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        芝麻素干預(yù)H9c2細胞缺氧/復氧損傷的機制

        2022-12-02 14:40:22胡子恒趙明君馬淑慧
        中成藥 2022年7期
        關(guān)鍵詞:模型

        胡子恒, 趙明君, 董 靜, 趙 運, 陳 凱, 馬淑慧, 王 瓊*

        (1.陜西中醫(yī)藥大學附屬醫(yī)院心內(nèi)科,陜西 咸陽 712000;2.陜西中醫(yī)藥大學第二附屬醫(yī)院心內(nèi)科,陜西 咸陽 712000)

        心血管疾病是人類健康的重大威脅,位于世界衛(wèi)生組織公布的死亡原因前列[1]。在對心臟治療的過程中,手術(shù)干預(yù)往往導致另一種不可避免的損傷,稱為心肌缺血再灌注損傷,主要特征為心肌細胞凋亡,因其機制復雜而難以預(yù)防,尚無標準的預(yù)防與治療方法[2]。心肌缺血再灌注損傷的研究集中于心肌細胞凋亡和壞死途徑,心肌細胞凋亡是其早期的一個重要生理特征,當心肌缺血缺氧損傷嚴重時,機體清除氧自由基的能力下降,導致機體脂質(zhì)過氧化程度加重[3-4]。細胞自噬也是一種細胞死亡途徑,當心肌細胞因缺血再灌注刺激后,自噬平衡被打破,導致自噬水平異常增加,可能是加重心肌缺血再灌注損傷的一個關(guān)鍵因素[5]。

        芝麻素是從芝麻中提取出來的一種木脂類有效活性成分,具有降血壓、降血脂,抗氧化等作用[6-7]。PI3K/Akt/mTOR作為一條調(diào)控細胞凋亡與自噬的經(jīng)典信號通路,在心肌損傷中起著關(guān)鍵作用[8]。目前尚未發(fā)現(xiàn)芝麻素用于預(yù)防與治療心肌缺血再灌注損傷的研究。因此,本實驗采用體外細胞模型研究芝麻素是否通過PI3K/Akt/mTOR通路發(fā)揮抗心肌缺血再灌注損傷的效果,以期為臨床用藥提供方向。

        1 材料與方法

        1.1 細胞 大鼠心肌細胞H9c2購自中國科學院典型培養(yǎng)物保藏委員會細胞庫。

        1.2 試劑與藥物 芝麻素(批號028M4099V,純度≥98%)購自德國默克公司。Cell Counting Kit-8(CCK-8)(批號20200717)、蛋白質(zhì)定量試劑盒(BCA法)(批號20200828)、超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)(批號20200925)、丙二醛(malondialdehyde,MDA)(批號20200925)、乳酸脫氫酶(lactate dehydrogenase,LDH)(批號20200909)試劑盒均購自南京建成生物工程研究所;AnnexinV APC細胞凋亡檢測試劑盒(貨號62700-80)購自美國PeproTech公司;磷脂酰肌醇3-激酶(phosphatidylinositol 3-kinase,PI3K)(貨號4249)、蛋白激酶B(protein kinase B,Akt)(貨號4685)、哺乳動物雷帕霉素靶蛋白(mammalian target of rapamycin,mTOR)(貨號2983)、微管相關(guān)蛋白B-輕鏈3(MAP1LC3,LC3B)(含LC3BⅠ、LC3BⅡ)(貨號43566)和β肌動蛋白(β-actin)(貨號8457)均購自美國Cell Signaling Technology公司。

        1.3 儀器 CytationTMC10全自動酶標儀(美國BioTek公司);XSP-8CA顯微鏡(上海光學儀器廠);蛋白質(zhì)電泳儀、多功能凝膠成像儀(美國Bio-Rad公司);JEM-1400PLUS電子顯微鏡(日本電子株式會社)。

        1.4 細胞培養(yǎng) 將復蘇的H9c2細胞培養(yǎng)于完全培養(yǎng)基(DMEM低糖培養(yǎng)基+10% FBS+0.5%青鏈霉素)中,在37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中連續(xù)培養(yǎng),細胞密度為1×105/mL,當細胞融合度達80%~90%時,用0.25%胰酶-EDTA進行消化,按1∶2比例進行傳代,每隔2~3 d 1次。

        1.5 芝麻素濃度篩選 將對數(shù)生長期的H9c2細胞以每孔1×103個的密度接種到96孔細胞培養(yǎng)板,培養(yǎng)至貼壁,將細胞分成6組,分別加入含不同濃度芝麻素(0、5、10、20、40、80 μmol/L)的培養(yǎng)基,在37 ℃,5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h。每孔加入10 μL CCK-8試劑,在培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)2 h,使用酶標儀檢測450 nm波長處的吸光度(A)值,另設(shè)空白孔調(diào)零,以0 μmol/L芝麻素細胞孔的A值為對照值,計算細胞增殖率,實驗重復3次。

