葉維雁 潘如軍 黃秋偉 黃運(yùn)鵬 鄭文武 單彬
(廣西壯族自治區(qū)亞熱帶作物研究所 廣西南寧 530001)
火龍果(Hylocereus undulatesBritt.)又名紅龍果、青龍果和仙蜜果等,是仙人掌科(Cactaceae)量天尺屬(Hylocereus)多年生植物[1-2],原產(chǎn)于南美、北美及中美洲熱帶地區(qū),目前在我國的廣西、海南、廣東、云南和福建等?。ㄗ灾螀^(qū))均有大規(guī)模種植,是一種新興的熱帶亞熱帶果樹[3-5],果實(shí)外形亮麗、口感清甜[6]。隨著火龍果種植面積的擴(kuò)大,潰瘍病的危害日益突出,該病嚴(yán)重影響果實(shí)品質(zhì)和產(chǎn)量。2012 年在臺(tái)灣首次發(fā)現(xiàn)了火龍果潰瘍病由新暗色柱節(jié)孢引起[7],之后在廣東、海南和貴州陸續(xù)的鑒定結(jié)果表明,火龍果潰瘍病的病原菌為新暗色柱節(jié)孢[8-10]。目前,廣西南寧市火龍果年產(chǎn)量達(dá)32 萬t,占全國火龍果總產(chǎn)量的20%[11],但當(dāng)?shù)鼗瘕埞麧儾〉牟≡形疵鞔_。本研究擬采用形態(tài)學(xué)觀察和分子序列分析法對南寧火龍果潰瘍病病原菌進(jìn)行鑒定,并測定不同藥劑對該病原菌室內(nèi)毒力大小,以期為該病害的防控提供理論基礎(chǔ)。
1.1.1 供試樣品2021 年6 月在廣西南寧市桂熱1 號(hào)火龍果種植區(qū)采集具有典型潰瘍病癥狀的火龍果枝條裝入自封袋,拍照記錄癥狀特點(diǎn),編號(hào),帶回實(shí)驗(yàn)室用于分離潰瘍病病原菌。采集健康無病蟲害的桂熱1 號(hào)火龍果枝條用于測定病原菌的致病性。
1.1.2 培養(yǎng)基和試劑馬鈴薯葡萄糖瓊脂(potato dextrose agar,PDA)培養(yǎng)基,杭州百思生物技術(shù)有限公司;Biospin 真菌基因組DNA 提取試劑盒,杭州博日科技有限公司;無水乙醇,成都市科隆化學(xué)品有限公司;2×Es Taq Master Mix,康為世紀(jì);瓊脂糖,Invitrogen;殺菌劑見表1。
表1 供試藥劑
1.1.3 儀器Easy Cycler 梯度PCR 儀,德國AnalytikJena;5200Multi 全自動(dòng)化學(xué)發(fā)光/熒光圖像分析系統(tǒng),上海天能;DYY-8C 電泳儀電源和DYCP-31DN 電泳儀,北京六一生物科技有限公司;徠卡DM2500 顯微鏡,Leica Microsystems。
1.2.1 病原菌的分離純化采用組織分離法[12]分離火龍果潰瘍病病原菌,培養(yǎng)基為PDA。用自來水將帶病枝條表面沖洗干凈,晾干。在超凈工作臺(tái)上,用75%酒精浸泡枝條10 s,用無菌蒸餾水沖洗5 次,從病健交界處切取大小約5 mm×5 mm 的組織塊,將組織塊置于消毒濾紙上吸干水分,轉(zhuǎn)移到PDA 平板上,于28℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng),待組織塊周圍長出菌落后挑取邊緣菌絲進(jìn)行純化,將純化后的菌株進(jìn)行編號(hào),并轉(zhuǎn)移到PDA斜面,于4℃保存待用。
