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        miR-105聯(lián)合MMP-2預(yù)測(cè)腦膠質(zhì)瘤術(shù)后復(fù)發(fā)的臨床價(jià)值分析

        2023-01-07 07:07:10宋旭東羅波陳華軒張逵王瀟婭
        關(guān)鍵詞:檢測(cè)

        宋旭東,羅波,陳華軒,張逵,王瀟婭

        (南充市中心醫(yī)院 神經(jīng)外科,四川 南充 637000)

        腦膠質(zhì)瘤是顱內(nèi)常見(jiàn)的源自神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞的原發(fā)性顱腦腫瘤,該病不同病理級(jí)別患者的臨床治療方案存在較大差別,且預(yù)后差異也較大[1]。膠質(zhì)瘤具有惡性程度高、術(shù)后易復(fù)發(fā)等特點(diǎn),雖然對(duì)腦膠質(zhì)瘤的術(shù)前評(píng)估及治療手段不斷完善,但術(shù)后高復(fù)發(fā)率及高相關(guān)并發(fā)癥仍是臨床難以解決且急需解決的問(wèn)題[2]。腦膠質(zhì)瘤的標(biāo)準(zhǔn)治療以手術(shù)切除為主,并結(jié)合放化療等綜合治療手段[3]。血漿基質(zhì)金屬蛋白酶(matrix metalloproteinases,MMP)被認(rèn)為對(duì)溶栓后出血有預(yù)測(cè)作用[4-5],MMP-2為最主要的降解細(xì)胞外基質(zhì)之一,與腦膠質(zhì)瘤之間的關(guān)系最為密切,其表達(dá)水平與膠質(zhì)瘤細(xì)胞增殖和侵襲性均存在密切相關(guān)性[6]。臨床研究[7]表明,降低MMP-2的表達(dá)水平可抑制膠質(zhì)瘤細(xì)胞的遷移及侵襲。微小RNA(microRNA,miR)是一類(lèi)由18~25個(gè)核苷酸組成的小分子非編碼RNA,通過(guò)與靶基因的mR結(jié)合,抑制其翻譯或促進(jìn)降解,從而起到調(diào)控靶基因表達(dá)的作用[8]。miR在腫瘤發(fā)生發(fā)展中的作用已有廣泛研究,且有研究[9]表明可通過(guò)部分miR對(duì)MMP-2進(jìn)行調(diào)控。miR-105在膠質(zhì)瘤中高表達(dá)[10],miR-105可通過(guò)靶向緊密連接蛋白ZO-1破壞血管內(nèi)皮屏障,促進(jìn)腫瘤轉(zhuǎn)移[11]。

        本研究通過(guò)選取2018年7月至2021年7月間于我院行手術(shù)治療的腦膠質(zhì)瘤患者,探討腦膠質(zhì)瘤術(shù)后miR-105、MMP-2的表達(dá)與腦膠質(zhì)瘤術(shù)后復(fù)發(fā)的關(guān)系,為臨床評(píng)估患者的預(yù)后及調(diào)整合適的治療方式提供理論依據(jù),現(xiàn)報(bào)道如下。

