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        基于宏基因組學(xué)解析高溫大曲微生物群落與功能的異質(zhì)性

        2023-05-28 09:08:24張芮劉文虎張立強(qiáng)楊陽(yáng)魏陽(yáng)王松濤冉茂芳王世寬沈才洪
        釀酒科技 2023年5期
        關(guān)鍵詞:黃曲大曲芽孢

        張芮,劉文虎,張立強(qiáng),楊陽(yáng),魏陽(yáng),王松濤,冉茂芳,王世寬,沈才洪*

        (1.四川輕化工大學(xué)生物工程學(xué)院,四川自貢 643000;2.瀘州品創(chuàng)科技有限公司/國(guó)家固態(tài)釀造工程技術(shù)研究中心,四川瀘州 646000;3.瀘州老窖股份有限公司,四川瀘州 646000)

        大曲是傳統(tǒng)白酒釀造的重要原料之一,起到糖化、發(fā)酵、酒化和生香的作用,對(duì)白酒的出酒率和酒質(zhì)有極大的影響[1-3]。根據(jù)曲坯中心最高發(fā)酵溫度的不同,大曲分為低溫大曲(45~50 ℃)、中溫大曲(50~60 ℃)和高溫大曲(60~65 ℃),其中,高溫大曲用于醬香型白酒的生產(chǎn)。高溫大曲以小麥為主要原料,經(jīng)自然堆積發(fā)酵而成,原料粉碎、水分含量、發(fā)酵溫度、安曲方式、發(fā)酵方式、過(guò)程管控等是影響高溫大曲質(zhì)量的重要因素,上述因素的差異導(dǎo)致曲藥表面呈現(xiàn)黑褐色(黑曲)、黃褐色(黃曲)和生麥色(白曲)[4-6]。正常情況下,高溫大曲發(fā)酵過(guò)程中所產(chǎn)黃曲的占比最高,占總產(chǎn)量的70 %~80 %,黑曲和白曲分別占10%和10%~20%。黑曲通常出現(xiàn)在發(fā)酵房中央,白曲通常出現(xiàn)在頂層或靠近門(mén)窗的位置[7]。由不同因素產(chǎn)生的3種高溫大曲的微生物群落結(jié)構(gòu)各不相同,黃曲和黑曲中的優(yōu)勢(shì)菌分別為克羅彭斯特菌屬(Kroppenstedtia)和嗜熱子囊菌屬(Thermoascus),白曲中的主要細(xì)菌及真菌類(lèi)群分別為海洋芽孢桿菌屬(Oceanobacillus)和嗜熱真菌屬(Thermomyces)[8]。黑曲、黃曲和白曲之間的理化性質(zhì)和生物酶活力存在顯著差異,黑曲的酸度最高,黃曲最低;白曲的糖化力和酯化力最高,黑曲的最低[9]。Deng等[10]利用擴(kuò)增子測(cè)序手段對(duì)采集自不同地區(qū)、不同顏色的高溫大曲進(jìn)行研究,發(fā)現(xiàn)克羅彭施泰特氏菌屬(Kroppenstedtia)、芽孢桿菌屬(Bacillus)和嗜熱子囊菌屬(Thermoascus)為高溫大曲中的優(yōu)勢(shì)微生物,此外,黑曲中的主要菌群還包括糖多孢菌屬(Saccharopolyspora)和嗜熱真菌屬(Thermomyces),黃曲中的優(yōu)勢(shì)菌群還包括未分類(lèi)的散囊菌目(Eurotiales)真菌,表明黑曲、白曲和黃曲的理化指標(biāo)、酶活力及功能微生物群落結(jié)構(gòu)差異顯著。

        目前,高溫大曲的研究已經(jīng)成為熱點(diǎn),涉及了功能微生物、理化指標(biāo)和風(fēng)味差異等方面,但對(duì)功能微生物功能層面的研究相對(duì)較少。本文基于宏基因組學(xué),對(duì)同批次黑、黃、白色高溫大曲微生物群落與功能組成進(jìn)行比較分析,進(jìn)一步預(yù)測(cè)引起3種高溫大曲品質(zhì)差異的代謝途徑,為深入闡明高溫大曲的異質(zhì)性奠定了基礎(chǔ),以期指導(dǎo)3種高溫大曲在醬香型白酒生產(chǎn)中的應(yīng)用。

