盧 錕,仲嘉玥,張 慧,劉 洋,王 森,楊 奧,李 澤
(1.中南林業(yè)科技大學(xué) a.經(jīng)濟(jì)林培育與保護(hù)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室;b.食品與工程學(xué)院;c.湖南省“一帶一路”熱帶干旱經(jīng)濟(jì)林國(guó)際聯(lián)合研究中心,湖南 長(zhǎng)沙 410004;2.通道南楚農(nóng)業(yè)開(kāi)發(fā)有限公司,湖南 懷化 418500)
黑老虎Kadsura coccinea是木蘭科Magnoliaceae南五味子屬Kadsura的常綠藤本植物,別名布福娜、冷飯團(tuán)、臭飯團(tuán)、酒飯團(tuán)等,廣泛分布于我國(guó)廣東、廣西、海南、江西、浙江、福建、湖南、貴州、四川、云南等?。▍^(qū))[1-2]。黑老虎是一種集食用價(jià)值、藥用價(jià)值、綠化價(jià)值、觀賞價(jià)值于一體的極具開(kāi)發(fā)潛力的多用途新型果樹(shù)。就藥用價(jià)值來(lái)說(shuō),其根、莖、葉中含有綠原酸、咖啡酸、阿魏酸、沒(méi)食子酸等具有重要藥理活性的化合物[3]。在黑老虎根、莖、葉這3 個(gè)器官中含有不同濃度的精油,精油中共含有116 種揮發(fā)性成分,這些成分可用于治療皮膚炎癥[4]。黑老虎種子和果皮的提取液具有抑制酪氨酸酶活性的功效,可作為美容產(chǎn)品中活性成分的重要來(lái)源[5]。除此之外,黑老虎還具有明顯的抗腫瘤、抗HIV、抗炎、保肝、抗氧化等作用[6-7]。鑒于黑老虎的應(yīng)用價(jià)值極高,有研究人員對(duì)其進(jìn)行了深入研究,開(kāi)發(fā)了黑老虎SSR 標(biāo)記,可為其群體遺傳學(xué)研究以及種質(zhì)資源收集、保存、評(píng)價(jià)以及良種選育提供依據(jù)[8]。目前,低產(chǎn)低效嚴(yán)重制約了黑老虎產(chǎn)業(yè)的發(fā)展,主要原因之一就是無(wú)性繁殖技術(shù)不成熟,良種化程度低。黑老虎苗木主要是實(shí)生苗,不能保持母本的優(yōu)良性狀,子代生長(zhǎng)性狀良莠不齊,不利于其規(guī)?;绾彤a(chǎn)業(yè)化生產(chǎn)[9-10]。前人對(duì)黑老虎無(wú)性繁殖扦插及嫁接技術(shù)進(jìn)行了相關(guān)研究,黑老虎扦插后苗木根系較弱,生根率僅為(75.99±0.30)%,扦插育苗技術(shù)不成熟[11-12];黑老虎嫁接技術(shù)也是一個(gè)重要的研究?jī)?nèi)容,黑老虎傷口處容易產(chǎn)生大量的黏液,影響嫁接成活,黑老虎嫁接成活率為80%[13]。此外,扦插和嫁接繁殖受季節(jié)限制,尚不能滿足黑老虎產(chǎn)業(yè)發(fā)展的要求。
組織培養(yǎng)具有繁殖速度快,不受季節(jié)限制及可培養(yǎng)脫毒苗等優(yōu)點(diǎn),是快速繁殖優(yōu)良植物品種的一條重要途徑,具有廣闊的商業(yè)化前景[14-15]。組織培養(yǎng)技術(shù)還可應(yīng)用于種質(zhì)保存、體細(xì)胞無(wú)性變異和突變體篩選、次生代謝物的生產(chǎn)以及林木育種等[16]。植物組織培養(yǎng)技術(shù)不受材料種類(lèi)限制,可利用種子、葉片、帶芽莖段等多種組織器官作為外植體進(jìn)行誘導(dǎo)培養(yǎng)。孫艷艷等[17]以‘玲瓏’楓香葉片為外植體進(jìn)行組織培養(yǎng)研究,最終初步建立了‘玲瓏’楓香葉片愈傷組織增殖培養(yǎng)和不定芽誘導(dǎo)體系。因此,利用植物組培技術(shù)培育黑老虎脫毒苗,有利于黑老虎品質(zhì)的提高及產(chǎn)業(yè)的快速發(fā)展[18]。