        1 資料和方法

        1.1 一般資料

        選取2018年7月至2021年7月間于我院行手術(shù)治療的腦膠質(zhì)瘤患者89例,收集腦膠質(zhì)瘤組織與瘤旁組織?;颊咴l(fā)病灶術(shù)后按照WHOCNS2016病理分級(jí):Ⅰ級(jí)6例,Ⅱ級(jí)30例,Ⅲ級(jí)34例,Ⅳ級(jí)19例;其中男47例,女42例;年齡28~73歲,平均(45.95±12.44)歲。術(shù)后對(duì)患者隨訪(fǎng)9個(gè)月,每月隨訪(fǎng)1次,觀(guān)察是否復(fù)發(fā)。腦膠質(zhì)瘤復(fù)發(fā)診斷:連續(xù)兩次MRI檢查顯示病灶明顯增大。納入標(biāo)準(zhǔn):(1) 初次手術(shù);(2) 術(shù)后病理檢查證實(shí)為腦膠質(zhì)瘤;(3) 年齡≥18歲;(4) 術(shù)前無(wú)放療、化療;(5) 既往體檢及精神狀況正常;(6) 病例資料齊全,臨床隨訪(fǎng)資料完整。排除標(biāo)準(zhǔn):(1) 患其他原發(fā)性腫瘤及癲癇等;(2) 患腦血管疾病(如腦缺血、腦出血、腦梗死等);(3) 嚴(yán)重感染;(4) 心、肺、肝、腎功能不全等;(5) 患病毒性肝炎、自身免疫性疾??;(6) 既往有顱腦損傷史;(7) 交流障礙及既往有精神病史;(8) 未按時(shí)隨訪(fǎng)。本研究經(jīng)我院倫理委員會(huì)審核批準(zhǔn),患者或其家屬均自愿且簽署知情同意書(shū)。

        1.2 細(xì)胞株、試劑和儀器

        腦膠質(zhì)瘤細(xì)胞株 U251(上海極威生物科技有限公司);miR提取試劑盒、熒光定量及逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(北京諾博萊德科技有限公司);TRIzol(RNA 提取試劑盒) 試劑(大連寶生物工程有限公司);MMP-2試劑盒(福州邁新公司);miR-105、MMP-2 DNA 序列,miR-105、MMP-2熒光定量相關(guān)引物(上海生工生物工程公司);RPMI 1640培養(yǎng)基(美國(guó)Hyclone公司);胎牛血清、DMEM 培養(yǎng)液(北京鼎國(guó)昌盛生物技術(shù)有限公司);山羊抗兔一抗、二抗(碧云天生物技術(shù)研究所);RIPA裂解液、PMSF(國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司);細(xì)胞計(jì)數(shù)板(上海五相儀器儀表有限公司);轉(zhuǎn)膜儀(江蘇金域國(guó)勝實(shí)驗(yàn)儀器廠(chǎng));流式細(xì)胞儀(美國(guó)BD biosciences公司)。

        1.3 實(shí)驗(yàn)方法

        1.3.1 RT-PCR檢測(cè)組織miR-105表達(dá)水平

        用TRIzol法提取組織總RNA,用Nanodrop分光光度計(jì)測(cè)定吸光度值(A260 nm/A280 nm),按試劑盒說(shuō)明書(shū)合成樣品cDNA和進(jìn)行熒光定量 PCR的擴(kuò)增,反應(yīng)條件為:94 ℃預(yù)變性5 min;94 ℃變性30 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s,擴(kuò)增35個(gè)循環(huán);72 ℃延伸10 min。用2-ΔΔCt法計(jì)算miR-105相對(duì)表達(dá)量。

        1.3.2 免疫組化法檢測(cè)組織中MMP-2表達(dá)水平

        取新鮮腫瘤組織,以10%中性甲醛固定24 h后切塊。按照MMP-2試劑盒說(shuō)明書(shū)采用免疫組化SP法進(jìn)行檢測(cè),切片機(jī)對(duì)石蠟標(biāo)本進(jìn)行4 μm厚切片,將所取腫瘤標(biāo)本先進(jìn)行二甲苯脫蠟,酒精脫水處理,脫水處理完畢后標(biāo)本在pH值為6.0的酸性緩沖液中進(jìn)行抗原修復(fù)處理,使用枸櫞酸沖洗液連續(xù)沖洗3次后加10%的過(guò)氧化酶阻斷內(nèi)源性過(guò)氧化酶的活性,室溫孵育后再次緩沖液沖洗3次,加血清再次室溫孵育后處理干凈血清,滴加一抗,37 ℃孵育1 h, PBS洗滌3 min 3次,滴加二抗,37 ℃孵育45 min, PBS洗滌3 min 3次,DAB翻譯顯色后自來(lái)水下沖洗,蘇木素復(fù)染,常規(guī)固定后觀(guān)片。免疫組化閱片:選擇腫瘤組織內(nèi)陽(yáng)性染色密集區(qū),細(xì)胞核/質(zhì)呈棕黃色顆粒,400倍鏡下計(jì)數(shù)500個(gè)細(xì)胞,計(jì)算陽(yáng)性百分率。未發(fā)現(xiàn)陽(yáng)性細(xì)胞為-;≤10%的陽(yáng)性細(xì)胞為+;>10%~≤50%的細(xì)胞陽(yáng)性為++;>50%的細(xì)胞陽(yáng)性為+++。+及以上為陽(yáng)性表達(dá)。

