王 璐, 徐婷貞, 周林水, 朱淵紅
[浙江中醫(yī)藥大學(xué)附屬第一醫(yī)院(浙江省中醫(yī)院),浙江 杭州 310006]
肺纖維化(pulmonary fibrosis,PF)是一類由多種病因引起的,以成纖維細胞增殖、細胞外基質(zhì)(extracellular matrix,ECM)沉積為特征,并伴有炎癥損傷、組織結(jié)構(gòu)破壞的肺實質(zhì)性病變。近些年來,由于環(huán)境因素的影響和治療手段的限制,人群中肺纖維化的發(fā)病率和死亡率呈逐年上升趨勢,為社會經(jīng)濟和醫(yī)療衛(wèi)生事業(yè)發(fā)展帶來了巨大的負擔[1]。
PF 發(fā)病機制復(fù)雜,至今尚未完全闡明。目前認為上皮-間充質(zhì)轉(zhuǎn)化(epithelial-mesenchymal transition,EMT)是引起PF 的重要因素[2];與此同時,越來越多的證據(jù)提示巨噬細胞極化所產(chǎn)生的不同微環(huán)境可影響EMT 的發(fā)生[3-4]。研究顯示,巨噬細胞有M1和M2 兩個免疫功能明確的亞群,M1 型被稱為經(jīng)典活化巨噬細胞,通常由LPS、IFN-γ 誘導(dǎo),具有極強的吞噬功能和促炎作用;M2 型即替代活化巨噬細胞,由IL-4、IL-13 誘導(dǎo)分化,主要發(fā)揮抗炎、促修復(fù)的作用[4-6]。目前研究顯示無論是體內(nèi)抑或是體外PF 模型中,均存在巨噬細胞亞群失衡的情況,M2 型巨噬細胞過多可直接影響EMT、纖維細胞激活、膠原沉積,以及病理性重塑等環(huán)節(jié)[3-4,7],但具體機制尚未完全闡明。
C-C 基序趨化因子 22(C-C motif chemokine 22,CCL22)是一類C-C 趨化因子,又稱巨噬細胞衍生趨化因子(macrophage-derived chemokine,MDC),主要由M2 型巨噬細胞釋放;C-C 基序趨化因子受體4(CC motif chemokine receptor 4,CCR4)是 CCL22 的受體。此前,已有研究指出在肺纖維化疾病中,存在CCL22 和 CCR4 的差異表達[8-10],但這些研究并未將CCL22和CCR4作為整個信號軸進行研究,并且對于效應(yīng)細胞和影響PF的具體分子機制均未有闡述。
本研究關(guān)注不同表型巨噬細胞,通過將無生物學(xué)特性的M0、促炎性質(zhì)的M1 和抑炎性質(zhì)的M2 型巨噬細胞分別與肺泡上皮細胞進行共培養(yǎng),旨在明確M2型巨噬細胞可否通過CCL22-CCR4途徑引起肺泡上皮細胞EMT,為進一步闡述PF 機制提供參考資料。
人外周血的單核細胞系THP-1 和肺泡上皮細胞A549 細胞購自武漢普諾賽生命科技有限公司。1640 培養(yǎng)液、DMEM 培養(yǎng)液購自 HyClone;胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)、PBS、胰酶和青-鏈霉素雙抗購自Gibco;脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)和佛波酯(phorbol ester,PMA)購自Sigma;rhIFN-γ、rhIL-4和 rhIL-13 均 購 自 PeproTech;CCR4 受 體 抑 制 劑AZD2098 購自上海陶素生化科技有限公司;CCK-8試劑購盒購自北京碧云天科技有限公司;Annexin VFITC/PI 檢測試劑盒購自南京凱基生物有限公司;CCL22/MDC ELISA 試劑盒購自 Bio-Swamp;Trizol 試劑購自Invitrogen;逆轉(zhuǎn)錄試劑盒、實時定量PCR試劑購自ABI;引物由明琛志遠生物技術(shù)(北京)有限公司合成;所有抗體購自Affinity、Abcam、Sigma-Aldrich或CST。CO2培養(yǎng)箱(Thermo);熒光顯微鏡(Olympus);酶標儀(Thermo);熒光定量PCR 儀(ABI);蛋白電泳分離、轉(zhuǎn)膜和成像系統(tǒng)(Bio-Rad)。
2.1 細胞培養(yǎng) THP-1 和A549 細胞分別使用含有10%FBS 的1640培養(yǎng)液(內(nèi)含1%青-鏈霉素雙抗)和含有10% FBS 的DMEM 培養(yǎng)液(內(nèi)含1%青-鏈霉素雙抗),放置于37 ℃、5%CO2、飽和濕度條件下培養(yǎng),隔天更換培養(yǎng)液,按1∶3的比例傳代。