1.2.2 病原菌的致病性測定利用柯赫氏法則測定病原菌的致病性。采用離體枝條接種法,將4℃保存的病原菌菌株接種到PDA 平板上活化,至菌落長滿培養(yǎng)皿,待用;用自來水洗凈火龍果枝條,經(jīng)75%酒精表面消毒、無菌蒸餾水沖洗5次后,晾干備用;用牙簽輕輕地刺破枝條表皮,用直徑為5 mm 的打孔器在菌落邊緣取菌餅緊貼于被刺傷的枝條表面,將略大于菌餅的無菌濾紙片覆蓋于菌餅,滴加無菌蒸餾水保濕,以接種無菌PDA 培養(yǎng)基的枝條為對照(牙簽和打孔器均經(jīng)過無菌處理),處理5 根枝條,重復(fù)3 次;將接種后的枝條置于無菌保鮮盒中,盒底鋪浸透無菌蒸餾水的濾紙,置于室溫下,自然光照;每日觀察記錄枝條發(fā)病情況,若發(fā)病癥狀與田間自然發(fā)病癥狀相同且對照不發(fā)病,則對發(fā)病枝條病變部位進(jìn)行病原菌再分離,并鑒定分離到的病原菌是否與原始病菌相同。
1.2.3 病原菌的形態(tài)學(xué)鑒定將病原菌接種在PDA 培養(yǎng)基上,在28℃恒溫培養(yǎng),觀察菌落形態(tài)及顏色,在光學(xué)顯微鏡下觀察孢子形態(tài)特征,參照相關(guān)資料[13],進(jìn)行分類學(xué)鑒定。
1.2.4 病原菌的分子鑒定將分離到的病原菌于PDA 平板上活化5 d 后,用接種針刮下培養(yǎng)基表面的菌絲并收集至2 mL 平底離心管中,采用Biospin 真菌基因組 DNA 提取試劑盒提取病原菌DNA,于-20℃保存?zhèn)溆谩R圆≡鶧NA 為模版,用通用引物ITS1(5′—TCCGTAGGTGAACCTGCGG—3′)和ITS4(5′—TCCTCCGCTTATTGATATGC—3′)[14]進(jìn)行PCR 擴(kuò)增,引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。40 μL PCR反應(yīng)體系:10 μmol/L 上下游引物各1 μL、2×Es Taq Master Mix 20 μL、DNA 模版1 μL,加ddH2O至40 μL。PCR 反應(yīng)程序:94℃預(yù)變性5 min;94℃變性30 s,56℃退火30 s,72℃延伸30 s,共35 個(gè)循環(huán);最后72℃延伸5 min。擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)1.2%瓊脂糖凝膠電泳檢測,電泳驗(yàn)證正確后,將擴(kuò)增產(chǎn)物送至廣州擎科生物技術(shù)有限公司進(jìn)行測序。將測序所得序列于NCBI 網(wǎng)站上與已知序列進(jìn)行BLAST 序列比對,用MEGA 6.06 軟件以鄰接法(Neighbor-joining, NJ)構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹。
1.2.5 藥劑室內(nèi)毒力測定選用市面上常見的5種殺菌劑(表1)進(jìn)行試驗(yàn),以菌絲生長速率法測定殺菌劑對火龍果潰瘍病病原菌的室內(nèi)抑菌活性。在無菌操作條件下,用無菌蒸餾水將供試殺菌劑配成5 個(gè)濃度梯度的藥液,用10 mL 量杯量取9 mL PDA 培養(yǎng)基(約55℃)倒于培養(yǎng)皿中;再用移液槍吸取1 mL 藥液滴加到PDA 培養(yǎng)基中,輕輕晃動(dòng)培養(yǎng)皿,使藥液和培養(yǎng)基混合均勻,每種殺菌劑均制備成5 個(gè)濃度的梯度平板(表1),另以1 mL 無菌蒸餾水和9 mL PDA 培養(yǎng)基混合形成的平板作為對照;用直徑為5 mm 的無菌打孔器在活化適齡的病原菌菌落邊緣打取菌餅,接于含藥平板和空白對照平板中央,每個(gè)平板接種1個(gè)菌餅,共25 個(gè)處理,每個(gè)處理3 次重復(fù);將接種后的平板置于28℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng),3 d 后用十字交叉法測量菌落直徑并計(jì)算抑菌率,用DPS 軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,求出各殺菌劑對病原菌的毒力回歸方程、EC50值和相關(guān)系數(shù)。根據(jù)EC50值大小評價(jià)不同藥劑的抑菌效果。
