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        QuEChERS-氣相色譜串聯(lián)質譜法同時測定番茄中46種農藥殘留

        2023-02-14 10:14:24薛新花李婷婷任興權
        食品工業(yè)科技 2023年4期
        關鍵詞:檢測方法

        薛新花,李婷婷,劉 盼,周 麗, ,任興權,王 蓉

        (1.酒泉職業(yè)技術學院,甘肅酒泉 735000;2.酒泉市食品檢驗檢測中心,甘肅酒泉 735000)

        番茄(SolanumlycopersicumL.)屬茄科茄屬,富含番茄紅素、維生素、酚類物質、有機酸等多種營養(yǎng)成分,由于其獨特的口感和豐富的營養(yǎng),深受廣大消費者的喜愛[1]。同時番茄屬于蔬果兼用型蔬菜,是酒泉戈壁日光溫室中主要栽培種植的蔬菜種類[2]。由于日光溫室是封閉的,其高溫、高濕、無雨的種植環(huán)境,在滿足蔬菜生產周期的同時也為害蟲提供了適宜的生態(tài)環(huán)境,為了保證蔬菜質量,農藥被使用到蔬菜生產過程中。但在施用農藥用來防治病蟲害的過程中,生產者常常盲目或過量使用農藥,造成番茄時有農藥殘留超標問題出現(xiàn),從而影響番茄質量安全[3]。因此,建立番茄中快速、高效、準確的農藥多殘留的檢測方法對控制番茄農藥殘留,促進戈壁設施產業(yè)健康發(fā)展具有重要意義。

        農藥殘留檢測過程中,從樣品中提取目標物是關鍵過程,目前最常見的前處理方法有加速溶劑萃取法[4]、固相萃取法[5-6]、分散液相萃取法[7]等,這些方法都需要特定的設備,不能最大化使用到檢測過程中。而QuEChERS法是近年來備受歡迎的樣品前處理方法,具有快速(quick)、簡單(easy)、廉價(cheap)、高效(effective)、可靠(rugged)、安全(safe)等特點,廣泛應用于蔬菜[8]、水果[9-10]、谷物[11]等基質樣品中多殘留農藥的快速前處理技術。對于番茄中農藥殘留的檢測方法主要有氣相色譜法[12]、液相色譜法[13]、氣相色譜質譜法[14-15]、液相色譜質譜法[16],對于大多數(shù)檢驗檢測機構,在合規(guī)運營的前提下,多采用快速簡便的前處理方法和高靈敏度、高準確度、高通量的檢測技術。趙麗敏等[17]利用優(yōu)化的QuEChERS法結合氣相色譜串聯(lián)質譜法分析了番茄和油菜中的50種農藥殘留。Yang等[18]等用改進的QuEChERS方法結合氣相色譜-串聯(lián)質譜法測定蔬菜中118種農藥殘留量。

        本研究采用QuEChERS方法處理樣品,根據(jù)46種農藥的回收率高低對提取溶劑和凈化條件進行選擇和優(yōu)化,同時采用氣相色譜質譜聯(lián)用儀分析樣品,建立了同時測定番茄中46種農藥殘留的QuEChERS-GC-MS快速分析方法。考察了所建立方法的靈敏度、精密度以及基質適用性等。該方法高效、快速、靈敏、準確,能滿足番茄中農藥殘留的檢測要求,可為番茄的質量控制提供技術支持。