        1 材料與方法

        1.1 樣品

        高溫大曲樣品采自貯曲倉(cāng)不同位置且貯存了3個(gè)月的白曲(White_Daqu)、黃曲(Yellow_Daqu)和黑曲(Black_Daqu)各3 塊。分別粉碎混勻后,裝于無(wú)菌自封袋中,貯存于-20 ℃待測(cè)。

        1.2 試驗(yàn)方法

        1.2.1 DNA 提取和宏基因組測(cè)序

        稱(chēng)取10g 高溫大曲樣品,用中通量組織研磨儀(鼎昊源,中國(guó))結(jié)合液氮冷凍研磨成細(xì)粉。采用土壤DNA 試劑盒(Omega,美國(guó))提取DNA,并用1 %瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)DNA 提取質(zhì)量,采用Nano‐Drop2000 微量分光光度計(jì)(Thermo Scientific,美國(guó))檢測(cè)DNA 純度和濃度。合格的DNA 樣品用干冰寄送至上海美吉生物醫(yī)藥科技有限公司使用HiSeqTM X Ten 系統(tǒng)(Illumina,美國(guó))進(jìn)行宏基因組測(cè)序。

        1.2.2 序列處理和注釋

        使用SOAPnuke(v1.5.6)[11]對(duì)下機(jī)原始數(shù)據(jù)進(jìn)行質(zhì)控過(guò)濾:去除包含不確定堿基(N 堿基)的序列,去除含50%以上低質(zhì)量堿基(Q<20 的堿基)的序列,去除含測(cè)序接頭的序列,去除長(zhǎng)度<50 bp 的序列,使用snap-aligner (v1.0beta.23)[12]和samtools(v1.8)[13]過(guò)濾宿主序列,將有效數(shù)據(jù)用于后續(xù)生物信息學(xué)分析。

        使用MegaHit(v1.1.2)對(duì)上述有效數(shù)據(jù)進(jìn)行組裝,通過(guò)MetaGeneMake(v2.1.0)[14]對(duì)組裝序列進(jìn)行開(kāi)放閱讀框(Open Reading Frames,ORFs)預(yù)測(cè)。使用CD-HIT(v4.7)[15]將相似度在95%以上且比對(duì)區(qū)域大于90 %的序列聚類(lèi)為一個(gè)單元,以去除重復(fù)的冗余序列,構(gòu)建樣品非冗余基因集(Unigene Catalog)。使用Bowite2(v1.2.2)[16]將樣品的高質(zhì)量序列與基因集比對(duì),采用Pathoscope(v1.0)[17]將序列重新分配至“最可能來(lái)源”的基因。

        使用DIAMOND(v0.8.3.6)[18]將編碼基因映射至NR 數(shù)據(jù)庫(kù)(Non-redundant Protein Sequences from GenPept,Swissprot,PIR,PDF,PDB,and NCBI RefSeq)和KEGG 數(shù)據(jù)庫(kù)(Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes),獲得相應(yīng)基因的注釋信息?;贜R 數(shù)據(jù)庫(kù)比對(duì)結(jié)果,使用MEGAN(v6)[19]進(jìn)行微生物物種信息注釋?zhuān)⒂?jì)算該物種的豐度。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 測(cè)序數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)

        黑曲、黃曲、白曲高溫大曲樣品中提取的DNA經(jīng)宏基因組測(cè)序,共獲得693,414,364 條序列(77,046,040±3,473,586 條,Mean±SD,n=9),合計(jì)104.7 Gbp 的原始數(shù)據(jù),其中97.5 %的序列為高質(zhì)量序列,共計(jì)101.7 Gbp。高質(zhì)量序列經(jīng)過(guò)Megahit 軟件單拼共得1,060,673 條重疊群序列(Contigs),經(jīng)過(guò)MetaGene 軟件共預(yù)測(cè)得1,649,504 個(gè)開(kāi)放閱讀框,經(jīng)CD-HIT 軟件聚類(lèi)得714,190 個(gè)基因組成的非冗余基因集,基因平均長(zhǎng)度為492 bp,表明測(cè)序質(zhì)量可以用來(lái)表征3種高溫大曲樣本的微生物群落結(jié)構(gòu)。

        2.2 微生物群落結(jié)構(gòu)與差異分析

        非冗余基因集中共有501,795 個(gè)基因(70.3 %)在NCBI NR(v 20200604)數(shù)據(jù)庫(kù)中具有明確的物種注釋信息,分布于467 個(gè)目(Order)、2071 個(gè)屬(Genus)中。主坐標(biāo)分析顯示(圖1A),黑曲和黃曲的微生物群落結(jié)構(gòu)相近,在PCoA 1 軸上無(wú)法區(qū)分兩者,且均與白曲差異明顯。ANOSIM 相似性分析(圖1B)也顯示3種高溫大曲微生物群落組成差異顯著(R=0.74,P=0.002),這種差異反映出造成它們理化性質(zhì)、酶活、代謝物等方面差異的微生物基礎(chǔ)[20-21]。