2.2 巨噬細胞亞群誘導(dǎo) 取處于對數(shù)生長期,生長狀態(tài)良好的THP-1 細胞,以每孔5×105個接種于細胞培養(yǎng)6孔板中的Transwell小室,37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)過夜;更換含PMA 的1640 培養(yǎng)液進行誘導(dǎo)。單核細胞組:THP-1 細胞不進行任何處理;M0 組:THP-1 細胞經(jīng) PMA(150 nmol/L)處理 72 h;M1 組:THP-1 細胞經(jīng)PMA(150 ng/L)處理72 h,再經(jīng)10 ng/L LPS 和 20 μg/L rhIFN-γ 處理 24 h;M2 組:THP-1 細胞經(jīng) PMA(150 nmol/L)處理 72 h,再經(jīng) 20 μg/L rhIL-4和20 μg/L rhIL-13處理72 h[11-12]。
2.3 實驗分組 待巨噬細胞分化成功后,實驗分為5 組:正常對照(A549)組:只進行A549 細胞培養(yǎng);M0共培養(yǎng)(A549+M0)組:上室加入M0,下室加入A549細胞;M1 共培養(yǎng)(A549+M1)組:上室加入M1,下室加入A549 細胞;M2 共培養(yǎng)(A549+M2)組:上室加入M2,下室加入 A549 細胞;M2+CCR4 抑制劑共培養(yǎng)(A549+M2+AZD2098)組:上室加入 M2,下室加入A549 細胞及 10 μmol/L AZD2098[13-14],根據(jù)不同實驗,培養(yǎng)0、24、36、48或72 h。
2.4 CCK-8 檢測 按照分組,取處于對數(shù)生長期,生長狀態(tài)良好的A549 細胞,以每孔5×104個接種于培養(yǎng)板(培養(yǎng)液體積500 μL),放置于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)過夜;將已貼有巨噬細胞(M0、M1、M2)的Transwell 小室挪至A549 培養(yǎng)板中。培養(yǎng)24、36、48 和72 h 后,取出小室。收集細胞培養(yǎng)液,每100 μL 培養(yǎng)液加入 10 μL CCK-8 反應(yīng)液,繼續(xù)于培養(yǎng)箱內(nèi)孵育1 h。收集細胞上清,用酶標儀檢測各孔在波長450 nm 處的吸光度(A)值。以時間為橫坐標,A450值為縱坐標,繪制細胞生長曲線。
2.5 劃痕實驗 使用記號筆在細胞培養(yǎng)板背后,均勻劃橫線;接種A549 細胞于37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng);待細胞密度達到60%左右,鋪滿6 孔板底部,用200 μL吸頭垂直于背后的橫線劃痕;PBS洗細胞3次,去除懸浮的細胞,加入無血清培養(yǎng)液,同時拍取0 h照片;按照分組,將貼有巨噬細胞(M0、M1、M2)的小室挪至A549細胞培養(yǎng)板中共培養(yǎng),24和36 h后分別拍照。
2.6 Annexin V-FITC/PI雙染法檢測細胞凋亡 按照CCK-8 實驗步驟,完成A549 細胞接種、共培養(yǎng)。48 h后,取出上室,用不含EDTA的0.25%胰酶消化細胞,終止消化后收集A549細胞。按照說明書,離心,清洗細胞后,加入500 μL 結(jié)合緩沖液,重懸細胞;加入5 μL AnnexinV-FITC 和 5 μL 碘化丙啶(propidium iodide,PI),混勻;室溫避光反應(yīng)10 min;上流式細胞儀檢測。
2.7 ELISA檢測細胞上清CCL22水平 共培養(yǎng)48 h后,收集下室培養(yǎng)液,離心后小心吸取細胞上清,使用人CCL22/MDC ELISA 試劑盒檢測CCL22 表達水平。每個樣品重復(fù)3次,取平均值,實驗重復(fù)2次。
2.8 RT-qPCR 實驗 使用 Trizol 提取各組 A549 細胞的總RNA,測定RNA 濃度及純度后,采用反轉(zhuǎn)錄試劑,將RNA 反轉(zhuǎn)錄成cDNA。以此cDNA 為模板,進行 PCR 擴增:95 ℃ 45 s,60 ℃ 60 s,72 ℃ 1 min,共進行44 個循環(huán)。RT-qPCR 引物序列見表1。以18S為內(nèi)參照,采用2-ΔΔCt法計算各組目的基因的相對表達水平。
表1 RT-qPCR引物序列Table 1. The sequences of the primers for RT-qPCR
