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        功能性魚軟骨多糖制備工藝優(yōu)化及食用安全性評價

        2023-03-13 03:22:04武瑞赟劉子宇TharushiShinali
        肉類研究 2023年12期
        關(guān)鍵詞:小鼠實驗質(zhì)量

        武瑞赟,桂 萌,劉子宇,Tharushi S. Shinali,尚 楠,

        (1.中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)產(chǎn)品加工研究所,北京 100193;2.中國農(nóng)業(yè)大學(xué)工學(xué)院,北京 100083;3.北京市農(nóng)林科學(xué)院水產(chǎn)科學(xué)院研究所,北京 100068;4.北京語言大學(xué)社區(qū)衛(wèi)生服務(wù)中心,北京 100083)

        結(jié)直腸癌是消化系統(tǒng)中最常見的惡性上皮腫瘤[1],在歐美等一些發(fā)達國家,結(jié)直腸癌已經(jīng)成為繼肺癌、肝癌和乳腺癌后的第四大常見癌癥[2],嚴重威脅人類健康。隨著社會經(jīng)濟的發(fā)展,生活方式的轉(zhuǎn)變以及老齡化人口的增漲,結(jié)直腸癌的發(fā)病率和死亡率明顯上升,亟需開展有效的防治工作。由于結(jié)直腸癌發(fā)病因素復(fù)雜,病理表征多樣[3]。目前,結(jié)合外科手術(shù)和放療、化療的綜合治療對結(jié)直腸癌的治療效果并不理想,靶向治療費用較為昂貴;此外,結(jié)直腸癌的形成和發(fā)展是一個多階段的漫長過程,通常需要7~10 年的潛伏期[4],這就為早期的預(yù)防提供了最佳的機會。預(yù)防藥物的開發(fā)已成為目前結(jié)直腸癌研究中的熱點;但是,許多經(jīng)歷多年開發(fā)的化學(xué)預(yù)防藥物都被發(fā)現(xiàn)在長期服用下存在一定的安全問題,如抗藥性或?qū)ζ渌K器的毒性[5]。因此,在滿足有效的同時,尋找安全低毒的預(yù)防物質(zhì)是目前迫切需要解決的問題。

        硫酸軟骨多糖(chondroitin sulfate,CS)廣泛存在于動物軟骨、結(jié)締組織和細胞外基質(zhì)中,以D-葡萄糖醛酸(D-glucuronic acid,GlcA)和N-乙酰-D-半乳糖胺(N-acetyl-D-galactosamine,GalNAc)通過β-1,3糖苷鍵為基本二糖單位,二糖單位之間通過β-1,4-糖苷鍵連接形成的一類線性直鏈糖胺聚糖[6],分子質(zhì)量約10~100 kDa,具有抗炎、止血、保持關(guān)節(jié)軟骨彈性、調(diào)節(jié)細胞發(fā)育、調(diào)控細胞黏附分化和增殖、抗腫瘤等多種生物活性[7]。但是CS的高分子質(zhì)量和高電荷密度導(dǎo)致其生物利用率較低,限制了其生物功效的發(fā)揮[8-9]。越來越多的證據(jù)表明,低分子質(zhì)量CS具有黏度小、溶解性好、易吸收等優(yōu)點,可有效克服CS生物利用率低的缺點,如牛源CS經(jīng)降解后制備出不同分子質(zhì)量的CS(92.7、54.1、26.3、19.7 kDa),通過體外氧化實驗證明了低分子質(zhì)量的CS具有更高的抗氧化活性[10]。因此,開發(fā)和制備分子質(zhì)量低、活性高的CS受到研究者的青睞。目前,低分子質(zhì)量CS主要通過酸降解法、氧化降解法、超聲降解法、輻射降解法以及酶解法獲得[11-14],其中由于酶解法具有反應(yīng)條件溫和、催化效率高、操作簡便、作用底物專一、產(chǎn)物分子質(zhì)量可控性高等優(yōu)點而被廣泛使用。