        黑曲、黃曲中微生物群落以真菌為主,真菌屬累計(jì)相對(duì)豐度分別為93.9 %、96.3 %,羅薩氏菌屬(Rasamsonia)、曲霉屬(Aspergillus)、絲衣霉屬(Byssochlamys)、籃狀菌屬(Talaromyces)、青霉菌屬(Penicillium)為優(yōu)勢(shì)真菌,均屬于散囊菌目,在兩者中的相對(duì)豐度分別為72.8 %和80.1 %。黑曲中絲衣霉屬(Byssochlamys)相對(duì)豐度顯著高于黃曲(T檢驗(yàn),P<0.05),黃曲中籃狀菌屬(Talaromyces)、青霉菌屬(Penicillium)相對(duì)豐度顯著高于黑曲。黑曲和黃曲中細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)相似,相對(duì)豐度極低,優(yōu)勢(shì)高溫放線菌屬(Thermoactinomyces)相對(duì)豐度僅2.0 %左右;黑曲中鏈孢子菌屬(Desmospora)相對(duì)豐度顯著高于黃曲,其他細(xì)菌屬相對(duì)豐度無(wú)顯著差異(T 檢驗(yàn),P>0.05)。

        白曲中微生物群落以細(xì)菌為主,細(xì)菌屬累計(jì)相對(duì)豐度達(dá)66.6 %,真菌屬相對(duì)豐度僅33.3 %(圖1C和圖1D)。白曲中以克羅彭施泰特氏菌屬(Kroppenstedtia,相對(duì)豐度19.6%)、鏈孢子菌屬(Desmospora,相對(duì)豐度10.7 %)、枝芽孢菌屬(Virgibacillus,相對(duì)豐度8.5 %)、芽孢桿菌屬(Bacillus,相對(duì)豐度3.5 %)等細(xì)菌為主,相對(duì)豐度普遍高于黑曲和黃曲。對(duì)于真菌群落結(jié)構(gòu),白曲中羅薩氏菌屬、曲霉屬、絲衣霉屬、籃狀菌屬、青霉菌屬的相對(duì)豐度累計(jì)為21.1 %,顯著低于黑曲和黃曲。值得注意的是,白曲中橫梗霉屬(Lichtheimia,相對(duì)豐度1.9 %)、根霉屬(Rhizopus,2.5 %)相對(duì)豐度明顯高于黑曲、黃曲,且兩者均屬于毛霉目(Mucorales)。上述研究結(jié)果與已有的文獻(xiàn)報(bào)道相一致[22-24]。

        圖1 高溫大曲微生物群落結(jié)構(gòu)

        進(jìn)一步探究了不同高溫大曲的標(biāo)志性微生物,采用相對(duì)豐度排名前二十的微生物屬進(jìn)行線性判別分析(Linear Discriminant Analysis-Effect Size,LEfSe)(圖1E)。結(jié)果顯示,黑曲的標(biāo)志性微生物為曲霉屬,黃曲的標(biāo)志性微生物為青霉菌屬和散囊菌目等,白曲的標(biāo)志性微生物包括克羅彭施泰特氏菌屬、鏈孢子菌屬和芽孢桿菌屬。表明黑曲和黃曲之間的差異主要?dú)w結(jié)于真菌群落組成的異質(zhì)性,白曲中更加豐富多樣的細(xì)菌群落使其明顯區(qū)別于黑曲和黃曲。

        2.3 基于CAZy 數(shù)據(jù)庫(kù)的碳水化合物活性酶組成與差異分析

        非冗余基因集中共有11,825 條基因(1.7 %)在碳水化合物活性酶數(shù)據(jù)庫(kù)(Carbohydrate-active En‐zymes Database,CAZy)中具有明確的功能注釋信息,共計(jì)395 個(gè)碳水化合物活性酶,包括208 個(gè)糖苷水解酶(Glycoside Hydrolases,GHs),73 個(gè)糖基轉(zhuǎn)移酶(Glycosyl Transferases,GTs),44 個(gè)多糖裂合酶(Polysaccharide Lyases,PLs),15 個(gè)碳水化合物酯酶(Carbohydrate Esterases,CEs),31 個(gè)碳水化合物結(jié)合模塊(Carbohydrate-Binding Modules,CBMs),24個(gè)輔助氧化還原酶(Auxiliary Activities,AAs)。如圖2A 所示,黑曲和黃曲中碳水化合物活性酶基因累計(jì)豐度分別為17,333.3 和16,830.0(TPM),顯著低于白曲(TPM:18,384.8)(圖2A)。