        1.6 細胞分組及缺氧/復氧模型的建立 將對數(shù)生長期的H9c2細胞以每孔1×103個的密度接種到96孔細胞培養(yǎng)板,培養(yǎng)至貼壁,將細胞分為正常組、模型組、芝麻素組(20 μmol/L)。正常組與模型組造模前不作處理,芝麻素組造模前用含芝麻素的完全培養(yǎng)基預(yù)處理2 h。細胞培養(yǎng)24 h后,模型組與芝麻素組更換無血清培養(yǎng)基,在37 ℃、95% N2、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)3 h(缺氧),更換完全培養(yǎng)基后在37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)3 h(復氧);正常組細胞在37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)6 h。造模完成后按“1.5”項下CCK-8法檢測細胞增殖率。

        1.7 流式細胞術(shù)檢測細胞凋亡率 將處于對數(shù)生長期的H9c2細胞使用DMEM培養(yǎng)基制成密度為1×105/mL的細胞懸液,接種到6孔板中,37 ℃培養(yǎng)過夜,按“1.6”項下方法進行分組、造模及給藥,收集細胞制作細胞懸液,按照AnnexinV APC細胞凋亡檢測試劑盒說明書操作,通過流式細胞儀檢測細胞凋亡率。

        1.8 透射電鏡觀察細胞自噬體形成情況 細胞按“1.6”項下方法進行分組、造模及給藥,用不含EDTA的0.25%胰蛋白酶消化,1 500 r/min離心10 min收集細胞,3%戊二醛在4 ℃下固定4 h,1%四氧化鋨在室溫下固定1 h,再依次采用乙醇、乙醇丙酮、丙酮進行梯度脫水,梯度樹脂滲透后進行包埋,固化切片,雙染色法(3%醋酸鈾-枸櫞酸鉛)染色后在透射電子顯微鏡下觀察。

        1.9 細胞上清液中SOD、LDH活性及MDA水平的檢測 細胞按照“1.6”項下方法進行分組、造模及給藥,收集細胞上清液,3 000 r/min離心10 min,取上清液備用,按試劑盒說明書檢測SOD、LDH活性及MDA水平。

        1.10 Western blot檢測細胞中PI3K、Akt、mTOR和LC3B蛋白表達 將處于對數(shù)生長期的H9c2細胞使用DMEM培養(yǎng)基制成密度為1×105/mL的細胞懸液,接種到6孔板中,37 ℃培養(yǎng)過夜,按“1.6”項下方法進行分組、造模及給藥,用預(yù)冷PBS清洗后加入細胞裂解液,在冰上裂解30 min,細胞刮收集細胞后12 000 r/min離心10 min,收集上清液,使用BCA試劑盒檢測蛋白濃度,加入4×上樣緩沖液在97 ℃下金屬浴加熱10 min,按30 μg蛋白上樣量進行凝膠電泳,轉(zhuǎn)膜,5%脫脂牛奶室溫封閉2 h,4 ℃過夜孵育一抗[PI3K(1∶800)、Akt(1∶600)、mTOR(1∶1 000)、LC3B(1∶1 000)、β-actin(1∶1 200)],TBST漂洗3次,室溫孵育二抗2 h,TBST漂洗3次,使用ECL試劑盒進行顯影,在凝膠成像系統(tǒng)中對條帶進行曝光分析拍照,以β-actin作為蛋白內(nèi)參計算目的蛋白相對表達。

        2 結(jié)果

        2.1 不同濃度芝麻素對正常H9c2細胞增殖的影響 如表1所示,20 μmol/L芝麻素對正常H9c2細胞增殖沒有抑制作用(P>0.05),40、80 μmol/L芝麻素均對正常H9c2細胞有不同程度的抑制作用(P<0.01),因此選擇20 μmol/L作為給藥濃度。

        表1 不同濃度芝麻素對H9c2細胞增殖率的影響

        2.2 芝麻素對H9c2細胞缺氧/復氧模型增殖及凋亡的影響 如表2、圖1所示,與正常組比較,模型組細胞增殖率降低,細胞凋亡率升高(P<0.01);與模型組比較,芝麻素組細胞增殖率升高,細胞凋亡率降低(P<0.01)。