        常見的CS大多來源于鯊魚軟骨組織,但過度捕撈造成鯊魚資源的日趨匱乏。鱘魚作為世界上最大最原始的軟骨硬鱗魚類,軟骨含量可占魚體的10%~20%[15-16],為CS的研究提供了豐富的來源。實驗室之前對鱘魚來源的CS進行結(jié)構(gòu)分析,表明鱘魚CS(sturgeon sulfate chondropolysaccharides,SCS)具有和鯊魚CS一樣的官能團和相似的結(jié)構(gòu)[17],說明SCS可作為鯊魚CS的良好替代物。且前期實驗發(fā)現(xiàn),SCS具有抑制結(jié)直腸癌細胞增殖的作用[18-19],但體內(nèi)吸收效果不佳,大量不能吸收的CS主要是通過調(diào)節(jié)患病小鼠腸道菌群緩解或減緩結(jié)直腸癌的發(fā)展[20]。因此,本實驗以SCS為原料,結(jié)直腸癌細胞HT-29增殖活性為指標,通過酶解法,利用響應(yīng)面優(yōu)化制備具有抗結(jié)直腸癌活性的低分子質(zhì)量SCS。此外,開發(fā)SCS相關(guān)的食品或保健食品目前缺乏明確的毒理安全評價資料。因此,本實驗進一步通過動物急性毒性實驗探究制備的SCS食用安全性,研究結(jié)果為開發(fā)以低分子質(zhì)量SCS為基礎(chǔ)的膳食營養(yǎng)補充劑預(yù)防、降低結(jié)直腸癌發(fā)生風(fēng)險提供實驗依據(jù),對SCS相關(guān)產(chǎn)品的開發(fā)和進一步的安全應(yīng)用具有重要意義。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        雜交鱘魚(Acipenser schrenckii×Huso dauricus)CS由中國農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與營養(yǎng)工程學(xué)院應(yīng)用微生物實驗室制備保存。

        BALB/c小鼠(生產(chǎn)許可證號:SCXK(京)2016-0006)購于北京維通利華實驗動物技術(shù)有限公司。SPF級健康5 周齡雌雄小鼠各半飼養(yǎng)于北京醫(yī)科大學(xué)實驗動物中心。按照SPF級要求,溫度(22±2) ℃,相對濕度(50±10)%,嚴格按照12 h光照/黑暗循環(huán)進行飼養(yǎng)和管理。實驗中各組小鼠進食和飲水自由。

        硫酸軟骨素酶AC(chondroitinase sulfate AC,ChonAC) 北京碧澄生物科技有限公司;人源結(jié)直腸癌細胞HT-29細胞 中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)研究所;DMEM高糖培養(yǎng)基、胎牛血清、胰蛋白酶細胞消化液、磷酸鹽緩沖液 美國Gibco公司;順鉑(cisplatin,DDP)美國Sigma公司;蘇木精-伊紅染色(hematoxylin-eosin staining,HE)試劑盒 北京索萊寶生物技術(shù)有限公司;葡聚糖分子質(zhì)量標準品 美國聚合物標準品公司。

        1.2 儀器與設(shè)備

        FD-1/1C冷凍干燥機 北京德天佑科技發(fā)展有限公司;UV2355紫外-可見分光光度計 上海尤尼科儀器有限公司;SynergyHTX酶標儀 美國Biotek公司;DHG-9141A恒溫恒熱培養(yǎng)箱 上海一恒科技有限公司;Hitachi 720血生化分析儀 日本日立公司;HEMAVET 950FS血細胞分析儀 美國DREW公司;3K15通用臺式冷凍離心機美國Sigma公司;UFSC40001 Amicon攪拌超濾杯 美國貝德福德密理博公司。

        1.3 方法

        1.3.1 細胞培養(yǎng)

        HT-29細胞從液氮中取出,在37 ℃快速溶解后,離心收集細胞沉淀,加入新鮮的含有10%牛血清的DMEM培養(yǎng)基并重懸細胞后,置于無菌的細胞培養(yǎng)瓶中,37 ℃、5%的二氧化碳條件下培養(yǎng)細胞,待細胞增殖到90%左右時進行傳代,3 代以上后用于實驗。