        如圖2B 所示,GHs 是高溫大曲中種類(lèi)最多、基因豐度最高的碳水化合物活性酶類(lèi)[25],黑曲、黃曲和白曲中的GHs 基因豐度依次降低,可能造成三者中還原糖含量、高溫條件下的美拉德反應(yīng)和褐變反應(yīng)存在差異,進(jìn)而形成3種高溫大曲的顏色差異。根據(jù)GHs 基因的物種貢獻(xiàn)度信息,黑曲和黃曲的GHs 主要源于羅薩氏菌屬、絲衣霉屬、曲霉屬等,后者中的GHs 基因還來(lái)源于籃狀菌屬、嗜熱真菌屬等。黑曲和黃曲中絕大部分GHs 基因源于散囊菌目真菌,白曲中的GH 基因源于芽孢桿菌目(Bacil‐lales)和散囊菌目,其中,芽孢桿菌目主要包括鏈孢子菌屬、克羅彭施泰特氏菌屬、枝芽孢菌屬等。同GHs 基因相似,黑曲和黃曲中的AAs 基因也主要源于散囊菌目真菌,白曲中的AAs 基因源于芽孢桿菌目和散囊菌目。

        圖2 高溫大曲碳水化合物活性酶組成

        圖3 高溫大曲微生物群落的代謝功能差異

        黑曲、黃曲和白曲中的GTs 基因豐度較高,隨著大曲顏色變淺,GTs 基因豐度升高。黑曲和黃曲中的GTs 基因主要來(lái)源于羅薩氏菌屬、籃狀菌屬、絲衣霉屬、曲霉屬等,白曲中主要源自克羅彭施泰特氏菌屬、鏈孢子菌屬、枝芽孢桿菌屬等細(xì)菌。相對(duì)豐度最高的克羅彭施泰特氏菌屬、鏈孢子菌屬、枝芽孢菌屬等細(xì)菌也使得白曲中CEs 和PLs 基因豐度高。白曲中較高豐度的GTs、CEs、PLs 基因可能是其糖化力、液化力、酯化力比黑曲和黃曲高的原因之一。

        2.4 基于KEGG 數(shù)據(jù)庫(kù)的微生物群落功能組成與差異分析

        非冗余基因集中共有193,772 條基因(27.1%)在KEGG 數(shù)據(jù)庫(kù)(v 94.2)中具有明確的功能注釋信息,共計(jì)10006 個(gè)KO(KEGG Orthology)。將這些KO 映射到與微生物活動(dòng)相關(guān)的途徑(KEGG Path‐way),即代謝(Metabolism)、遺傳信息處理(Genet‐ic Information Processing)、環(huán)境信息處理(Environ‐mental Information Processing)、細(xì)胞過(guò)程(Cellular Processes)。與碳水化合物活性酶總基因豐度類(lèi)似,隨著高溫大曲顏色變淺,KEGG 途徑的總TPM基因豐度依次升高。

        基于KEGG Pathway Level 1(L1)、Level 2(L2)基因豐度的LEfSe 分析如圖3A 所示。黑曲的標(biāo)志性微生物活動(dòng)途徑為異源物生物代謝和降解(Xe‐nobiotics Biodegradation and Metabolism),微生物群落可能代謝更多的異源物質(zhì),產(chǎn)生多種代謝物,并有助于提升黑曲的香氣濃郁度。黃曲的標(biāo)志性微生物活動(dòng)途徑為遺傳信息處理、環(huán)境信息處理、細(xì)胞過(guò)程(L1),黃曲中與基因、環(huán)境信息處理相關(guān)的代謝活動(dòng)較為旺盛。白曲的標(biāo)志性微生物活動(dòng)途徑為氨基酸代謝(Amino Acid Metabolism)、其他次級(jí)代謝產(chǎn)物的合成(Biosynthesis of Other Second‐ary Metabolites)等。