抑菌率=(對照菌落直徑-處理菌落直徑)/(對照菌落直徑-菌餅直徑)×100%
該病危害火龍果莖稈和果實(shí),從嫩芽抽生到開花結(jié)果期間均可發(fā)生。莖稈發(fā)病癥狀(圖1-a)為:初期表面出現(xiàn)近圓形凹陷的褪綠病斑,病斑逐漸轉(zhuǎn)為橘黃色,嚴(yán)重時(shí)病斑成片發(fā)生,甚至布滿病枝;后期形成較大的灰白色潰瘍斑,病斑中央略微凹陷,四周稍微隆起,病斑上常產(chǎn)生小黑點(diǎn),部分病斑邊緣形成水漬狀,嚴(yán)重時(shí)整根枝條腐爛。
圖1 火龍果潰瘍病發(fā)病癥狀
通過分離和純化,共獲得15 個(gè)病原菌菌株,這些菌株在PDA 平板上的性狀表現(xiàn)一致。選取其中代表性菌株P(guān)KY01 進(jìn)行形態(tài)特征觀察,該菌株在PDA 培養(yǎng)基上生長較快,28℃培養(yǎng)2 d 即可形成白色圓形菌落,呈絨毛狀,菌絲白色稀疏,邊緣整齊,呈輻射狀向外擴(kuò)展(圖2-a、2-b);3 d后菌落長滿培養(yǎng)皿(90 mm);5 d 后,菌落逐漸轉(zhuǎn)為灰綠色,氣生菌絲長而稀疏(圖2-c、2-d);7 d 后菌落逐漸轉(zhuǎn)為黑色;10 d 后培養(yǎng)基除中圈外完全變黑(圖2-e、2-f)。病原菌菌絲斷裂形成節(jié)孢子鏈,節(jié)孢子形態(tài)多樣,為橢圓形、卵圓形、圓形或桿狀(圖3-a);節(jié)孢子細(xì)胞壁加厚,形成厚垣孢子,呈橢圓形或卵圓形(圖3-b)。根據(jù)形態(tài)學(xué)特征,初步判定病原菌為新暗色柱節(jié)孢。
圖2 病原菌在PDA 培養(yǎng)基上的菌落形態(tài)
圖3 病原菌顯微形態(tài)(400×)
病原菌菌株 PKY01(OP522024)、PKY02(OP522025)和PKY03(OP522026)的ITS 序列測序長度均為 553 bp。將其序列在 NCBI 上進(jìn)行BLAST 比對,結(jié)果顯示,3 個(gè)ITS 序列與4 株新暗色柱節(jié)孢(JX473739、JX524168、OP271888和OP271889)的ITS 核苷酸序列同源性均達(dá)到100%。選取Genebank 登錄的同源性高低不同的菌株ITS 序列,利用MEGA 軟件的鄰接法對病原菌菌株的ITS 序列構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(圖4)。結(jié)果表明,病原菌菌株P(guān)KY01、PKY02、PKY03 與4株新暗色柱節(jié)孢(JX473739、JX524168、OP271888和OP271889)位于同一分支。根據(jù)形態(tài)學(xué)特征以及rDNA-ITS 序列分析結(jié)果,將火龍果潰瘍病病原菌鑒定為新暗色柱節(jié)孢。
圖4 基于ITS 序列的系統(tǒng)發(fā)育樹