        表2 各組細胞的增殖率及凋亡率

        2.3 芝麻素對H9c2細胞缺氧/復氧模型氧化應(yīng)激平衡的影響 如表3所示,與正常組比較,模型組細胞上清液中SOD活性降低,MDA水平及LDH活性升高(P<0.01);與模型組比較,芝麻素組細胞上清液中SOD活性升高,MDA水平及LDH活性降低(P<0.01)。

        表3 各組細胞上清液中氧化應(yīng)激指標的變化

        2.4 芝麻素對H9c2細胞缺氧/復氧模型自噬及PI3K、Akt、mTOR、LC3B蛋白表達的影響 如表4、圖2~3所示,與正常組比較,模型組細胞中PI3K、Akt、mTOR、LC3BⅠ蛋白表達降低,LC3BⅡ蛋白表達升高(P<0.01),細胞中自噬體及自噬水平增加;與模型組比較,芝麻素組細胞中PI3K、Akt、mTOR、LC3BⅠ蛋白表達升高,LC3BⅡ蛋白表達降低(P<0.01),自噬體及自噬水平減少。

        表4 各組細胞中PI3K、Akt、mTOR、LC3B蛋白表達

        3 討論

        心肌細胞缺氧/復氧模型可以模擬心肌組織經(jīng)歷缺血再灌注的階段,有利于藥物藥效的驗證與治療手段的開發(fā)[9]。自噬在早期缺血階段顯現(xiàn)為保護作用[10],在缺血再灌注階段,自噬會加速損傷心肌細胞細胞器的降解與再利用[11]。芝麻素已被證明在癌細胞中具有調(diào)節(jié)細胞自噬的作用[12],但對心肌細胞是否具有類似效果還需驗證。

        心肌缺血再灌注損傷損傷會導致細胞膜通透性增加,血清中LDH活性高低可反映細胞受損程度[13],還會導致細胞內(nèi)氧化應(yīng)激平衡被打破,發(fā)生脂質(zhì)過氧化現(xiàn)象[14],其中SOD活性與MDA水平均可作為機體氧化應(yīng)激平衡的評價指標[15]。芝麻素預(yù)處理的H9c2細胞在經(jīng)過缺氧/復氧處理后,細胞中LDH活性與MDA水平較模型組降低,SOD活性升高,與相關(guān)研究結(jié)果基本一致[16],說明芝麻素預(yù)處理能有效調(diào)節(jié)氧化應(yīng)激失衡,減少心肌細胞的損傷,提高細胞增殖率,降低細胞凋亡率,從而減少心肌缺血再灌注損傷。趙夢秋等[17]利用芝麻素作用于缺血再灌注大鼠后發(fā)現(xiàn),大鼠的抗氧化能力增強,心肌組織損傷減少,結(jié)合本實驗的細胞結(jié)果推測,芝麻素可以通過增強細胞抗氧化能力從而使H9c2細胞在缺氧環(huán)境下減少損傷與死亡。

        細胞自噬失調(diào)會對細胞產(chǎn)生不利的影響[18],長時間缺氧會誘導心肌細胞過度自噬,造成組織損傷[19]。心肌細胞過度自噬會使細胞形態(tài)發(fā)生異常變化,積累活性氧,加重組織損傷[20],而中藥具有抑制細胞過度自噬的潛力[21]。PI3K/Akt/mTOR通路是一條經(jīng)典的自噬調(diào)控途徑[22],激活PI3K/Akt/mTOR通路可抑制細胞過度自噬[23]。LC3是自噬體膜形成的關(guān)鍵,細胞質(zhì)中LC3Ⅰ轉(zhuǎn)化為LC3Ⅱ則代表自噬激活,因此檢測LC3BⅠ與LC3BⅡ的蛋白表達可用于判定細胞自噬激活程度[24-25]。芝麻素在癌細胞中更多的是抑制PI3K/Akt/mTOR信號通路誘導凋亡[26],但在正常細胞中也存在激活作用[27]。芝麻素通過激活細胞模型中PI3K/Akt/mTOR信號通路,抑制LC3BⅠ向LC3BⅡ的轉(zhuǎn)化,并通過透射電鏡觀察發(fā)現(xiàn)自噬體形成減少,說明心肌細胞自噬水平受到了抑制,表明芝麻素減輕心肌缺血再灌注損傷的機制與激活PI3K/Akt/mTOR通路密切相關(guān)。

        綜上所述,芝麻素預(yù)處理可以抵抗心肌缺血再灌注損傷誘導的細胞凋亡,調(diào)節(jié)氧化應(yīng)激失衡,減輕心肌細胞損傷,其作用可能與激活PI3K/Akt/mTOR通路,減少細胞異常自噬有關(guān)。

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