        進(jìn)一步基于KEGG Pathway L2、Level 3(L3)基因豐度的LEfSe 分析如圖3B 所示。黑曲中與能量代謝(Energy Metabolism)相關(guān)的氧化磷酸化途徑基因豐度最高,主要源于曲霉屬、籃狀菌屬等真菌(圖3C),推測(cè)黑曲中的能量代謝活動(dòng)最為旺盛,釋放大量的生物熱,使黑曲擁有更高的發(fā)酵溫度。黑曲中的標(biāo)志性代謝途徑也包括異源物生物代謝和降解(L2)的10 個(gè)L3 途徑,基因主要源于絲衣霉屬、羅薩氏菌屬、曲霉屬等真菌,涉及大量的芳香族化合物代謝,表明此類(lèi)絲狀真菌可能促進(jìn)黑曲中芳香族化合物的積累。黃曲的標(biāo)志性代謝途徑主要是脂質(zhì)代謝(Lipid Metabolism)、聚糖的生物合成與代謝(Glycan Biosynthesis and Metabolism),主要為羅薩氏菌屬、籃狀菌屬等真菌的功能活性。

        白曲中絲狀真菌相對(duì)豐度較低,其能量代謝、異源物生物代謝和降解、脂質(zhì)代謝、聚糖的生物合成與代謝下的L3 途徑等的基因豐度低于黑曲和黃曲,可能導(dǎo)致白曲的代謝活力較低,進(jìn)而使白曲的發(fā)酵溫度和香氣濃郁度較低。白曲的標(biāo)志性代謝途徑主要分布于碳水化合物代謝(Carbohydrate Metabolism)、氨基酸代謝、核苷酸代謝(Nucleotide Metabolism)、輔助因子和維生素代謝(Metabolism of Cofactors and Vitamins),相關(guān)基因主要源于克羅彭施泰特氏菌屬、枝芽孢菌屬、鏈孢子菌屬等細(xì)菌。

        綜上所述,黑曲和黃曲的優(yōu)勢(shì)微生物主要為多種絲狀真菌,其參與次級(jí)代謝的能力較強(qiáng),可能有利于提高醬香型白酒風(fēng)味的多樣性和豐富度。黃曲的微生物群落具有較強(qiáng)參與遺傳信息處理、環(huán)境信息處理、細(xì)胞過(guò)程的能力,說(shuō)明黃曲微生物群落可能具有良好的適應(yīng)能力,新建窖池試生產(chǎn)、酒醅發(fā)酵異常時(shí)可作為通用高溫大曲使用。白曲中大量存在的細(xì)菌群落能廣泛參與基礎(chǔ)代謝,比如丙酮酸代謝(Pyruvate Metabolism)、三羧酸循環(huán)(Citrate Cycle)等,因此,在醬香型白酒堆積發(fā)酵階段,可適當(dāng)提高高溫大曲中白曲的比例,利用白曲中豐富的細(xì)菌群落以及更高的液化力、糖化力,加速微生物基礎(chǔ)代謝水平,縮短堆積時(shí)間,提高生產(chǎn)效率。

        3 結(jié)論

        本試驗(yàn)應(yīng)用宏基因組學(xué)深入分析了黑曲、黃曲和白曲的微生物群落與潛在功能的差異。研究結(jié)果表明,黑曲和黃曲中優(yōu)勢(shì)微生物均屬于散囊菌目,黑曲中主要以羅薩氏菌屬、曲霉屬、絲衣霉屬等真菌為主,這些真菌擁有較多的GHs、AAs 基因以及與能量代謝、異源物生物代謝和降解相關(guān)的生物酶基因;黃曲中主要以羅薩氏菌屬、籃狀菌屬、曲霉屬等真菌為主,它們攜帶較多的GHs、GTs,以及與脂質(zhì)代謝、聚糖合成和代謝等相關(guān)的生物酶基因;白曲中主要以芽孢桿菌目細(xì)菌為主,如克羅彭施泰特氏菌屬、鏈孢子菌屬、枝芽孢菌屬、芽孢桿菌屬等,這些細(xì)菌含有較多的GTs、CEs、PLs 基因,可能使白曲擁有較高的糖化力、液化力、酯化力。此外,芽孢桿菌目細(xì)菌還具有較強(qiáng)的碳水化合物代謝、氨基酸代謝、核苷酸代謝以及代謝輔助因子和維生素的能力。本文進(jìn)一步明確了高溫大曲微生物群落與功能組成的異質(zhì)性,為不同類(lèi)型高溫大曲的工藝研究及應(yīng)用場(chǎng)景提供了參考。

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