2.9 Western blot 檢測蛋白表達 共培養(yǎng)48 h 后收集A549 細胞,使用RIPA(含磷酸酶抑制劑和蛋白酶抑制劑cocktail)置冰上將細胞充分裂解,并用BCA法檢測蛋白濃度;變性離心后取上清進行蛋白上樣。按照Western blot 實驗常規(guī)操作流程進行電泳-轉(zhuǎn)膜-封閉-Ⅰ抗孵育-Ⅱ抗孵育-顯影曝光??贵w信息如下:精氨酸酶1(arginase-1,Arg-1)、誘導(dǎo)型一氧化氮合酶(inducible nitric oxide synthase,iNOS)及CCR4抗體(Affinity),E-cadherin 抗體(Abcam),Smad2/3 和p-Smad2/3 抗體(Cell Signaling Technology),1∶1 000;α-平滑肌肌動蛋白(α-smooth muscle actin,α-SMA)抗體(Sigma-Aldrich),1∶3 000;GADPH 抗體(Proteintech),1∶5 000。ImageJ 軟件分析蛋白條帶灰度值,計算目的蛋白的相對表達量。
采用GraphPad Prism 7 軟件進行分析。計量資料用均數(shù)±標準誤(mean±SEM)表示。組間均數(shù)比較采用單因素方差分析及LSD-t檢驗。以P<0.05 為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
光鏡下觀察THP-1 及各組巨噬細胞形態(tài)變化。如圖1A 所示:未經(jīng)處理的THP-1 細胞為圓形的懸浮細胞,不貼壁;經(jīng)過PMA 處理72 h 后的M0 型巨噬細胞細胞貼壁,有小觸角;經(jīng)PMA 和LPS、IFN-γ處理的M1 型巨噬細胞細胞貼壁,觸角長;先后經(jīng)PMA 以及IL-4、IL-13處理的M2型巨噬細胞細胞貼壁,觸角短,與M0組形態(tài)相近。
隨后提取4 組細胞總RNA 及蛋白,進行RT-qPCR反應(yīng)和Western blot檢測。結(jié)果顯示,與正常組相比,M0 組細胞 iNOS、IL-12β、Arg-1 和 IL-10 mRNA 表達均無顯著變化;M1 組細胞 iNOS 和IL-12β mRNA表達增加(P<0.05),而Arg-1 和IL-10 mRNA 表達無顯著變化;M2 組細胞則主要表現(xiàn)為Arg-1 和IL-10 mRNA 表達顯著增加(P<0.01),見圖 1B。Western blot結(jié)果同樣顯示了M1、M2組分別以iNOS、Arg-1蛋白顯著升高為特點的改變(P<0.05),見圖1C。因此,可認為M1、M2型巨噬細胞誘導(dǎo)分化成功。
Figure 1. Identification of macrophage phenotype. A:cell morphological changes(scale bar=50 μm);B:iNOS,IL-12β,Arg-1,and IL-10 mRNA levels were measured by RT-qPCR;C:the protein levels of iNOS and Arg-1 were assessed by Western blot. Mean±SEM. n=3.*P<0.05,**P<0.01 vs THP-1 group;#P<0.05,##P<0.01 vs M0 group.圖1 巨噬細胞表型的鑒定
分別將 M0、M1、M2 型巨噬細胞與 A549 進行共培養(yǎng)。CCK-8 結(jié)果顯示,與M0、M2 型巨噬細胞共培養(yǎng) 36、48 或 72 h 后,A549 細胞活力與正常對照 A549細胞無顯著差異,但與M1 型巨噬細胞共培養(yǎng)后,A549 細胞活力顯著降低(P<0.01);與M1 共培養(yǎng)組相比,M2 組的細胞活力顯著提高(P<0.05),見圖2A。根據(jù)細胞生長速度,劃痕實驗選擇了與巨噬細胞共培養(yǎng)24和36 h時點,觀察各組A549細胞遷移能力,結(jié)果顯示:與正常對照組細胞相比,M1 共培養(yǎng)組的細胞遷移能力顯著減退(P<0.01),而M2型巨噬細胞則可促進A549 細胞遷移(P<0.05),見圖2B。凋亡實驗以共培養(yǎng)48 h 為終點,結(jié)果顯示,共培養(yǎng)48 h,M1 型巨噬細胞可顯著誘導(dǎo)A549 細胞凋亡(P<0.01),而M2 型巨噬細胞則可抑制細胞凋亡(P<0.01);M0 型巨噬細胞對A549 細胞凋亡影響較小,與正常組相比無顯著差異,見圖2C。