        1.3.2 細胞增殖實驗

        細胞經(jīng)胰蛋白酶消化2 min后,吹打細胞成單細胞懸液,調(diào)整細胞濃度為5×104cells/mL,按照每孔100 μL加入到96 孔板中,于37 ℃ CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)過夜后,更換不同質(zhì)量濃度的SCS溶液(DMEM培養(yǎng)基配制),同時設(shè)置不添加任何藥物的空白處理組和DDP陽性對照組。每個處理設(shè)置6 個平行,培養(yǎng)24 h后,每孔添加10 μL CCK-8試劑,避光4 h后,在450 nm波長下測定吸光度,按照下式計算細胞抑制率。

        式中:A處理為處理組吸光度;A空白為空白組吸光度;A對照為DDP陽性對照組吸光度。

        1.3.3 具有抑制結(jié)直腸癌增殖的低分子質(zhì)量SCS最優(yōu)制備條件確定

        1.3.3.1 單因素試驗

        利用單因素試驗,探究酶添加量、底物質(zhì)量濃度、pH值、酶解時間、酶解溫度5 個因素下酶解產(chǎn)物對HT-29細胞增殖抑制率,共進行5 組實驗。酶添加量選取0.012 5、0.025 0、0.050 0、0.100 0、0.200 0 IU/mg;pH值選取5、6、7、8、9;酶解時間選取15、30、60、90、120 min;底物質(zhì)量濃度選取0.125、0.250、0.500、1.000、2.000 mg/mL;酶解溫度選取20、25、30、35、40 ℃。單因素試驗中每個實驗重復(fù)3 次,取平均值。

        1.3.3.2 Plackett-Burman(PB)試驗

        試驗中使用Design-Expert 8.0.6軟件輔助設(shè)計PB試驗,選用N=12的PB試驗設(shè)計。因素及水平如表1所示,響應(yīng)值為酶解產(chǎn)物(1 000 μg/mL)對HT-29細胞存活率。通過對各因素效應(yīng)值、方差和貢獻率的分析,選出貢獻率前3的因素進行下一步研究。

        表1 PB試驗設(shè)計Table 1 Low and high levels of each independent variable used in Plackett Burman design

        表2 PB試驗結(jié)果Table 2 Plackett Burman design and experimental results

        1.3.3.3 最陡爬坡試驗

        根據(jù)PB試驗得到的顯著因素和效應(yīng)值,利用軟件設(shè)計最陡爬坡試驗的方向和步長。非顯著因素的取值根據(jù)PB試驗中的效應(yīng)值確定。

        1.3.3.4 響應(yīng)面試驗

        由最陡爬坡試驗得到的拐點可確定響應(yīng)中心及接近響應(yīng)值區(qū)間的因素取值范圍,利用Box-Benhnken(BB)法,利用Design-Expert 8.0.6軟件進行響應(yīng)面分析。試驗?zāi)P蛯Ξa(chǎn)物(1 000 μg/mL)作用下HT-29細胞存活率進行二次多元回歸擬合,得到等高線圖和響應(yīng)面曲線圖,并獲得最優(yōu)酶解制備條件,對模型進行方差分析,確定可信度并進行驗證。

        1.3.4 低分子質(zhì)量SCS分離

        將在最優(yōu)酶解條件下獲得的SCS酶解溶液經(jīng)三氯乙酸除去蛋白后離心取上清,添加到Amicon攪拌超濾杯中,并連續(xù)通過不同分子質(zhì)量的超濾膜(截留分子質(zhì)量5、3、0.5 kDa)。超濾過程中的壓力調(diào)節(jié)0.10~0.22 mPa。收集3 種超濾成分,包括>5、3~5、0.5~3 kDa,并冷凍干燥樣品,分別命名為SCS-1、SCS-2和SCS-3。測定不同分子質(zhì)量的凍干SCS質(zhì)量,并測定其對HT-29細胞存活率的影響。