目前,關(guān)于通過(guò)組織培養(yǎng)獲得黑老虎無(wú)菌苗的研究報(bào)道較少。梁忠厚[19]研制了適合誘導(dǎo)黑老虎直接胚體發(fā)生和植株再生的培養(yǎng)基,并詳細(xì)報(bào)道了培養(yǎng)基的配制方法;韋榮昌等[20]報(bào)道了將黑老虎莖尖頂端幼嫩葉片培育成完整植株的方法。但是,目前黑老虎帶芽莖段組織培養(yǎng)技術(shù)體系尚不完善,不利于后期進(jìn)行工廠化育苗。本研究中主要以黑老虎帶芽莖段為外植體,通過(guò)改變外植體消毒處理方式、植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑的種類(lèi)及濃度配比,研究培養(yǎng)黑老虎無(wú)菌苗的適宜條件,旨在為黑老虎的工廠化育苗提供參考依據(jù)。
黑老虎帶芽莖段采自通道縣芋頭村(109°47′13.40″E,26°9′49.87″N)。2018年3月,將大田栽培的3年生黑老虎大苗移栽到高30 cm、直徑25 cm 的塑料盆中,剪掉地上部分的莖段和葉片,在中南林業(yè)科技大學(xué)樹(shù)木樓實(shí)驗(yàn)室樓頂溫室內(nèi)培養(yǎng)。正常水肥管理3 ~5 個(gè)月后,用再次萌發(fā)的半木質(zhì)化帶芽莖段作為試驗(yàn)材料。
1.2.1 外植體取樣及前期處理
在晴天上午,選取生長(zhǎng)健壯的半木質(zhì)化黑老虎帶芽莖段帶回實(shí)驗(yàn)室。剪去葉片后,切成3 ~4 cm 長(zhǎng)的莖段,每莖段帶1 個(gè)腋芽。將帶芽莖段放在三角瓶中用自來(lái)水沖洗1 ~2 遍,放入洗潔精沖洗1 ~2 遍,再用流水反復(fù)沖洗60 min,最后用無(wú)菌水清洗3 ~5 次,以免莖段分泌的大量黏液影響正常的消毒處理。
1.2.2 外植體材料消毒
分別以溫室盆栽和大田培養(yǎng)的黑老虎植株的帶芽莖段為外植體,在無(wú)菌條件下用75%的酒精溶液、5%的次氯酸鈉溶液、0.1%的升汞溶液對(duì)黑老虎帶芽莖段進(jìn)行消毒處理,75%酒精溶液的消毒時(shí)長(zhǎng)分別設(shè)置為1.5、2.0、3.0 min,5%次氯酸鈉溶液的消毒時(shí)長(zhǎng)分別設(shè)置為0、23、25 min,0.1%升汞溶液的消毒時(shí)長(zhǎng)分別設(shè)置為0、30、35、40、45、50 min。消毒過(guò)程中用鑷子在燒杯中不斷攪動(dòng),消毒完成后用無(wú)菌水沖洗5 ~6 遍。在培養(yǎng)皿中用無(wú)菌濾紙吸干莖段表面的水分,用小刀切掉莖段兩端褐化的部分,將帶芽莖段接種到培養(yǎng)基中進(jìn)行培養(yǎng),25 d 后統(tǒng)計(jì)污染率及褐化率。
1.2.3 外植體培養(yǎng)
初始腋芽誘導(dǎo)培養(yǎng)以1/2MS 為基本培養(yǎng)基,其中含蔗糖30 g/L,瓊脂7 g/L,培養(yǎng)基pH 為5.5 ~5.8。在無(wú)菌條件下,將經(jīng)消毒的外植體接種到含6-BA(0、1.0、2.0 和3.0 mg/L)、IAA(0、0.1、0.2、0.5 和1.0 mg/L)、GA3(0、1.0 和2.0 mg/L)的培養(yǎng)基中誘導(dǎo)腋芽,培養(yǎng)溫度為(26±1) ℃。暗培養(yǎng)5 d 后轉(zhuǎn)到光照條件下培養(yǎng),光照強(qiáng)度為2 100 ~2 200 lx,光照12 ~14 h/d。25 d 后統(tǒng)計(jì)腋芽的誘導(dǎo)率及生長(zhǎng)情況。