        1.3.3 細(xì)胞實(shí)驗(yàn)

        1.3.3.1 細(xì)胞培養(yǎng)與轉(zhuǎn)染 腦膠質(zhì)瘤細(xì)胞U251的培養(yǎng)在 5% CO2、37 ℃的培養(yǎng)箱中進(jìn)行;將凍存的細(xì)胞用鑷子從液氮中取出,放入水浴鍋,快速搖動(dòng)至完全消融,解凍后以3 000 r·min-1低速離心5 min,吹打細(xì)胞成細(xì)胞懸液,以1×109L-1接種于培養(yǎng)瓶中,細(xì)胞培養(yǎng)液為含100 ml·L-1胎牛血清的DMEM培養(yǎng)液,添加10%胎牛血清和1%青鏈霉素,置于含5%CO2的37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。細(xì)胞轉(zhuǎn)染參照LipofectamineTM2000試劑說(shuō)明書(shū)上的步驟進(jìn)行:首先制備LipofectAMINETM2000復(fù)合物和DNA復(fù)合物(每孔含4 μg濃度為1 μg·μl-1的質(zhì)粒和246 μl的無(wú)血清培養(yǎng)基),隨后將二者混勻,溫室靜置20 min。將混合物加入6孔板,溫室培養(yǎng)6 h后更換含血清培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)48 h。將處理后U251細(xì)胞分為對(duì)照組(NC組)、miR-105組、MMP-2組和miR-105聯(lián)合MMP-2組,對(duì)照組不作任何處理,實(shí)驗(yàn)組中依次加入miR-105、MMP-2和miR-105聯(lián)合MMP-2作用于細(xì)胞48 h。

        1.3.3.2 RT-PCR 用TRIzol法促進(jìn)細(xì)胞裂解,添加氯仿0.2 ml,4 ℃條件下12 000 r·min-1離心15 min,取無(wú)色水相上層,添加等體積異丙醇并沉淀。加入適量乙醇(75%)清洗,獲得RNA沉淀,提取總RNA,用Nanodrop分光光度計(jì)測(cè)定吸光度值(A260 nm/A280 nm),按試劑盒說(shuō)明書(shū)合成樣品cDNA和進(jìn)行熒光定量 PCR的擴(kuò)增,反應(yīng)條件為:94 ℃預(yù)變性5 min;94 ℃變性30 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s,擴(kuò)增35個(gè)循環(huán);72 ℃延伸10 min。存儲(chǔ)在4 ℃條件下。反應(yīng)產(chǎn)物用2%瓊脂糖凝膠電泳分離。將腦膠質(zhì)瘤細(xì)胞 U251中的總 RNA 與miR提取后,再以總 RNA 為模板,將其反轉(zhuǎn)錄為cDNA,miR則應(yīng)用逆轉(zhuǎn)錄試劑盒。用2-ΔΔCt法計(jì)算miR-105、MMP-2表達(dá)量。miR-105上游引物5′-TCAAATGCTCAGACTC-3′,MMP-2 上游引物 5′-AGAAGGCTGTGTT-CTTCGCA-3′,GAPDH上游引物5′-TGTTCGACAGTCAGCCGC-3′。

