該配方不合適。
表7 不同增殖培養(yǎng)基的培養(yǎng)效果Table 7 Culture effect of different propagation medium
生根培養(yǎng)50 d 后,隨機(jī)選取10 株苗進(jìn)行統(tǒng)計(jì),結(jié)果見表8(見下頁)。‘甜蜜藍(lán)寶石’葡萄品種容易生根,不添加任何激素的1/2 MS 培養(yǎng)基生根率也很高,但是新梢莖稈纖細(xì),不利于移栽。添加不同濃度的生長素后均有生根,其中1/4 MS 培養(yǎng)基中添加IBA 濃度為0.1 mg/L 時(shí),即培養(yǎng)基PT1 效果最好,萌芽率達(dá)到91.7%,生根率達(dá)到88.3%,生長正常,隨著IBA 濃度逐漸提高,雖然新梢莖稈更加粗壯,但基部產(chǎn)生的愈傷更多,導(dǎo)致萌芽率及生根率逐漸降低,新梢生長過慢。而添加0.5 mg/L 的NAA,則出現(xiàn)部分只長根不萌芽的現(xiàn)象,萌芽率只有30%,生根率只有55%,且根為氣生根,愈傷組織大而疏松。
表8 不同生根培養(yǎng)基的培養(yǎng)效果Table 8 Culture effect of different rooting medium
試管苗馴化時(shí),保持溫度20~28 ℃,濕度在80%左右,讓試管苗逐漸適應(yīng)外界的環(huán)境,不能操之過急。本試驗(yàn)采用配制好的基質(zhì)土用于幼苗的馴化,再次移栽至營養(yǎng)袋時(shí),已經(jīng)產(chǎn)生較多新根,在營養(yǎng)袋生長兩周后,統(tǒng)計(jì)成活率高達(dá)90%。
外植體消毒作為組織培養(yǎng)的第一步,具有關(guān)鍵作用,外植體的生長發(fā)育情況及對其消毒時(shí)間的長短,對發(fā)芽率尤為重要,因此尋求最佳的消毒藥劑及其濃度和時(shí)間的組合,控制外植體污染和褐變率,是消毒環(huán)節(jié)的重要問題[10-11]。本試驗(yàn)篩選出了較優(yōu)的消毒方法,但外植體污染率太高,萌芽率過低,可能因?yàn)槿〔挠谝巴獾沫h(huán)境,且取材季節(jié)過晚,雨季天氣來臨,病菌種類多變且繁殖活躍[12],導(dǎo)致難以消毒。雖然通過延長消毒時(shí)間可以降低部分污染率,但同時(shí)也增加了死亡率,最終萌芽率也不高。所以進(jìn)一步探索合適的取材時(shí)間很有必要。
植物激素具有刺激形成層細(xì)胞的分裂、誘導(dǎo)愈傷組織、不定芽和不定根的形成等生理作用,缺乏或者過多都會對植物生長產(chǎn)生不利影響[7]。植物組織培養(yǎng)增殖過程中,可以通過腋芽產(chǎn)生不定芽(叢生芽)和腋芽萌發(fā)成新梢兩種方式擴(kuò)繁,生長素類物質(zhì)在兩種方式中均是必需的,而細(xì)胞分裂素類物質(zhì)在促發(fā)叢生芽的方式中是必需的,但在腋芽萌發(fā)成新梢的過程中不是必需的[13-15]。但本試驗(yàn)增殖培養(yǎng)過程,在添加了激素的培養(yǎng)基中,因?yàn)榛慨a(chǎn)生較多愈傷,抑制了發(fā)根和抽莖,芽的生長受到抑制,生長緩慢;或者部分產(chǎn)生了叢生芽,但是難以繼續(xù)生長,并出現(xiàn)玻璃化現(xiàn)象,所以選擇不添加任何激素的1/2 MS 基本培養(yǎng)基作為增殖培養(yǎng)基,以腋芽萌發(fā)成新梢的方式進(jìn)行擴(kuò)繁,不產(chǎn)生叢生芽,繼代增殖系數(shù)相對較低,但組培苗生長健壯,多次繼代培養(yǎng)后無玻璃化、褐化現(xiàn)象[16-17];生根培養(yǎng)過程中,隨著添加IBA 濃度的逐步升高,基部產(chǎn)生的愈傷也不斷增多,導(dǎo)致萌芽率及生根率逐漸降低,新梢生長減緩,但是在不添加生長激素的培養(yǎng)基中,新梢莖稈纖細(xì),不利于移栽,所以選擇添加0.1 mg/L的IBA 進(jìn)行生根培養(yǎng)最合適,這說明一定濃度的外源生長素如IBA、IAA 可促進(jìn)葡萄根的發(fā)育和試管苗生長,但濃度過高誘導(dǎo)產(chǎn)生大量愈傷組織,則會抑制試管苗的生長[18-21],與大部分研究一致。
營養(yǎng)物質(zhì)對組培苗的生長狀況影響很大[20]。雖然本試驗(yàn)中莖段可以一次成苗,一次成苗即將繼代培養(yǎng)和生根培養(yǎng)同時(shí)進(jìn)行,既能加快試管苗的培育速度,又能減少勞動力的消耗,具有很大優(yōu)勢,但因?yàn)椴捎迷鲋撑囵B(yǎng)基配方同步生根的苗子莖稈過于纖細(xì),不利于煉苗移栽;而采用生根培養(yǎng)基配方一次成苗,則增殖太慢,因?yàn)樯囵B(yǎng)后的瓶苗莖稈過于老化,難以再增殖。而用兩次成苗法,即用增殖培養(yǎng)基先增殖,然后再轉(zhuǎn)接到生根培養(yǎng)基上進(jìn)行生根培養(yǎng),則起到了壯苗的作用,能有效提高移栽的成活率,且培養(yǎng)基大量元素的用量減半,在生產(chǎn)上更有成本優(yōu)勢。所以本試驗(yàn)增殖和生根分兩步完成,這與大部分研究一次成苗的結(jié)論不一致[21],分析原因可能是培養(yǎng)基的配方需要調(diào)整,也可以嘗試縮短生根培養(yǎng)的時(shí)間,及時(shí)轉(zhuǎn)接繼代,用以提高增殖率,今后仍需進(jìn)一步探索。
‘甜蜜藍(lán)寶石’葡萄的組織培養(yǎng)包括莖段外植體消毒、啟動培養(yǎng)、增殖培養(yǎng)、生根培養(yǎng)以及煉苗移栽環(huán)節(jié)。本研究發(fā)現(xiàn),‘甜蜜藍(lán)寶石’外植體的最佳消毒方法是先采用75%酒精消毒40 s,再用0.1%升汞消毒15 min;最佳初代培養(yǎng)基為1/2 MS+30 g/L 蔗糖+6.5 g/L 瓊脂,萌芽率達(dá)到57.8%;1/2 MS 增殖培養(yǎng)效果最好,增殖培養(yǎng)45 d,增殖系數(shù)高達(dá)5.2;生根培養(yǎng)基以1/4 MS+IBA 0.1 mg/L效果最好,生根培養(yǎng)50 d,生根率達(dá)到88.3%,新芽莖稈較為粗壯,生長正常;煉苗時(shí),保持溫度20~28 ℃,濕度在80%左右,成活率高達(dá)90%。該組培繁殖體系可用于‘甜蜜藍(lán)寶石’葡萄新品種的繁育,有一定的潛在應(yīng)用前景,為其商業(yè)化生產(chǎn)提供了理論參考。