繼代增殖培養(yǎng)以1/2MS 為基本培養(yǎng)基,其中含蔗糖30 g/L,瓊脂7 g/L,培養(yǎng)基pH 為5.5 ~5.8。在無(wú)菌條件下,將經(jīng)初代培養(yǎng)獲得的腋芽切下,接種到加入不同植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑ZT(0、1.0 和2.0 mg/L)、IAA(0、0.1 和0.2 mg/L)、2-iP(0、1.0和2.0 mg/L)、IBA(0、0.1 和0.5 mg/L)、6-BA(0、1.0、2.0 和3.0 mg/L)的培養(yǎng)基中進(jìn)行腋芽的增殖培養(yǎng),培養(yǎng)溫度為(26±1) ℃。暗培養(yǎng)2 d 后轉(zhuǎn)到光照條件下培養(yǎng),光照強(qiáng)度為2 100 ~2 200 lx,光照12 ~14 h/d。30 d 后統(tǒng)計(jì)增殖系數(shù)。增殖系數(shù)為增殖后芽總數(shù)量與接種時(shí)芽總數(shù)量的比值。
使用SPSS 17.0 軟件進(jìn)行方差分析和多重比較分析(Duncan 氏法)。
不同消毒處理對(duì)大田栽培黑老虎帶芽莖段的消毒效果見(jiàn)表1。由表1可知,大田直接采回的黑老虎帶芽莖段難以誘導(dǎo)出腋芽,腋芽成活率均為0。消毒時(shí)長(zhǎng)超過(guò)50 min,腋芽全部褐化死亡(圖1A),褐化后也會(huì)出現(xiàn)污染現(xiàn)象(圖1B);消毒時(shí)長(zhǎng)少于40 min,莖段容易被污染(圖1C)。即使是培養(yǎng)30 d 后,已長(zhǎng)大腋芽的基部仍會(huì)長(zhǎng)出大量菌絲(圖1D),1 周后培養(yǎng)基完全被污染。說(shuō)明通過(guò)以上消毒方式無(wú)法解決大田黑老虎帶芽莖段難消毒的問(wèn)題。
圖1 組織培養(yǎng)過(guò)程中黑老虎莖段的污染狀況Fig.1 Contamination of the stem segment with bud of K.coccinea during tissue culture
表1 不同消毒處理對(duì)黑老虎莖段的消毒效果?Table 1 Disinfection effects of different disinfection treatments on the stem segment with bud of K.coccinea
不同消毒處理對(duì)溫室盆栽黑老虎莖段的消毒效果見(jiàn)表1。由表1可知,黑老虎帶芽莖段的污染率得到了明顯控制,并且腋芽誘導(dǎo)成活率明顯提高。由此可見(jiàn),溫室盆栽黑老虎帶芽莖段帶菌少,各消毒處理的效果明顯,普遍比大田栽培帶芽莖段的消毒效果好。其中,使用75%酒精消毒2 min+0.1%升汞消毒45 min 處理的外植體污染率和褐化率最低,污染率為18.5%,褐化率為21.7%。
將消毒后的黑老虎帶芽莖段接種到初代培養(yǎng)基中進(jìn)行腋芽誘導(dǎo)培養(yǎng),各培養(yǎng)基中腋芽的生長(zhǎng)情況見(jiàn)表2和圖2。
圖2 初代培養(yǎng)中黑老虎莖段腋芽生長(zhǎng)情況Fig.2 Growth of axillary buds in stem segment of K.coccinea in primary culture
表2 不同植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑對(duì)黑老虎莖段初代培養(yǎng)的影響?Table 2 Effects of different plant growth regulators on primary culture of the stem segment with bud of K.coccinea