        1.3.5 動物實驗分組和處理

        BALB/c小鼠適應(yīng)性喂養(yǎng)1 周后隨機分為6 組,其中雌性和雄性各3 組,每組10 只,實驗采用最大灌胃劑量方法,每只小鼠灌胃劑量為1 mg/(g·d),分別灌胃SCS和SCS-F2,另設(shè)生理鹽水為正常對照組,按照每只0.2 mL/d進行灌胃,連續(xù)灌胃2 周后處死小鼠,取各組織臟器進行病理分析,經(jīng)眼球采血后,進行血液指標和血生化指標的測定。

        1.3.6 血常規(guī)測定

        使用血液細胞分析儀進行血常規(guī)測定,指標包括紅細胞計數(shù)、紅細胞比容、平均紅細胞體積、白細胞計數(shù)、平均紅細胞血紅蛋白、血小板計數(shù)等。

        1.3.7 血液生化指標測定

        使用血生化測定儀進行液生化指標測定,包括谷丙轉(zhuǎn)氨酶、白蛋白等。

        1.3.8 病理切片觀察

        將剖取的臟器組織置于10%的中性福爾馬林組織固定液中,使用不同體積分數(shù)乙醇溶液和無水乙醇進行梯度脫水,二甲苯透明后,石蠟包埋。使用切片機對組織進行切片,厚度5 μm,按照試劑盒進行操作進行染色后使用光學(xué)顯微鏡檢測并采集圖片,進行病理分析。

        取小鼠結(jié)直腸樣本制好的HE染色切片,顯微鏡下進行觀察并拍照記錄,每個樣本隨機選取2~3 個不同視野進行拍照,利用軟件進行圖像分析。選取組織結(jié)構(gòu)完整性好的隱窩,對結(jié)直腸縱切后,記錄每個隱窩縱向一半時的細胞數(shù)為所需隱窩深度,每個樣本的計數(shù)均需要大于20 個隱窩。

        1.4 數(shù)據(jù)處理

        各個組別臟器指標、血生化以及血液學(xué)指標統(tǒng)計完全后將實驗組的數(shù)據(jù)與空白組利用SPSS軟件進行分析,采用單因素方差分析的方法對各組間的差異進行統(tǒng)計學(xué)分析,數(shù)據(jù)結(jié)果以平均值±標準差表示,P<0.05表示差異顯著。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 單因素試驗

        如圖1所示,隨著酶添加量、pH值、溫度、酶解時間和底物質(zhì)量濃度的增加,酶解產(chǎn)物對HT-29細胞的抑制率呈現(xiàn)先增加后降低或趨于不變的趨勢。其中,酶添加量在0.1、0.2 IU/mg時達到最大(圖1A),這是由于在一定的底物質(zhì)量濃度時,大分子、長鏈的糖鏈會被酶解成短鏈的多糖,從而分子質(zhì)量降低[13-14],但是酶解產(chǎn)物對細胞的抑制率與酶解效率并不呈正相關(guān),小分子的糖越多,分子質(zhì)量越低并不一定代表對細胞的抑制活性越強。如圖1B所示,當pH值為7時對細胞的抑制率最高為58.05%;而后隨pH值增加,酶解產(chǎn)物的細胞活性抑制率降低。這可能是由于隨pH值增加,糖苷鍵斷裂加劇,聚合度減低,形成的單糖越多,為細胞生長提供的營養(yǎng)越充分,促進細胞增殖[21],也因此細胞的抑制率有所降低。在固定酶添加量和pH值的條件下,酶解溫度對產(chǎn)物活性的影響如圖1C所示,酶解溫度為35 ℃時,產(chǎn)物對HT-29細胞的抑制率最高,為62.43%。這是由于溫度的升高,使酶與底物之間的分子運動速率增加,酶的作用效果加強,酶解效率也有所增加,糖苷鍵斷裂的數(shù)量增加,使更多具有抑制癌細胞生長的活性糖鏈片段被分離出來。在此條件下,隨酶解時間延長,細胞抑制率在60 min時達到最大值64.41%(圖1D);而后酶解時間進一步延長,一方面底物和酶的含量有限,酶解效率減緩;另一方面,酶解得到的寡糖或者二糖增加,細胞生長需要的碳源增加,使得細胞的增殖能力有所上升,SCS對HT-29細胞的抑制率降低。保持其他條件不變的情況下,底物質(zhì)量濃度為1、2 mg/mL時,產(chǎn)物對細胞的抑制率最大,分別為70.04%和70.11%(圖1E),且與其他各組差異顯著。細胞抑制率增長表明酶解反應(yīng)后更多具有活性的SCS被解離[22-23],糖苷鍵斷裂,具有抗腫瘤活性的糖鏈被解離出來。通過單因素試驗得到最適酶添加量、pH值、酶解溫度、酶解時間及底物質(zhì)量濃度分別為0.1 IU/mg、7、35 ℃、60 min和1 mg/mL。