        1.3.3.3 蛋白質(zhì)印跡實(shí)驗(yàn) 細(xì)胞轉(zhuǎn)染48 h后,用RIPA裂解液抽提細(xì)胞總蛋白,用BCA試劑盒測(cè)定蛋白質(zhì)含量。以12 000 r·min-1離心10 min,加入含蛋白酶抑制劑的細(xì)胞裂解液進(jìn)行總蛋白提取。蛋白質(zhì)印跡實(shí)驗(yàn)時(shí),首先將待檢測(cè)蛋白樣品按30 μg·孔-1上樣后行SDS-PAGE電泳,然后用濕轉(zhuǎn)法將蛋白轉(zhuǎn)移至PVDF膜上,用5%脫牛奶粉液封閉2.0 h后,加入相應(yīng)的DIRAS3抗體(1∶1 000)或者β-actin抗體(1∶1 000),在4 ℃條件下加入相應(yīng)一抗并孵育過(guò)夜,清洗。次日取出膜,在室溫孵育30 min,用TBST溶液(TBS,1 ml·L-1Tween-20)洗膜3次,10 min·次-1,洗去殘余的一抗;分別加HRP標(biāo)記的抗兔或抗小鼠二抗(1∶5 000),室溫孵育2 h。TBST(TBS,1 ml·L-1Tween-20)洗膜3次,10 min次-1,洗去殘余的二抗后最后加入發(fā)光液,曝光處理。ImageJ軟件統(tǒng)計(jì)灰度值。

        1.3.3.4 CCK-8法檢測(cè)U251細(xì)胞的增殖實(shí)驗(yàn) 采用CCK-8試劑盒,將處理過(guò)的U251細(xì)胞以5×103個(gè)·孔-1接種在96孔板中, 37 ℃下孵育24、48、72、96 h。加入 CCK-8試劑,再次孵育1 h。采用分光光度計(jì)在490 nm波長(zhǎng)測(cè)量吸光度,平均OD值用于估計(jì)每個(gè)組的細(xì)胞數(shù)量。

        1.3.3.5 Transwell法檢測(cè)U251細(xì)胞侵襲和劃痕實(shí)驗(yàn)檢測(cè)細(xì)胞遷移 將8 μm的Transwell分別放于24孔板中,將處理過(guò)的各組U251細(xì)胞置于培養(yǎng)基中,用胰酶進(jìn)行消化,按照每孔2.0×105個(gè)·ml-1的密度加入Transwell小室內(nèi),每孔加入200 μl的細(xì)胞懸液和RPMI 1640培養(yǎng)基,置于CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),棄去培養(yǎng)基,取出小室,10%的甲醇固定,采用結(jié)晶紫染色15 min,PBS洗去浮色,曬干,顯微鏡(×100)下觀(guān)察,隨機(jī)取3個(gè)視野拍照,計(jì)算細(xì)胞數(shù)量。劃痕實(shí)驗(yàn):制備U251細(xì)胞懸液并進(jìn)行細(xì)胞計(jì)數(shù),然后將數(shù)量相同的U251細(xì)胞種植到5 cm板中,經(jīng)培養(yǎng)過(guò)夜后每個(gè)孔中均鋪滿(mǎn)了均勻單層細(xì)胞,然后使用大小相同的槍頭進(jìn)行劃痕,每個(gè)孔的劃痕粗細(xì)均勻,劃下的細(xì)胞采用 PBS 進(jìn)行清洗,應(yīng)用沒(méi)有血清的培養(yǎng)液培養(yǎng),在 37 ℃、5%CO2的培養(yǎng)箱中進(jìn)行培養(yǎng),分別于 1、12、24 h在倒置顯微鏡下拍照。