由表2可知:培養(yǎng)基中僅加入IAA 或GA3時(shí),腋芽長(zhǎng)勢(shì)弱;加入6-BA 和IAA 時(shí),腋芽的生長(zhǎng)狀況隨著6-BA 濃度的變化而變化,當(dāng)6-BA質(zhì)量濃度為2.0 mg/L 時(shí),腋芽的生長(zhǎng)狀況較好。所以最終確定黑老虎帶芽莖段的初代培養(yǎng)基為1/2 MS+2.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L IAA,誘導(dǎo)率可達(dá)46.2%,且初代培養(yǎng)中增殖系數(shù)達(dá)8.0 以上。
將經(jīng)初代培養(yǎng)獲得的腋芽切下,接種添加ZT、IAA、2ip 或添加IBA、6-BA 的1/2 MS 培養(yǎng)基上,進(jìn)行腋芽的增殖培養(yǎng),增殖結(jié)果見(jiàn)表3。由表3可知:ZT、IAA 和2ip 組合的處理中增殖系數(shù)均不高,腋芽的增殖效果并不明顯;在添加IBA、6-BA 的處理中,腋芽的增殖系數(shù)較高,生長(zhǎng)狀況較好。因此適宜黑老虎腋芽增殖培養(yǎng)的培養(yǎng)基為1/2 MS+3.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L IBA,最高增殖系數(shù)可達(dá)8.5。繼代培養(yǎng)中黑老虎莖段腋芽增殖情況如圖3所示。
圖3 繼代培養(yǎng)中黑老虎莖段腋芽增殖情況Fig.3 Proliferation of axillary buds in stem segments of K.coccinea in subculture
表3 不同植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑對(duì)黑老虎莖段繼代培養(yǎng)的影響?Table 3 Effects of different plant growth regulators on subculture of the stem segment with bud of K.coccinea
對(duì)采集的大田和溫室盆栽黑老虎帶芽莖段進(jìn)行消毒處理,對(duì)比兩者的污染率、褐化率及腋芽誘導(dǎo)率,結(jié)果表明溫室盆栽黑老虎帶芽莖段的消毒效果優(yōu)于大田黑老虎,因此,以黑老虎帶芽莖段為外植體進(jìn)行組織培養(yǎng)時(shí),優(yōu)選室內(nèi)培養(yǎng)的植株進(jìn)行采樣。以溫室盆栽黑老虎的帶芽莖段為外植體時(shí),75%酒精消毒2 min,再用0.1%升汞消毒45 min 處理的污染率和褐化率最低,此時(shí)污染率為18.5%,褐化率為21.7%。將消毒后的帶芽莖段接種到初代培養(yǎng)基中進(jìn)行腋芽誘導(dǎo)培養(yǎng),得到的最佳培養(yǎng)基為1/2 MS+2.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L IAA,誘導(dǎo)率可達(dá)46.2%,且增殖系數(shù)能達(dá)8.0 以上。將經(jīng)初代培養(yǎng)誘導(dǎo)出的腋芽從基部切下后接種到繼代增殖培養(yǎng)基中,得到的最佳培養(yǎng)基為1/2 MS+3.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L IBA,最高增殖系數(shù)可達(dá)8.5。
無(wú)性繁殖技術(shù)的發(fā)展解決了傳統(tǒng)人工栽培育種中存在的諸多問(wèn)題,如周期長(zhǎng)、繁殖系數(shù)不高等,為植物種質(zhì)資源的保存及開(kāi)發(fā)利用提供了新途徑[21]。目前,常用的無(wú)性繁殖技術(shù)包括嫁接、扦插、組織培養(yǎng)等[22]。本文中主要以建立黑老虎帶芽莖段的組織培養(yǎng)技術(shù)體系為目的,選取了生長(zhǎng)健壯、腋芽飽滿的黑老虎帶芽莖段作為外植體,從消毒、初代腋芽誘導(dǎo)培養(yǎng)、繼代增殖培養(yǎng)3 個(gè)方面進(jìn)行了研究。
