辛紫媛,靳曉飛,周曉紅,趙艷萌,劉真一,張彐寧,高維娟,
(1. 承德醫(yī)學(xué)院病理生理學(xué)教研室,河北 承德 067000;2.河北中醫(yī)學(xué)院 河北省心腦血管病中醫(yī)藥防治研究重點實驗室,河北 石家莊 050091)
補陽還五湯是治療缺血性腦卒中氣虛瘀證的代表方劑,最早記載于清朝王清任著《醫(yī)林改錯·下卷·癱痿論》中,臨床療效確切,但其具體機制尚未明確[1]。腦缺血/再灌注損傷(cerebral ischemia/reperfusion injury,CIRI)是缺血性腦卒中的重要病理過程,直接影響該病的預(yù)后和轉(zhuǎn)歸,其發(fā)生機制蘊含著缺血性腦卒中的潛在治療靶點。沉默信息調(diào)節(jié)因子1(silent information regulation 1,SIRT1)是煙酰胺腺嘌呤二核苷酸(nicotinamide adenine dinucleotide,NAD+)依賴性Ⅲ類組蛋白去乙?;?,通過去乙?;M蛋白和一些非組蛋白底物參與基因調(diào)控[2]。SIRT1在神經(jīng)退行性疾病和腦卒中等疾病中發(fā)揮著重要的調(diào)節(jié)作用[3]。本研究旨在探討補陽還五湯對CIRI大鼠發(fā)揮保護作用時是否通過調(diào)節(jié)皮質(zhì)區(qū)SIRT1蛋白,以期進一步挖掘補陽還五湯治療CIRI的作用機制,為臨床治療缺血性腦卒中提供實驗依據(jù)。
1.1 實驗動物由北京維通利華實驗動物技術(shù)有限公司提供的7~8周齡健康♂ SPF級SD大鼠,體質(zhì)量(250~280) g,許可證號:SCXK(京)2016-0011,所有動物實驗嚴(yán)格依據(jù)中國實驗動物制度倫理審查委員會關(guān)于《實驗動物管理條例》的指導(dǎo)方針,于河北中醫(yī)學(xué)院動物中心適應(yīng)性喂養(yǎng)1周后進行實驗。
1.2 實驗藥物補陽還五湯購自北京同仁堂藥店,其中包括黃芪120 g、當(dāng)歸6 g、赤芍5 g、紅花3 g、地龍3 g、桃仁3 g、川芎3 g,水煎濃縮至100 mL,于4 ℃冰箱儲存?zhèn)溆茫? mL水煎液中含生藥量約為1.43 g。阿托伐他汀購自美國輝瑞制藥有限公司,國藥準(zhǔn)字H20051408。
1.3 主要試劑TTC 染液(G1017)、兔抗β-actin抗體(GB11001)、尼氏染液(G1036)均購自武漢塞維爾生物科技有限公司;兔抗SIRT1抗體(#9475)購自Cell Signaling Technology公司;鼠抗SIRT1抗體(60303)購自Proteintech公司;辣根酶標(biāo)記山羊抗兔IgG (ZB-2301)購自北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司;蛋白酶抑制劑(P8340)購自Sigma公司;QuickBlockTM免疫染色封閉液(P0260)、含DAPI抗熒光淬滅封片液(P0131)購自碧云天生物;CY3-羊抗小鼠IgG抗體(BA1031)購自武漢博士德。
1.4 主要儀器MCAO 栓線(北京西濃科技有限公司)、腦切片模具(北京西濃科技有限公司);組織包埋機(Leica)、輪轉(zhuǎn)切片機(Leica)、冰凍切片機(Leica)、顯微拍照系統(tǒng)(Leica);蛋白質(zhì)電泳及轉(zhuǎn)膜儀(Bio-Rad);Varioskan LUX 多功能酶標(biāo)儀(Thermo);FUSION FX5 Spectra多功能成像系統(tǒng)(Vilber);PeriCam PSI激光散斑血流監(jiān)測視頻系統(tǒng)(Perimed)。