        1 材料與方法

        1.1 材料與儀器

        番茄樣品 按照NY/T 789-2014《農藥殘留分析樣本的采樣方法》[19],采自酒泉市戈壁農業(yè)產業(yè)園,采集當天運回實驗室,并將樣品破碎、打成漿后置于-18 ℃冰箱中備用;甲胺磷、敵敵畏、乙酰甲胺磷、氧樂果、滅線磷、甲拌磷、甲拌磷砜、甲拌磷亞砜、樂果、唑螨酯、五氯硝基苯、嘧霉胺、二嗪磷、氯唑磷、氟蟲脲、抗蚜威、甲基對硫磷、莠滅凈、氟甲腈、氟蟲腈、氟蟲腈砜、氟蟲腈亞砜、殺螟硫磷、毒死蜱、噻蟲嗪、嘧菌環(huán)胺、戊菌唑、腐霉利、粉唑醇、己唑醇、抑霉唑、咯菌腈、腈菌唑、三唑磷、氟環(huán)唑、肟菌酯、亞胺硫磷、聯(lián)苯肼酯、乙螨唑、伏殺硫磷、氯苯嘧啶醇、噠螨靈、腈苯唑、啶酰菌胺、氟氰戊菊酯、嘧菌酯標準品 濃度均為100 μg/mL(46),農業(yè)部環(huán)境保護科研監(jiān)測所;乙腈、甲醇、正己烷 色譜純,德國Merck公司;丙酮 色譜純,南京化學試劑股份有限公司;氯化鈉、無水硫酸鎂 分析純,天津市科密歐化學試劑有限公司;檸檬酸鈉、檸檬酸氫二鈉 分析純,天津光復化學試劑公司;乙二胺-N-丙基硅烷(PSA)40~60 μm Biosun公司;石墨化碳黑(GCB)40~60 μm 日照科譜諾新材料有限公司;C1840~60 μm Agilent公司。

        TRACE1310+TSQ8000Evo三重串聯(lián)四極桿氣相色譜串聯(lián)質譜連用儀 賽默飛世爾科技(中國)有限公司;PL602E/02型便攜式天平 梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司;Vortex-Genie2渦旋混合器美國Scientific Industries公司;Quintix2102-1CN高速冷凍離心機 長沙英泰儀器有限公司。

        1.2 實驗方法

        1.2.1 樣品前處理 參考GB 23200.113-2018的標準方法[20],將制備好的樣品在室溫下解凍,準確稱取10 g番茄樣品于50 mL離心管中,用移液管精密加入10.0 mL乙腈,2000 r·min-1下渦旋振蕩10 min,再加入2 g氯化鈉、4 g硫酸鎂、1 g檸檬酸鈉和0.5 g檸檬酸氫二鈉后劇烈振蕩2 min,再以8000 r/min的轉速離心5 min。準確吸取上清液3 mL加入到凈化管中,2000 r·min-1下渦旋振蕩萃取3 min,再以8000 r·min-1離心5 min,精密移取上清液1 mL,用氮氣緩慢吹至近干后用乙酸乙酯復溶,經0.22 μm有機濾膜過濾后用于GC-MS/MS測定。同法處理空白試樣,制得空白基質溶液。

        1.2.2 標準系列配制 分別吸取各農藥標準溶液(100 μg/mL)0.10 mL于10 mL容量瓶中,用乙酸乙酯定容至刻度,得到1 μg/mL的混合標準中間溶液,于-18 ℃冰箱中密封、避光保存。準確吸取混合標準中間溶液,用乙酸乙酯配制成濃度分別為0.005、0.010、0.050、0.100、0.500 μg/mL的農藥混合標準系列。吸取6份按照1.2.1制備的空白基質溶液1 mL,用氮氣緩緩吹干,再向其中分別加入1 mL農藥混合標準系列溶液復溶,配制成基質混合標準系列。以46種農藥的基質標準系列的質量濃度為橫坐標,各農藥的定量離子對的峰面積為縱坐標,繪制標準曲線。

        1.2.3 色譜條件 色譜柱:HP-5MS(30 m×0.25 mm,0.25 μm);程序升溫:40 ℃保持1 min,以40 ℃/min升溫至120 ℃,以5 ℃/min升溫至240 ℃,再以12 ℃/min升溫至300 ℃,保持10 min;載氣:高純氦氣(純度為99.999%);流速1.0 mL/min;進樣口溫度300 ℃;不分流進樣,進樣量1 μL;碰撞氣:高純氬氣(純度為99.999%)。

        1.2.4 質譜條件 電離方式:電子轟擊離子源,70 eV;離子源溫度:280 ℃;傳輸線溫度:280 ℃;掃描方式:多反應監(jiān)測(SRM);溶劑延遲5.0 min。

        1.3 數(shù)據(jù)處理

        采用TraceFinder軟件處理數(shù)據(jù),用TraceFinder和Microsoft Excel 2010軟件分析數(shù)據(jù)并作圖。