        1.3.3.6 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)U251細(xì)胞凋亡 胰酶消化,分別收集各組的U251細(xì)胞,當(dāng)細(xì)胞的密度為1.0×105個(gè)·ml-1時(shí)接種于6孔板中,然后3 000 r·min-1離心5 min,離心半徑為11 cm,離心完成后棄上清,重懸細(xì)胞,加入Annexin V-FITC/PI雙染色染料,上流式細(xì)胞儀檢測(cè)。

        1.3.3.7 預(yù)測(cè)腦膠質(zhì)瘤術(shù)后復(fù)發(fā)的ROC曲線(xiàn)分析 通過(guò)ROC曲線(xiàn),在患者出院后進(jìn)行為期9個(gè)月的跟蹤隨訪(fǎng),比較患者腦膠質(zhì)瘤術(shù)后復(fù)發(fā)情況與檢測(cè)期間患者miR-105、MMP-2表達(dá)量之間是否存在相關(guān)性。

        1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

        2 結(jié) 果

        2.1 miR-105和MMP-2在膠質(zhì)瘤組織中的表達(dá)

        RT-PCR檢測(cè)結(jié)果顯示,膠質(zhì)瘤組織miR-105表達(dá)量為0.19±0.12,低于瘤旁組織的0.56±0.10,P<0.05。免疫組化法染色顯示,膠質(zhì)瘤組織陽(yáng)性表達(dá)率為73.03%(65/89),高于瘤旁組織的13.48%(12/89),P<0.05,見(jiàn)圖1。

        A.MMP-2在腦膠質(zhì)瘤組織中的表達(dá);B.MMP-2在瘤旁組織中的表達(dá)圖1 免疫組化法染色檢測(cè)MMP-2表達(dá)A.The expression of MMP-2 in glioma tissue; B.Expression of MMP-2 in paraneoplastic tissuesFig 1 Immunohistochemical staining was used to detect the expression of MMP-2

        2.2 術(shù)后復(fù)發(fā)影響因素的多因素Logistic回歸分析

        Logistic回歸分析結(jié)果顯示,miR-105和MMP-2對(duì)腦膠質(zhì)瘤術(shù)后復(fù)發(fā)存在顯著影響;進(jìn)一步分析可發(fā)現(xiàn),對(duì)腦膠質(zhì)瘤術(shù)后復(fù)發(fā)的影響從大到小依次是MMP-2、miR-105。詳見(jiàn)表1。

        表1 腦膠質(zhì)瘤術(shù)后復(fù)發(fā)的Logistic回歸分析Tab 1 Logistic regression analysis of postoperative recurrence of glioma

        2.3 miR-105、MMP-2預(yù)測(cè)腦膠質(zhì)瘤術(shù)后復(fù)發(fā)的ROC曲線(xiàn)分析

        miR-105、MMP-2單一及聯(lián)合檢測(cè)對(duì)腦膠質(zhì)瘤復(fù)發(fā)的預(yù)測(cè)價(jià)值ROC曲線(xiàn)顯示,以復(fù)發(fā)組為陽(yáng)性樣本,以無(wú)復(fù)發(fā)組為陰性樣本,繪制各指標(biāo)預(yù)測(cè)腦膠質(zhì)瘤術(shù)后復(fù)發(fā)的ROC曲線(xiàn),結(jié)果顯示,miR-105、MMP-2單一及聯(lián)合檢測(cè)預(yù)測(cè)術(shù)后復(fù)發(fā)的曲線(xiàn)下面積(AUC)依次為0.735、0.797、0.894,提示miR-105聯(lián)合MMP-2可預(yù)測(cè)腦膠質(zhì)瘤術(shù)后復(fù)發(fā),見(jiàn)表2、圖2。

        表2 miR-105、MMP-2預(yù)測(cè)腦膠質(zhì)瘤術(shù)后復(fù)發(fā)的ROC曲線(xiàn)分析Tab 2 ROC curve analysis of miR-105 and MMP-2 in predicting postoperative recurrence of glioma