1.5 動物模型的建立與實驗分組給藥健康 SD ♂ 大鼠,參照文獻[4]建立模型。模型組(MCAO/R)大鼠大腦中動脈栓塞(middle cerebral artery occlusion,MCAO)模型缺血2 h后,再灌注72 h;補陽還五湯組(BYHWT)和陽性對照藥阿托伐他汀組(Atorvastatin)于造模后,根據(jù)人鼠等效劑量換算給予大鼠劑量為補陽還五湯14.3 g·kg-1·d-1,阿托伐他汀10 mg·kg-1·d-1,術(shù)后等待大鼠完全清醒后立即灌胃給藥,每24 h給藥1次,共3次。
1.6 腦血流監(jiān)測用1%戊巴比妥鈉腹腔注射麻醉大鼠,剪開顱頂皮膚暴露前囟,均勻的將腦膜薄化,固定好探頭,在該區(qū)域不時滴加生理鹽水保持腦膜濕潤。應(yīng)用PeriCam PSI 激光散斑血流監(jiān)測視頻系統(tǒng)動態(tài)監(jiān)測大鼠缺血前、缺血中、缺血/再灌注后局部腦血流量變化,選取感興趣區(qū)域(region of interest,ROI),以ROI值代表相應(yīng)區(qū)域內(nèi)微循環(huán)血流灌注量,計算缺血側(cè)局部腦血流量占基線水平的百分比。
1.7 神經(jīng)功能學(xué)評分缺血2 h/再灌注72 h后,根據(jù) Zea Longa 5分制評分標(biāo)準(zhǔn),采用盲法觀察大鼠神經(jīng)功能學(xué)評分并記錄。評分標(biāo)準(zhǔn)為:0分,無神經(jīng)功能缺損的癥狀;1分,提尾時不能伸展對側(cè)前爪并內(nèi)旋;2分,爬行時向?qū)?cè)轉(zhuǎn)圈;3分,爬行時向?qū)?cè)傾倒;4分,不能行走或意識喪失。
1.8TTC染色測定腦梗死體積大鼠麻醉后迅速斷頭取出完整腦組織,-20 ℃冰箱中冷凍30 min,腦切片模具中制備2 mm的連續(xù)冠狀腦片,在TTC溶液中37 ℃避光浸染30 min,染色完成后放入10%中性福爾馬林固定液中固定24 h,腦組織連續(xù)冠狀切片按自后向前的順序擺放拍照,ImageJ軟件測定腦片白色缺血梗死區(qū)體積和紅色正常組織體積,計算梗死體積百分率。
1.9 尼氏染色觀察皮質(zhì)區(qū)神經(jīng)細胞形態(tài)厚度5 μm石蠟切片脫蠟至水,經(jīng)尼氏染液染色2~5 min流水水洗,0.1 %的冰醋酸分化,脫水透明,稍干燥中性樹膠封片,顯微鏡下觀察并拍照,觀察神經(jīng)細胞形態(tài),應(yīng)用ImageJ軟件計算神經(jīng)細胞數(shù)量。
1.10 Western blot檢測皮質(zhì)區(qū)SIRT1蛋白表達約60 μg提取總蛋白,按1 ∶10加入組織裂解液低溫勻漿,取上清液BCA法進行蛋白定量;按4 ∶1加入5×loading buffer后100 ℃金屬浴10 min使蛋白變性;蛋白上樣進行SDS-PAGE 凝膠電泳,并轉(zhuǎn)移到PVDF膜上;室溫下在5%脫脂奶粉中封閉2 h,TBST洗膜后;滴加一抗SIRT1抗體(1 ∶1 000)及內(nèi)參抗β-actin(1 ∶2 000)抗體,4 ℃孵育過夜,TBST洗膜后;加入二抗,室溫孵育2 h,TBST洗膜后;ECL液顯色,使用VisionCapt軟件獲取圖像并分析,以β-actin為內(nèi)參照蛋白,通過分析目的蛋白與內(nèi)參照蛋白的灰度比值,得出目的蛋白的相對表達水平。
1.11 免疫熒光染色檢測皮質(zhì)區(qū)SIRT1熒光表達厚度8 μm的冰凍切片用快速封閉液封閉15 min,滴加抗SIRT1抗體(1 ∶500) 4 ℃孵育過夜,TBST洗片;滴加CY3-羊抗小鼠IgG抗體(1 ∶100),室溫避光孵育1 h,TBST洗片;滴加含DAPI抗熒光淬滅劑封片后,避光保存并在熒光顯微鏡下觀察拍照,觀察SIRT1蛋白表達位置以及熒光表達強度。