        2 結果與分析

        2.1 儀器條件優(yōu)化

        采用全掃描模式對各農藥的標準品分別進行掃描,確定46種農藥的保留時間,并在質譜圖中選擇豐度高且質荷比大的特征離子為母離子,母離子通過適宜碰撞能量的碰撞池產生子離子,從中選取1~2個靈敏度高、強度大的子離子,與母離子組成定量離子對和定性離子對。表1為46種農藥組分優(yōu)化的保留時間、定量離子對、定性離子對和碰撞能量。圖1為46種農藥的總離子流圖。

        表1 46種農藥的保留時間和質譜條件Table 1 Retention time and mass spectrometric parameters of 46 kinds of pesticides

        圖1 番茄基質中46種農藥混合標準溶液的總離子流圖Fig.1 TIC of 46 pesticide mixed standard solutionsin tomato matrix

        2.2 前處理條件優(yōu)化

        2.2.1 提取溶劑的選擇 根據(jù)所檢測的農藥極性、檢測樣品的性質,選擇所需要的提取溶劑。本文參照李莎等[21]的研究結果,選擇正己烷、丙酮、乙酸乙酯、乙腈作為提取溶劑,以加入1 mg/kg農藥混標的番茄樣品為研究對象,考察不同溶劑對番茄中農藥殘留的提取效果,結果如圖2所示。46種農藥在正己烷、丙酮、乙酸乙酯、乙腈中的平均回收率分別為82.97%、85.39%、70.58%和97.33%。乙酸乙酯作為提取溶劑,部分農藥回收率較低;正己烷由于其自身極性較弱,對于部分有機磷等極性較大的農藥提取率較低;丙酮雖然極性較大,但是作為提取劑,容易將樣品中色素等雜質溶解出來,加大后續(xù)凈化難度,同時丙酮作為易制毒試劑,其揮發(fā)性和毒性較大,不利于環(huán)境保護和操作人員身體健康;乙腈作為提取溶劑,對農藥溶解度大且通用性強,其回收率高,提取效果最好,同時乙腈對樣品中的色素和油脂等非極性組分的提取率低,樣品基質干擾小[22],所以本文選擇乙腈作為提取溶劑。

        圖2 不同提取溶劑對46種農藥提取效果的影響Fig.2 Effects of different extraction solvents on the extraction efficiency of 46 kinds of pesticide compounds

        續(xù)表1

        2.2.2 凈化劑的選擇 PSA、GCB、C18、無水MgSO4是QuEChERS方法主要使用的凈化試劑[23],其中PSA、GCB和C18主要用于除去樣品中的有機酸、色素、糖類等大分子干擾物質,但是GCB表面具有特殊的六元環(huán),會吸附結構對稱的極性組分農藥[24],無水MgSO4主要用于除去樣品中的水分,但是無水MgSO4吸水后會大量放熱,使樣品溫度升高,從而使熱不穩(wěn)定的農藥分解,導致其回收率會降低。因此,本文參照楊志敏等[25]的研究結果,設計3種不同填料和配比的QuEChERS凈化管(A:PSA 150 mg、GCB 15 mg、MgSO4885 mg,B:PSA 150 mg、GCB 45 mg、MgSO4855 mg,C:PSA 150 mg、C18150 mg、MgSO4900 mg),以45種農藥的回收率考察凈化管的凈化效率,結果見圖3。方案B中45種農藥的回收率范圍在29.4%~85.4%之間,且回收率在80%以上的只有氟甲腈、乙酰甲胺磷、氧樂果、甲拌磷砜、甲胺磷,其他農藥化合物的回收率均較低,無法滿足試驗要求。方案A和C的回收率均在60%~100%之間,但是方案A的平均回收率只有73.7%,而方案C的平均回收率達到了83.2%,能夠滿足試驗要求,因此,本試驗以方案C的填料和配比進行樣品凈化。

        圖3 不同凈化方案對46種農藥凈化效果的影響Fig.3 Effects of different purification conditions on the extraction efficiency of 46 kinds of pesticide compounds