        圖2 miR-105和MMP-2預(yù)測(cè)腦膠質(zhì)瘤術(shù)后復(fù)發(fā)的ROC曲線(xiàn)Fig 2 ROC curve of miR-105 and MMP-2 in predicting postoperative recurrence of glioma

        2.4 蛋白質(zhì)印跡法檢測(cè)各組蛋白表達(dá)

        對(duì)比轉(zhuǎn)染后NC組、miR-105組、MMP-2組和miR-105聯(lián)合MMP-2組各組細(xì)胞miR-105和MMP-2的表達(dá)情況,結(jié)果發(fā)現(xiàn),miR-105聯(lián)合MMP-2組和miR-105組的U251細(xì)胞中MMP-2蛋白的表達(dá)顯著高于NC組(P<0.05), miR-105組和miR-105聯(lián)合MMP-2組的U251細(xì)胞中miR-105的表達(dá)明顯高于NC組。本研究顯示,miR-105聯(lián)合MMP-2組中MMP-2 、miR-105表達(dá)均較低(P<0.05)。見(jiàn)圖3。

        圖3 蛋白質(zhì)印跡法檢測(cè)MMP-2、miR-105水平Fig 3 The detection of MMP-2 and miR-105 levels by Western blot

        2.5 miR-105和MMP-2水平對(duì)膠質(zhì)瘤增殖的影響

        與NC組相比,miR-105轉(zhuǎn)染后細(xì)胞OD值隨時(shí)間的增加而明顯降低,MMP-2組細(xì)胞OD值隨時(shí)間的增加而明顯升高,表明miR-105明顯抑制U251細(xì)胞增殖能力,而MMP-2可對(duì)細(xì)胞增殖起促進(jìn)作用(均P<0.05),見(jiàn)圖4。

        圖4 MMP-2和miR-105對(duì)腦膠質(zhì)瘤細(xì)胞增殖作用的影響(*P<0.05,**P<0.01)Fig 4 Effects of MMP-2 and miR-105 on proliferation of glioma cells(*P<0.05, **P<0.01)

        2.6 miR-105和MMP-2水平對(duì)膠質(zhì)瘤侵襲和遷移的影響

        MMP-2組細(xì)胞侵襲能力明顯高于NC組與miR-105聯(lián)合MMP-2組(P<0.05),miR-105組侵襲能力與NC組差異較小,但較MMP-2組與miR-105聯(lián)合MMP-2組明顯降低(P<0.05)。見(jiàn)圖5。

        圖5 MMP-2和miR-105對(duì)腦膠質(zhì)瘤侵襲(A)和遷移(B)的影響(*P<0.05)Fig 5 Effects of MMP-2 and miR-105 on invasion(A) and migration(B) of glioma(*P<0.05)

        2.7 MMP-2 和 miR-105的表達(dá)對(duì)腦膠質(zhì)瘤細(xì)胞凋亡的影響

        流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)結(jié)果顯示,各組細(xì)胞轉(zhuǎn)染后凋亡率NC組為11.26±1.56,MMP-2組為9.86±1.29,miR-105聯(lián)合MMP-2組為26.72±1.83,miR-105組為29.67±2.29。與NC組相比,miR-105組細(xì)胞凋亡率明顯升高,而MMP-2組細(xì)胞凋亡率有所降低(P<0.05),miR-105聯(lián)合MMP-2組同NC組相比凋亡率較高,但較miR-105組較低(P<0.05)。說(shuō)明miR-105能誘導(dǎo)腦膠質(zhì)瘤細(xì)胞凋亡, MMP-2對(duì)細(xì)胞凋亡有所抑制,且miR-105可能通過(guò)作用于MMP-2對(duì)細(xì)胞凋亡進(jìn)行調(diào)控。見(jiàn)圖6。