結(jié)合CCK-8、劃痕和凋亡實驗結(jié)果,該實驗進一步觀察了共培養(yǎng)48 h 時A549 細胞形態(tài)學(xué)以及EMT表型的變化。如圖3A 所示,光鏡下,單獨培養(yǎng)的A549 細胞為上皮樣形態(tài),細胞緊密性高;而經(jīng)過巨噬細胞共培養(yǎng)后,細胞發(fā)生形態(tài)變化,其中以M2 共培養(yǎng)組變化最為顯著,細胞呈細長梭形伴有間隙增大。Western blot 結(jié)果顯示,與正常A549 細胞相比,M1 組E-cadherin 蛋白表達未見差異,M2 組則顯著降低(P<0.01);同時,M1 組α-SMA 表達較對照組顯著降低(P<0.01),而M2 組α-SMA 表達則無顯著變化,見圖 3B。RT-qPCR 結(jié)果顯示,當 A549 細胞與 M2 型巨噬細胞共培養(yǎng)時,其E-cadherin mRNA 表達較正常對照細胞顯著下調(diào)(P<0.01),而fibronectin mRNA 表達上調(diào)(P<0.05),見圖3C。
Figure 2. Effect of different phenotypes of macrophages on the viability,migration and apoptosis of A549 cells. A:CCK-8 assay was used to detect the viability of A549 cells;B:scratch wound healing assay was used to assess the migration capacity of A549 cells(scale bar=100 μm),and the relative rates of wound closure at 24 and 36 h were shown;C:Annexin V-FITC/PI assay was used to determine the cell apoptosis,and the apoptosis rates of A549 cells co-cultured with M0,M1 and M2 macrophages for 48 h were shown. Mean±SEM. n=3.*P<0.05,**P<0.01 vs A549 group.圖2 不同表型巨噬細胞對A549細胞活力、遷移和凋亡的影響
ELISA結(jié)果顯示:與正常上皮細胞組相比,M2組A549 細胞上清中CCL22 的表達量有顯著升高(P<0.01)。RT-qPCR 和 Western blot 結(jié)果顯示,與其余 3組相比,M2 組上皮細胞具有更高的CCR4 mRNA 水平(P<0.05)。與此同時,M2 組的CCR4 蛋白表達也顯著增高,以及Smad2/3蛋白的磷酸化激活水平也上調(diào)(P<0.01),見圖4。
Western blot 結(jié)果顯示,當M2 共培養(yǎng)組加入CCR4 抑制劑 AZD2098 時,其CCR4 表達顯著減少(P<0.01),而 EMT 表型的變化較 M2 共培養(yǎng)組顯著逆轉(zhuǎn),即E-cadherin 的蛋白表達升高,而α-SMA 的表達降低(P<0.01),并伴有Smad2/3 磷酸化信號的顯著下調(diào)(P<0.01),見圖5。
趨化因子是一類由細胞分泌的可以引起趨化反應(yīng)的小分子細胞因子或信號蛋白。近些年幾項轉(zhuǎn)錄組測序研究結(jié)果顯示,趨化因子在巨噬細胞介導(dǎo)的PF 中占據(jù)了重要作用,例如 CCL2、CCL3(MIP-1)、CCL5、CCL17、CCL18、CCL22等[15-17]。CCL22,又稱為STCP-1(刺激T 細胞趨化蛋白1),是一種新的人類CC趨化因子,表達于巨噬細胞、T細胞及NK細胞,因其主要由M2 型巨噬細胞釋放,又被視為M2 型巨噬細胞標志物[18]。
Figure 3. Effects of different phenotypes of macrophages on the morphological changes and EMT of A549 cells. A:morphological changes of the cells(scale bar=100 μm);B:Western blot analysis for E-cadherin and α-SMA protein expression;C:RT-qPCR analysis for E-cadherin and fibronectin mRNA expression. Mean±SEM. n=3.*P<0.05,**P<0.01 vs A549 group.圖3 不同表型巨噬細胞對A549肺泡上皮細胞形態(tài)及EMT的影響