將分離得到的新暗色柱節(jié)孢菌株接種到火龍果健康枝條上,接種第10 天出現(xiàn)與田間自然發(fā)病形態(tài)相似的潰瘍病斑(圖1-a、1-b),而對照未發(fā)病(圖1-c)。在接種枝條上取發(fā)病組織分離,重新獲得了新暗色柱節(jié)孢菌,完成柯赫氏法則驗(yàn)證,證明火龍果潰瘍病的病原菌為新暗色柱節(jié)孢。
室內(nèi)抑菌試驗(yàn)結(jié)果(表2)表明,5 種殺菌劑對火龍果潰瘍病病原菌菌絲生長表現(xiàn)出不同程度的抑制作用。其中春雷·王銅·噻鋅的抑菌效果最好,EC50為0.195 0 mg/L;吡醚·代森聯(lián)和春雷·喹啉銅也有較好的抑菌效果,EC50分別為1.157 0 和1.193 2 mg/L;苯甲·嘧菌酯的抑制效果較差,EC50為2.468 8 mg/L,大于2 mg/L;多菌靈對病原菌的毒力最弱,EC50高達(dá)4.016 3 mg/L。
表2 五種藥劑對火龍果潰瘍病病原菌的室內(nèi)毒力
目前,在傳統(tǒng)形態(tài)特征和生理生化指標(biāo)鑒定的基礎(chǔ)上,ITS 片段被推薦作為真菌的DNA 條形碼[15],已被廣泛應(yīng)用于果樹真菌病原菌的種類鑒定[16-19],極大地提高了果樹病原種類鑒定的準(zhǔn)確度。本研究從廣西南寧市火龍果潰瘍病病樣中分離獲得病原真菌,結(jié)合形態(tài)學(xué)觀察、致病性驗(yàn)證和基于rDNA-ITS 序列分析的分子生物學(xué)鑒定,明確火龍果潰瘍病的病原菌為新暗色柱節(jié)孢(Neoscytalidium dimidiatum),與國內(nèi)相關(guān)報(bào)道的研究結(jié)果[8-10,20-21]一致。
火龍果潰瘍病近年來對火龍果產(chǎn)業(yè)造成巨大的經(jīng)濟(jì)損失,是火龍果最嚴(yán)重的病害之一,殺菌劑是有效防控火龍果潰瘍病的重要手段。對于該病害的防治研究已有相關(guān)報(bào)道,賢小勇等[22]認(rèn)為,吡唑醚菌酯、嘧菌酯和戊唑醇對火龍果潰瘍病均具有良好的防效,可作為防治火龍果潰瘍病的藥劑在生產(chǎn)上推廣應(yīng)用;魏雅麗等[23]通過抑菌實(shí)驗(yàn),從抑菌圈的大小初步鑒定多菌靈為火龍果潰瘍病的有效殺菌劑。本研究采用菌絲生長速率法測定5 種常用殺菌劑對火龍果潰瘍病病原菌的室內(nèi)毒力,結(jié)果顯示,5 種殺菌劑對火龍果潰瘍病病原菌菌絲生長均具有一定的抑制作用,其中70%春雷·王銅·噻鋅水劑對病原菌的抑制作用最強(qiáng),EC50為0.195 0 mg/L,其次為60%吡醚·代森聯(lián)水分散粒劑和 42%春雷·喹啉銅懸浮劑,EC50分別為1.157 0 和1.193 2 mg/L。本研究測得多菌靈的EC50為4.016 3 mg/L,高于王會(huì)會(huì)等[9]測得的0.183 2 mg/L,可能是因?yàn)椴煌牟≡陮Χ嗑`的敏感性存在較大差異。
藥劑室內(nèi)毒力是通過殺菌劑與病原菌菌絲直接接觸時(shí)產(chǎn)生的效果來測定,是衡量殺菌劑對病原菌毒力作用大小的指標(biāo)之一,但其結(jié)果僅代表藥劑對病菌的室內(nèi)抑制效果,具有局限性,田間防治效果不僅與藥劑室內(nèi)毒力有關(guān),還與病原菌的孢子[24]、殺菌劑的特性[25-27]、寄主植物的生長環(huán)境[28]和生長狀況等因素有關(guān)。因此,基于本研究的試驗(yàn)結(jié)果,后期擬選用70%春雷·王銅·噻鋅水劑、60%吡醚·代森聯(lián)水分散粒劑和42%春雷·喹啉銅懸浮劑進(jìn)行更接近生產(chǎn)實(shí)際的田間藥效試驗(yàn),明確適合田間防治火龍果潰瘍病的殺菌劑,為火龍果潰瘍病防治提供理論依據(jù)。