        A.NC組;B.MMP-2組;C.miR-105聯(lián)合MMP-2組;D.miR-105組圖6 MMP-2和miR-105流式細(xì)胞檢測(cè)結(jié)果A.NC group; B.MMP-2 group; C.miR-105+MMP-2 group;D.miR-105 groupFig 6 Flow cytometry results of MMP-2 and miR-105

        3 討 論

        腦膠質(zhì)瘤是較常見(jiàn)的原發(fā)性顱內(nèi)腫瘤,世界衛(wèi)生組織中樞神經(jīng)系統(tǒng)腫瘤分類(lèi)中將膠質(zhì)瘤通常分為Ⅰ~Ⅳ級(jí)[12],大部分患者首次治療后仍會(huì)出現(xiàn)腫瘤進(jìn)展或復(fù)發(fā),復(fù)發(fā)的主要原因在于腫瘤細(xì)胞不能完全手術(shù)清除,復(fù)發(fā)部位多在原部位,膠質(zhì)瘤仍有極高的致殘率和病死率[12]。由于腫瘤呈浸潤(rùn)性生長(zhǎng),腫瘤全切除率低,術(shù)后復(fù)發(fā)風(fēng)險(xiǎn)高,預(yù)后較差。

        MMP-2是MMP家族中重要的一員,主要來(lái)源于內(nèi)皮細(xì)胞、血管平滑肌細(xì)胞和成纖維細(xì)胞等,是一種酶活性鋅離子依賴(lài)性肽鏈內(nèi)切酶家族,MMP與腫瘤發(fā)生及癌細(xì)胞生長(zhǎng)、增殖、遷移等有關(guān)。相關(guān)研究[13-17]結(jié)果顯示,在多種腫瘤細(xì)胞中均存在 MMP-2的表達(dá);正常腦組織細(xì)胞中MMP-2的表達(dá)可能是因?yàn)槟X組織遭到損傷所引起,因陰性對(duì)照組均為腦外傷后行內(nèi)減壓手術(shù)的新鮮腦組織,可能腦組織本身已經(jīng)出現(xiàn)了水腫,損傷到了血腦屏障,導(dǎo)致毛細(xì)血管通透性增加,因此致使非正常生理狀態(tài)下的神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞及血管內(nèi)皮細(xì)胞分泌 MMP-2。MMP-2基因有可能作為判斷神經(jīng)母細(xì)胞瘤的侵襲性和預(yù)后情況的參考指標(biāo),可作為其預(yù)測(cè)指標(biāo)和干預(yù)靶點(diǎn),對(duì)其診斷及治療提供重要的指導(dǎo)作用[18]。

        目前對(duì)miRNA功能的研究主要包括對(duì)其進(jìn)行過(guò)表達(dá)與抑制這兩種方式,通過(guò)脂質(zhì)體將其轉(zhuǎn)染到生物體內(nèi),從而使內(nèi)源性 miRNA的表達(dá)明顯增強(qiáng)。腫瘤的發(fā)生發(fā)展主要與miRNA調(diào)節(jié)出現(xiàn)異常有關(guān),但是一個(gè) miRNA 可對(duì)多個(gè)靶基因產(chǎn)生調(diào)控作用,一個(gè)靶基因又可能被多個(gè) miRNA 所調(diào)控,使得難以完全弄清 miRNA 的功能。與正常細(xì)胞相比,腫瘤細(xì)胞的 miRNA 表達(dá)水平有著明顯的差異性,且與腫瘤細(xì)胞的增殖、分化、凋亡、侵襲、轉(zhuǎn)移過(guò)程密切相關(guān),因此在腫瘤的治療中,miRNA 成為了重要的靶點(diǎn)[19]。現(xiàn)有研究表明,miRNA-105與肝癌、結(jié)腸癌和卵巢癌的發(fā)生發(fā)展有著密切關(guān)系[20-21],如在直腸癌中可通過(guò)miR-105-5p/RAB22A軸加重結(jié)直腸癌的惡性發(fā)展,而在心臟缺血性損傷中卻又可通過(guò)多重途徑程序性抑制細(xì)胞凋亡。Guan等[22]發(fā)現(xiàn),與正常腦組織相比,miRNA-105在腦膠質(zhì)瘤組織中異常低表達(dá)。在惡性腫瘤中,有l(wèi)et-7、miR-105、miR-124、miR-154等下調(diào) miRNA,且均已經(jīng)證實(shí)在腫瘤細(xì)胞的侵襲轉(zhuǎn)移、增殖凋亡過(guò)程中起到了明顯的調(diào)控作用[23-24]。