        圖1 酶添加量(A)、pH值(B)、溫度(C)、酶解時間(D)、底物質(zhì)量濃度(E)對細胞增殖活性的影響Fig. 1 Effects of enzyme dosage (A), pH (B), temperature (C),enzymatic hydrolysis time (D) and substrate concentration (E) on cell proliferation activity

        2.2 PB試驗

        利用Design Expert 8.0.6設(shè)計N=12的Plackett-Burman,選擇對酶添加量(A)、底物質(zhì)量濃度(B)、酶解溫度(C)、pH值(D)及溫度(E)5 個因素進行分析??疾旄饕蛩貙χ苽涞拿附猱a(chǎn)物抑制結(jié)直腸癌細胞增殖活性的影響,以上述因素在單因素實驗中的結(jié)果選擇合適的范圍和高低水平,以酶解產(chǎn)物對結(jié)直腸癌細胞HT-29的抑制率為響應(yīng)值,設(shè)計和結(jié)果分別如表1、2所示。

        用Design Expert 8.0.6對實驗結(jié)果進行效應(yīng)分析以及方差分析,結(jié)果如表3、4所示。由表3可知,酶添加量、底物質(zhì)量濃度、酶解時間這3 個因素為正效應(yīng);pH值、溫度2 個因素為負效應(yīng),并且這些因素效應(yīng)值的大小與貢獻率保持一致。由表4可知,模型顯著,說明PB模型選擇合適,各因素P值的大小反映了該因素對實驗結(jié)果影響的顯著程度,P值越小說明該因素對結(jié)果影響越顯著。因此可選用這3 個因素進行最陡爬坡試驗。對于其他的因素,pH值、溫度為負效應(yīng),因此應(yīng)選取其低水平,即pH 5、溫度35 ℃。

        表3 PB試驗設(shè)計因素水平及效應(yīng)分析Table 3 Analysis of effect and contribution rate of each variable used in PB design

        表4 PB試驗整體因素模型方差分析表Table 4 Analysis of variance for the effect of each variable on cell proliferation activity in PB design

        2.3 最陡爬坡試驗

        最陡爬坡法是將各因素正負效應(yīng)的變化確定為爬坡方向,利用各因素的效應(yīng)值大小確定變化步長,可以更經(jīng)濟快速地逼近最佳值區(qū)域,得到有效的響應(yīng)擬合方程。根據(jù)PB試驗結(jié)果,篩選出主要的影響因素并設(shè)計最陡爬坡路徑。最陡爬坡試驗拐點圖如圖2所示。編號為4的實驗是最大值點,對應(yīng)的條件為酶添加量0.1 IU/mg、底物質(zhì)量濃度1 mg/mL、酶解時間90 min。對應(yīng)對HT-29細胞的抑制率可達80.95%,故該點為下一步BB試驗設(shè)計的中心點。