        2.3 基質效應

        本文使用按照1.2.1制備的番茄空白基質溶液和乙酸乙酯溶液分別配制成濃度為0.005、0.05、0.5 μg/mL的基質標液和溶劑標液,用ME來表示基質效應,計算公式為ME=A/B,其中A為基質標液的響應值、B為溶劑標液的響應值。當ME<1時,表示基質對分析物的響應有減小的影響;當ME=1時,表示不存在基質效應,可以用溶劑標準曲線對樣品進行定量;當ME>1時,基質對分析物的響應有增大的影響[26-27]。46種農藥的基質效應見表2。其中敵敵畏、噻蟲嗪、腈苯唑基質效應為0.74、0.87、0.95,均小于1,說明基質的加入會使這三種農藥的響應值減小,其他43種農藥均表現(xiàn)為基質效應增強,為了補償基質效應,本文采用機制匹配校準法來消除基質的干擾[28]。

        表2 番茄中46種農藥的線性方程、決定系數(shù)、基質效應、檢出限、定量限、回收率和相對標準偏差Table 2 Linear equations, determination coefficients, matrixeffects (ME), limit of detection (LOD), limit of quatification (LOQ),recoveries and standard deviations of 46 pesticide residues in tomato

        2.4 線性方程、決定系數(shù)、檢出限

        采用優(yōu)化后的提取和凈化方法,對空白番茄樣品進行提取,利用空白番茄樣品的提取液配制基質標準系列,得到46種農藥的標準曲線,如表2所示。46種農藥在0.005~0.500 μg/mL的濃度范圍內線性關系良好,R2值均大于0.999。以儀器3倍的信噪比表示方法的檢出限,46種農藥的方法檢出限在0.07~2.63 μg/kg,以儀器10倍的信噪比表示方法的定量限,46種農藥的方法定量限為0.21~8.39 μg/kg,均低于GB 23200.113-2018標準規(guī)定的0.01 mg/kg[20],能夠滿足國家標準對農藥殘留檢測的定量限要求。

        2.5 方法的回收率和精密度

        在番茄樣品中分別加入0.0025、0.025、0.25 mg/kg三個水平濃度的46種農藥標液,渦旋混勻2 min,靜置2 h,按照1.2.1的步驟對樣品進行提取和凈化,每個添加濃度做5次平行試驗,得到各農藥組分三個添加水平的回收率和精密度,結果見表2。46種農藥殘留的加標回收率在70.40%~115.08%范圍內,相對標準偏差在0.22%~4.89%范圍內。番茄樣品檢測結果的精密度和準確度均能達到GB/T 27404-2008標準中農藥殘留檢測的要求[29]。

        2.6 實際樣品測定

        利用優(yōu)化好的QuEChERS前處理方法和GCMS/MS條件,對50批酒泉市戈壁設施產番茄樣品中的農藥殘留量進行檢測,發(fā)現(xiàn)9批樣品中檢出農藥殘留。其中9批樣品中均檢出毒死蜱,含量分別為0.0144、0.0127、0.0075、0.0125、0.0117、0.0088、0.0057、0.0051、0.0043 mg/kg,其中3批樣品同時檢出嘧菌酯,含量分別為0.0365、0.0278、0.0112 mg/kg,但是檢出的殘留農藥均未超出GB 2763-2021[30]標準規(guī)定的限量值(毒死蜱為0.02 mg/kg、嘧菌酯為3 mg/kg)。

        3 結論

        本文采用乙腈提取,PSA、C18、無水MgSO4凈化,HP-5MS色譜柱分離,采用多反映監(jiān)測(MRM)模式檢測,機制匹配外標法定量,建立了同時測定番茄中46種農藥殘留的分析檢測方法。結果表明,46種農藥組分在0.005~0.500 μg/mL的濃度范圍內線性關系良好,決定系數(shù)均大于0.999,方法檢出限和定量限分別在0.07~2.63 μg/kg和0.21~8.39 μg/kg之間,添加低、中、高三個濃度水平的平均回收率在70.40%~115.08%范圍內,相對標準偏差為0.22%~4.89%。本文的方法快速、簡單、環(huán)保、靈敏度高,能夠滿足番茄中多農藥殘留的檢測,可為戈壁設施產番茄的質量監(jiān)測提供一種快速高效的分析手段。

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