黑老虎帶芽莖段組織培養(yǎng)技術(shù)體系建立過(guò)程中面臨的最大難題是外植體的消毒。不徹底的消毒容易造成污染,獲得無(wú)菌苗的可能性較小,過(guò)度消毒則使外植體褐化。該問(wèn)題嚴(yán)重限制了黑老虎無(wú)性繁殖脫毒苗的生產(chǎn),嚴(yán)重阻礙了黑老虎遺傳轉(zhuǎn)化體系的發(fā)展。造成黑老虎帶芽莖段污染的原因較多,可分為內(nèi)部因素與外部因素。內(nèi)部因素是黑老虎的內(nèi)生菌難以消除,外部因素主要為與外界接觸過(guò)程中植株附著的細(xì)菌和真菌過(guò)多。本研究中選用大田黑老虎的帶芽莖段為外植體進(jìn)行消毒,結(jié)果表明即使帶芽莖段已消毒超過(guò)50 min 且發(fā)生褐化,但無(wú)法徹底消毒,培養(yǎng)過(guò)程中仍被污染。為解決該問(wèn)題,將2 ~3年生的大田黑老虎苗剪掉地上部分后移栽到花盆中,在溫室內(nèi)培養(yǎng),待植株長(zhǎng)出新梢后,采集帶飽滿芽的半木質(zhì)化莖段作為外植體,使用75%酒精、0.1%升汞和5%次氯酸鈉進(jìn)行消毒,結(jié)果表明在溫室盆栽植株上采樣可顯著降低初代培養(yǎng)的污染率,成功獲得了黑老虎無(wú)菌芽,基本控制了黑老虎帶芽莖段初代培養(yǎng)的污染率。在黑老虎帶芽莖段的消毒過(guò)程中,消毒時(shí)長(zhǎng)尤為重要,既要控制污染率,又要控制褐化率。張赫巖等[23]以重瓣榆葉梅的莖段為外植體,使用75%酒精、0.1%升汞和5%次氯酸鈉進(jìn)行消毒,結(jié)果表明消毒時(shí)長(zhǎng)過(guò)多和過(guò)少均會(huì)影響莖段的存活率,與本研究結(jié)果基本一致。在本研究中發(fā)現(xiàn):升汞消毒時(shí)長(zhǎng)超過(guò)50 min 會(huì)導(dǎo)致莖段褐化嚴(yán)重,莖段成活率低;升汞消毒時(shí)長(zhǎng)少于40 min 則污染率較高。另外,黑老虎帶芽莖段傷口處會(huì)分泌出大量黏液,酒精對(duì)黏液的清理效果較為顯著,升汞對(duì)黑老虎外植體褐化的影響遠(yuǎn)小于酒精,因此最終采用酒精較短消毒時(shí)長(zhǎng)、升汞較長(zhǎng)消毒時(shí)長(zhǎng)聯(lián)合處理外植體的方法,雖然該方法耗時(shí)較長(zhǎng),但是其平衡污染率和褐化率的效果較好。
在進(jìn)行腋芽誘導(dǎo)時(shí),6-BA 和IAA 聯(lián)合使用的效果明顯優(yōu)于GA3,在培養(yǎng)基添加GA3的處理中誘導(dǎo)率低且腋芽長(zhǎng)勢(shì)較差,但在3.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L IAA 處理中得到了生長(zhǎng)旺盛的腋芽,可用于后續(xù)的繼代增殖培養(yǎng)。在繼代增殖培養(yǎng)中,3.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L IBA 處理的增殖系數(shù)最高,效果明顯優(yōu)于ZT、IAA、2ip 聯(lián)合使用。
本研究中篩選出了能使帶芽莖段穩(wěn)定萌發(fā)的培養(yǎng)基,培育出了生長(zhǎng)健壯的無(wú)菌苗,但無(wú)菌苗生根率較低,長(zhǎng)出的根系較弱,無(wú)法進(jìn)行煉苗移栽。因此,后續(xù)將進(jìn)一步篩選促進(jìn)黑老虎無(wú)菌苗根系發(fā)育的培養(yǎng)基配方。