        本研究通過(guò)采用免疫組化法檢測(cè)MMP-2蛋白的表達(dá)水平發(fā)現(xiàn),主要在腦膠質(zhì)瘤細(xì)胞的細(xì)胞膜、細(xì)胞質(zhì)中存在MMP-2蛋白的表達(dá),少許腦膠質(zhì)瘤細(xì)胞周?chē)軆?nèi)皮細(xì)胞中也存在MMP-2的表達(dá)。MMP-2高表達(dá)者復(fù)發(fā)率高于低表達(dá)者,提示MMP-2高表達(dá)是腦膠質(zhì)瘤患者術(shù)后復(fù)發(fā)的危險(xiǎn)因素,其可能原因在于MMP-2在細(xì)胞基底膜的降解中起著積極的作用,腫瘤細(xì)胞侵襲[25],降解細(xì)胞外基質(zhì),影響細(xì)胞與細(xì)胞和基質(zhì)之間的信號(hào)傳遞,對(duì)細(xì)胞的生長(zhǎng)分化、遷移、黏附、損傷及修復(fù)等方面產(chǎn)生影響。miR-105在復(fù)發(fā)腦膠質(zhì)瘤患者中呈低表達(dá),提示miR-105低表達(dá)是腦膠質(zhì)瘤患者術(shù)后復(fù)發(fā)的危險(xiǎn)因素。各組腦膠質(zhì)瘤細(xì)胞內(nèi) MMP-2蛋白均高表達(dá),miR-105 的 mRNA 表達(dá)水平與 MMP-2呈負(fù)相關(guān)(P<0.05),MMP-2可能為 miR-105 下游靶基因。通過(guò)Transwell侵襲實(shí)驗(yàn)與劃痕實(shí)驗(yàn)檢測(cè)細(xì)胞侵襲遷移顯示,miR-105可抑制腫瘤侵襲遷移,并對(duì)MMP-2增強(qiáng)的侵襲遷移能力進(jìn)行抑制。結(jié)合以上實(shí)驗(yàn)結(jié)果,推測(cè)其可能原因在于miR-105靶向負(fù)調(diào)控,抑制表達(dá)逆轉(zhuǎn)了抑制miR-105對(duì)膠質(zhì)瘤細(xì)胞遷移和侵襲的抑制作用,這與現(xiàn)有研究結(jié)果有所呼應(yīng)[26-27]。后續(xù)或可通過(guò)miR-105對(duì)腫瘤細(xì)胞的侵襲遷移機(jī)制進(jìn)行研究,可以提高腫瘤的臨床治療效果,延長(zhǎng)腫瘤患者的生存期。

        綜上所述,miR-105在復(fù)發(fā)腦膠質(zhì)瘤患者中呈低表達(dá),MMP-2是在復(fù)發(fā)腦膠質(zhì)瘤患者中高度表達(dá)。miR-105、MMP-2均參與膠質(zhì)瘤的侵襲、遷移和凋亡,二者對(duì)膠質(zhì)瘤術(shù)后復(fù)發(fā)的預(yù)測(cè)有一定價(jià)值,可能成為膠質(zhì)瘤的生物學(xué)標(biāo)志物。

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