2.1 腦血流量評價模型建立成功大鼠缺血前腦血流ROI值為基線值,插入線栓阻塞后ROI值呈現(xiàn)明顯的下降趨勢且降幅達到基線65%以上,恢復(fù)血液再灌注后ROI值明顯的上升趨勢超過80%以上,證明造模成功(Fig 1)。
2.2 各組大鼠神經(jīng)功能缺損的變化神經(jīng)功能學(xué)評分顯示,與Sham組相比,MCAO/R組大鼠神經(jīng)功能缺損程度嚴(yán)重,神經(jīng)功能評分明顯升高(P<0.05);與MCAO/R組相比,BYHWT組和Atorvastatin組大鼠神經(jīng)功能缺損程度減輕,評分明顯降低(P<0.05)(Fig 2)。
Fig 1 Cerebral blood flow monitoring
Fig 2 Neurological deficit score of rats in each group n=9)
2.3 各組大鼠腦梗死體積變化TTC染色顯示,與Sham組相比,MCAO/R組左側(cè)大鼠腦組織出現(xiàn)明顯白色梗死灶(P<0.05);與MCAO/R組相比,BYHWT組和Atorvastatin組大鼠腦梗死體積明顯減小(P<0.05)(Fig 3)。
2.4 各組大鼠皮質(zhì)區(qū)神經(jīng)細胞損傷的變化尼氏染色顯示,Sham組大鼠神經(jīng)細胞排列整齊、緊密,胞核清晰,尼氏體大、呈深藍色,神經(jīng)細胞數(shù)量豐富。與Sham組相比,MCAO/R組細胞損傷嚴(yán)重、排列不規(guī)整,細胞核碎裂、溶解呈空泡狀,尼氏體顏色變淺、解體甚至消失,部分神經(jīng)細胞丟失、數(shù)量明顯減少(P<0.05);與MCAO/R組相比,BYHWT組和Atorvastatin組細胞損傷均有所改善、形態(tài)較完整、排列較整齊,尼氏體又重新出現(xiàn),完整神經(jīng)細胞數(shù)量增多(P<0.05)(Fig 4)。
2.5 各組大鼠皮質(zhì)區(qū) SIRT1 蛋白表達的變化Western blot檢測顯示,與Sham組相比,MCAO/R組SIRT1蛋白表達下降(P<0.05);與MCAO/R組相比,BYHWT組和Atorvastatin組可明顯提升SIRT1蛋白表達強度(P<0.05)(Fig 5)。
2.6 各組大鼠皮質(zhì)區(qū) SIRT1 熒光表達的變化免疫熒光檢測顯示,細胞核為藍色熒光標(biāo)記,SIRT1為紅色熒光標(biāo)記,藍色熒光與紅色熒光部分重合,紅色熒光也可在藍色熒光周圍顯示,提示SIRT1在缺血側(cè)腦組織細胞核和細胞質(zhì)中均有表達。缺血2 h/再灌注72 h后,與Sham組相比,MCAO/R組紅色熒光減少提示 SIRT1 表達下降,BYHWT和Atorvastatin組紅色熒光增強,提示可提升SIRT1表達(Fig 6)。
Fig 3 Cerebral infarction volume of rats in each group n=3)
腦卒中是嚴(yán)重威脅人類生命健康的常見疾病之一,主要是由于高血壓、吸煙、糖尿病、血脂異常、不良飲食、缺乏運動和肥胖等不良因素誘發(fā),大約80%的腦卒中與缺血性腦卒中有關(guān)[5]。缺血性腦卒中可導(dǎo)致嚴(yán)重的腦功能障礙,具有較高的發(fā)病率、致殘率、復(fù)發(fā)率和死亡率,嚴(yán)重影響患者的生活質(zhì)量[6]。臨床上主要通過溶栓和栓子切除術(shù)快速重建血液循環(huán),成功地恢復(fù)血液灌注后進一步加重損傷,導(dǎo)致 CIRI[7]。 CIRI 涉及一系列復(fù)雜的病理生理過程,現(xiàn)代醫(yī)學(xué)研究發(fā)現(xiàn)能量衰竭、興奮性氨基酸毒性、神經(jīng)炎癥、神經(jīng)細胞凋亡和氧化應(yīng)激等多個環(huán)節(jié)參與該進程[8]。治療急性缺血性腦卒中的關(guān)鍵是拯救圍繞在缺血性核心梗死區(qū)周圍的皮質(zhì)缺血半暗帶缺血腦組織,該區(qū)域沒有遭受不可逆損傷且可以恢復(fù)[9]。探索CIRI的致病機理和作用靶點對腦卒中的發(fā)生、發(fā)展以及預(yù)后都發(fā)揮著重要的作用。