        圖2 最陡爬坡試驗Fig. 2 Results of steepest ascent test

        2.4 BB響應(yīng)面試驗

        利用Design-Expert 8.05b軟件對酶添加量(A)、底物質(zhì)量濃度(B)、酶解時間(C)設(shè)計三因素三水平的實驗,BB試驗的結(jié)果如表5所示。BB試驗的數(shù)據(jù)分析使用Design-Expert 8.0.5b軟件進行方差分析,結(jié)果如表6所示。

        表5 Box-Behnken試驗設(shè)計Table 5 Box-Behnken design and experimental results

        表6 Box-Behnken實驗回歸模型方差分析Table 6 AVOVA of quadratic polynomial model developed based on Box-Behnken design

        由表6可知,所選擇的回歸模型的P值小于0.05,表明整體模型對實驗結(jié)果有顯著的影響,具有可信度;失擬項的P值為0.053 5,不顯著,說明未知因素對結(jié)果的影響較小,殘差主要由隨機誤差引起,模型選擇適當;該模型的相關(guān)系數(shù)R2=0.978 7,信噪比大于4,表明模型可信。低分子質(zhì)量硫酸軟骨對HT-29細胞的抑制率(Y)對酶添加量(A)、底物質(zhì)量濃度(B)、酶解時間(C)的多元二次回歸方程為:

        由回歸方程所做的響應(yīng)面立體圖見圖3所示,主要反映了酶添加量、底物質(zhì)量濃度和酶解時間之間的交互作用。通過方程可知,二次項系數(shù)為負值,表明方程具有最大值。利用Design-expert8.0.5b分析計算,酶解最佳條件為酶添加量0.103 IU/mg、底物質(zhì)量濃度1.005 mg/mL、酶解時間87 min,可得最大抑制率82.63%。按照工藝進行驗證實驗,所得結(jié)果為82.55%,與預(yù)測值基本吻合,說明模型很好地預(yù)測試驗結(jié)果。

        圖3 兩因素交互作用的響應(yīng)面圖和等高線圖Fig. 3 Response surfaces and contour plots showing individual and interactive effects of variables on inhibitory activity against cell proliferation

        2.5 具有抗結(jié)直腸癌活性的低分子質(zhì)量SCS的超濾分離

        超濾分離后各組分相對含量如圖4A所示,共收集到3 個組分,凍干并計算相對含量,SCS-F1、SCS-F2和SCS-F3分別占SCS總質(zhì)量的24.11%,57.07%和18.02%。配制1 000 μg/mL的各組分樣品進行細胞實驗,檢測各組分對結(jié)直腸癌細胞HT-29增殖活性的抑制效果。如圖4B所示,SCS-F2具有更高的抑制活性(88.87%),顯著高于陽性對照DDP處理組(50.70%)。同時分子質(zhì)量最小的SCS-F3卻顯示出較低的抑制活性,約29.13%,低于陽性對照DDP組,這可能是由于分子質(zhì)量降低,具有抗腫瘤活性的官能團減少或者消除[23],使得該組分(SCS-F3)不具有抗腫瘤活性,因此選擇SCS-F2進行后續(xù)研究。

        圖4 不同分子質(zhì)量截留超濾后各組分相對含量(A)和對結(jié)直腸癌細胞HT-29增殖活性的影響(B)Fig. 4 Percentages of ultrafiltration fractions with different molecular masses (A) and their inhibitory effects on the proliferation of colorectal cancer cell line HT-29 (B)