Figrure 4. The activation of CCL22-CCR4 axis and Smad2/3 signaling pathway in A549 cell co-cultured with different phenotypes of macrophages. A:ELISA analysis for the concentration of CCL22 in cell supernatants;B:RT-qPCR analysis for CCR4 mRNA expression;C:Western blot analysis for CCR4,Smad2/3 and p-Smad2/3 protein levels. Mean±SEM. n=3.*P<0.05,**P<0.01 vs A549 group;#P<0.05,##P<0.01 vs A549+M0 group.圖4 不同表型巨噬細胞對A549細胞CCL22-CCR4-Smad2/3信號通路激活水平的影響
Figrure 5. The effect of CCR4 inhibitor AZD2098 on CCL22-CCR4 axis and Smad2/3 signaling pathway activation. A:Western blot analysis for CCR4,E-cadherin and α-SMA protein expression;B:Western blot analysis for Smad2/3 and p-Smad2/3 protein levels. Mean±SEM. n=3.**P<0.01 vs A549 group;##P<0.01 vs A549+M2 group.圖5 CCR4抑制劑AZD2098對A549細胞CCL22-CCR4-Smad2/3信號通路活化水平的影響
關(guān)于CCL22 與肺纖維化的研究可追溯到20 世紀初期,當時就有專家指出CCL22 可能在PF 疾病中發(fā)揮作用,并在特發(fā)性肺纖維化、結(jié)節(jié)病、放射相關(guān)性肺纖維化的患者肺組織、肺泡灌洗液標本以及大鼠模型中得到了驗證[8-9];另一方面,CCR4 作為CCL22 的受體,也被多次在肺纖維化臨床及基礎(chǔ)研究中觀察到有差異表達,例如在特發(fā)性肺纖維化、囊性纖維化患者以及博來霉素誘導(dǎo)的肺纖維化小鼠中,均顯示了 CCR4 水平的上調(diào)[9-10,19]。但這些研究只是簡單指出了CCL22 和CCR4 在肺纖維化疾病中存在差異,并未對其作用機制及具體的效應(yīng)細胞進行闡述,因此我們的研究是這部分內(nèi)容的擴展。
與此同時,越來越多的證據(jù)顯示,CCL22-CCR4軸在腫瘤類疾病和自身免疫相關(guān)性疾病[18,20]的EMT進程中發(fā)揮了作用,并且該過程受M2型巨噬細胞調(diào)控。例如,在多種鱗狀細胞癌和新月體腎小球腎炎的研究中,學(xué)者們觀察到M2 型巨噬細胞衍生的CCL22 可通過CCL22-CCR4 反應(yīng)軸,有選擇的趨化T淋巴細胞募集,參與疾病調(diào)控[21-22]。在肝癌的研究中,專家們也觀察到CCL22 作用于肝癌細胞受體CCR4 后,可進一步激活Smad 信號通路,進而促進腫瘤細胞發(fā)生EMT,這一途徑被視為M2型巨噬細胞影響肝癌轉(zhuǎn)移的新機制[18]。從這些研究受到啟發(fā),我們從CCL22-CCR4 軸的角度探討了M2 型巨噬細胞促進EMT 的分子過程,并且關(guān)注于公認的肺纖維化經(jīng)典信號通路——Smad信號通路[23-24]。
我們的結(jié)果顯示,與無生物學(xué)特性的M0型巨噬細胞和促炎作用為主的M1型巨噬細胞相比,當肺泡上皮細胞與M2型巨噬細胞共培養(yǎng)后,其上皮細胞表型逐漸向間充質(zhì)表型轉(zhuǎn)變,并且細胞生長、遷移能力顯著提高,而凋亡水平則下降,并且纖維化相關(guān)信號通路Smad2/3 有顯著激活;當我們使用CCR4 抑制劑后,可以看到伴隨著Smad 信號通路的下調(diào),EMT 過程被抑制,該研究結(jié)果較好驗證了我們的設(shè)想,也是對先前研究的補充。值得指出的是,有研究表明,CCL22 雖主要由M2 型巨噬細胞分泌,但CCL22 反過來也會促進IL-13 的產(chǎn)生,進一步促進M2 型巨噬細胞合成[4],盡管本研究中未涉及該部分內(nèi)容,但我們認為這條途徑也可能是M2 型巨噬細胞共培養(yǎng)模型引起EMT的另一途徑;同時,如果能使用博來霉素誘導(dǎo)的小鼠肺纖維化模型進行研究,可能對于潛在機制的闡述更有意義。
綜上所述,我們的體外研究提示M2型巨噬細胞可增強肺泡上皮細胞活力、遷移能力,并抑制其凋亡,最終促進EMT,其機制可能與CCL22-CCR4-Smad2/3信號通路的激活有關(guān)。