Fig 4 Morphological changes of cortical nerve cells in each group n=3)
Fig 5 SIRT1 protein expression in cortical area of rats in each group n=3)
翻譯后修飾在基因表達調(diào)控中發(fā)揮重要作用,sirtuins是NAD+依賴性蛋白脫乙酰酶,隨著近年來對組蛋白基因修飾的深入研究,已經(jīng)證明了組蛋白去乙?;c神經(jīng)系統(tǒng)疾病密切相關(guān)[10]。1999年SIRT1在人類中被首次發(fā)現(xiàn),是sirtuins蛋白家族中第一個被發(fā)現(xiàn)的成員,位于染色體10 q,在人類細菌中高度保守[11]??啥ㄎ挥诩毎撕图毎|(zhì),在細胞質(zhì)中它促進了細胞核與細胞質(zhì)的穿梭,通過多種信號和生存途徑參與機體調(diào)控[12]。腦組織缺血缺氧后,SIRT1作為能量調(diào)節(jié)的樞紐,利用輔酶NAD+去乙?;械鞍?,不僅在調(diào)節(jié)神經(jīng)細胞能量代謝方面發(fā)揮重要作用,而且在抗氧化應(yīng)激、減輕炎癥、抗細胞凋亡等方面也發(fā)揮著減輕腦組織缺血后再灌注損傷的作用[13]。
腦卒中在中醫(yī)被稱之為中風(fēng),《內(nèi)經(jīng)》謂其“風(fēng)性善行而數(shù)變”,以吐沫身直、口噤筋急、舌強而不能言、手足不遂為主要病證,起病之急、發(fā)展之迅速[14]。經(jīng)典名方補陽還五湯主治證為氣虛血滯,脈絡(luò)瘀阻所致中風(fēng),7種單味藥黃芪、當(dāng)歸、赤芍、地龍、川芎、紅花和桃仁諸藥合用,共奏補氣活血通絡(luò)之功效,全方具有氣旺則血行,活血不傷正的配伍特點[15]。已有研究表明,通過建立腦微血管內(nèi)皮細胞氧糖剝奪再灌注損傷模型,發(fā)現(xiàn)補陽還五湯含藥血清對腦微血管內(nèi)皮細胞氧糖剝奪再灌注誘導(dǎo)的氧化應(yīng)激損傷的保護作用可能是通過調(diào)節(jié)SIRT1實現(xiàn)的[16]。補陽還五湯含藥血清可上調(diào)SIRT1表達,下調(diào)基質(zhì)金屬蛋白酶2表達,進而防止人血管平滑肌細胞的年齡相關(guān)遷移和侵襲[17]。補陽還五湯可靶向調(diào)節(jié)海馬區(qū)SIRT1 / VEGF通路促進CIRI后血管新生[18]。
本研究建立MCAO大鼠模型缺血2 h/再灌注72 h,我們觀察到大鼠出現(xiàn)大面積腦梗死,伴隨明顯的皮質(zhì)神經(jīng)細胞損傷,經(jīng)補陽還五湯治療后組織損傷明顯改善,觀察到皮質(zhì)SIRT1蛋白的表達明顯升高,提示補陽還五湯可能通過激活皮質(zhì)區(qū)SIRT1靶點進而發(fā)揮保護作用,其中補陽還五湯在CIRI中調(diào)節(jié)SIRT1的具體作用機制是我們課題組進一步探討的方向。
Fig 6 SIRT1 fluorescence in cortical area of rats in each group (IF,×400)
Blue represented DAPI positive signal; red represented SIRT1 positive signal.