        2.6 具有抗腫瘤活性的低分子質(zhì)量SCS毒性分析

        動物實驗期間,各小鼠均未表現(xiàn)出明顯的不良反應(yīng),且無意外死亡狀況發(fā)生。隨機剖取各組中的小鼠,觀察不同處理對小鼠心、肝、脾、肺、腎和結(jié)腸組織的影響。表7中臟器質(zhì)量結(jié)果顯示,SCS-F2對臟器的生長發(fā)育沒有影響。如圖5所示,各組臟器的形態(tài)、顏色和質(zhì)地未見變化。其中肝臟組織切片的HE染色圖顯示各組肝臟中肝小葉排列規(guī)則、結(jié)構(gòu)無異常、無病理性改變,但是在空白對照組中,可見少部分胞漿呈空泡網(wǎng)格狀,猜測可能有輕微炎癥現(xiàn)象,SCS-F2處理組中未見該現(xiàn)象,且干細胞索排列整齊,細胞形態(tài)正常,胞核位于中央,胞漿分布均勻,未見變性壞死,說明對肝臟沒有毒性影響,結(jié)合上述肝臟血生化指標(表7),SCS-F2處理組中血液中抗炎指標均高于空白組,說明SCS-F2一定程度上對肝臟具有保護作用。

        圖5 SCS和SCS-F2對小鼠組織臟器的影響(200×)Fig. 5 Effects of SCS and SCS-F2 on visceral tissues of mice (200 ×)

        表7 SCS和SCS-F2對小鼠臟器質(zhì)量、血常規(guī)及血生化的影響Table 7 Effects of SCS and SCS-F2 on visceral organ mass, complete blood count and blood biochemical indexes in mice

        腎臟病理切片觀察可以看出,各組小鼠腎臟組織中腎皮質(zhì)及腎髓質(zhì)分界清晰,腎小球分散且分布均勻,周圍組織未見明顯病變,均為正常腎臟組織。腎臟的基本功能是產(chǎn)生尿液[24-25],清除體內(nèi)代謝產(chǎn)物及不可被吸收的殘渣,具有保證機體內(nèi)環(huán)境的穩(wěn)定和新陳代謝的正常進行的作用[26-29],說明SCS-F2對腎臟不具有毒副作用。

        異常隱窩灶(aberrant crypt foci,ACF)是結(jié)直腸的一種癌前病變,是結(jié)直腸癌發(fā)生發(fā)展過程中的一個重要階段[30-31]。因此,對ACF的檢測和改善可以有效預(yù)防結(jié)直腸癌的早期發(fā)生[32]。如圖5所示,各組中小鼠結(jié)腸隱窩細胞排列整齊規(guī)則;對比正常對照組,SCS-F2處理組中不論是雄性或者是雌性小鼠中結(jié)腸均為出現(xiàn)柱狀細胞和杯狀細胞增生的現(xiàn)象。如圖6所示,與正常對照組和SCS處理組相比,SCS-F2處理后ACF數(shù)量較低,僅為6.11±2.09(雄性)和6.00±3.21(雌性),說明SCS-F2具有預(yù)防和治療結(jié)直腸癌的潛力。綜合以上結(jié)果,SCS-F2屬于實際無毒級,對小鼠內(nèi)臟器官無不良影響。根據(jù)《保健食品檢驗與技術(shù)評價規(guī)范》,當死亡數(shù)量≤50%時,可以進入下一階段的毒理學(xué)試驗,實驗結(jié)果說明實驗組在1 000 μg/(g·d)劑量下滿足食品安全要求,可初步確定SCS-F2安全。

        圖6 SCS和SCS-F2對小鼠結(jié)腸ACF的影響Fig. 6 Effects of SCS and SCS-F2 on colonic aberrant crypt foci in mice

        3 結(jié) 論

        本實驗以SCS為原料,以結(jié)直腸癌細胞抑制率為指標,利用酶解法和響應(yīng)面法結(jié)合的手段,確定最佳酶解制備條件,通過凝膠層析色譜,分離純化出具有高活性的低分子質(zhì)量SCS;采用小鼠急性毒性實驗,對SCS-F2的食用安全性進行評價。結(jié)果顯示,制備的低分子質(zhì)量SCS具有較高的抑制結(jié)直腸癌增殖活性,且無毒副作用,在1 000 μg/(g·d)劑量下滿足保健食品的要求。本研究為開發(fā)高活性、低分子質(zhì)量SCS的制備和研究提供新思路,初步了解SCS是否具有食用安全性,為SCS相關(guān)產(chǎn)品的日后開發(fā)和利用提供依據(jù)。

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