李 敏,呂佳玳,劉月月,李俐睿,周瀟瀟,李桂黎,岳建國(guó),黃 勇*
(1.四川省成都市動(dòng)物疫病預(yù)防控制中心,四川 成都 610041;2.四川農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物醫(yī)學(xué)院,四川 成都 611130)
本試驗(yàn)選用國(guó)內(nèi)具有代表性的兩個(gè)IBV疫苗株H120 和4∕91 和課題組 分離的GVI-1 分離株ZQX 作為研究對(duì)象,先選取在抵抗IBV 感染中發(fā)揮重要作用的固有免疫相關(guān)基因(TLR3、TLR7、MDA5、IFN-β、IL-6)為目的基因,設(shè)計(jì)引物,制作標(biāo)準(zhǔn)曲線,建立檢測(cè)目的基因表達(dá)的熒光定量RT-PCR 方法,然后用兩種常用的疫苗株H120和4∕91 分別免疫雞,2 周后使用ZQX 攻毒,觀察臨床癥狀,統(tǒng)計(jì)發(fā)病率、死亡率,并采用熒光定量RT-PCR 方法測(cè)定不同疫苗免疫組在不同時(shí)間的固有免疫相關(guān)基因的表達(dá)倍數(shù)。從固有免疫角度對(duì)兩個(gè)疫苗株的免疫機(jī)理進(jìn)行分析,為明確IBV 的免疫機(jī)理和GVI-1 型毒株的致病機(jī)理提供參考。
1.1 SPF雞胚及IBV毒株 本試驗(yàn)所用SPF雞胚購(gòu)自北京梅里亞維通實(shí)驗(yàn)動(dòng)物技術(shù)有限公司,并在實(shí)驗(yàn)室自行孵化。4∕91疫苗購(gòu)自Intervet公司,H120 疫苗購(gòu)自中國(guó)獸藥監(jiān)察所,攻毒所用毒株ck∕CH∕YNSL∕160501(NCBI登錄號(hào):MN096598,以下簡(jiǎn)稱ZQX)從四川省一家養(yǎng)殖場(chǎng)分離。采用Reed-Muench 法測(cè)定分離株ZQX 和疫苗株H120、4∕91 的雞胚半數(shù)感染量(EID50)[1],結(jié)果分別為105.28∕0.1 mL、106.80∕0.1 mL、106.32∕0.1 mL。
1.2 主要試劑 總RNA 提取試劑盒(Trizol),PrimeScript RT-PCR Kit 反轉(zhuǎn)錄試劑盒、熒光定量試劑盒(SYBR?Premix Ex TaqTMⅡ)、PMD19-T載體、限制性內(nèi)切酶、Premix Taq,購(gòu)自大連寶生物有限公司;PBS緩沖液;DNA Marker-L,購(gòu)自生工生物工程(股份)有限公司。
1.3 構(gòu)建熒光定量PCR標(biāo)準(zhǔn)曲線
1.3.1 引物設(shè)計(jì) 根據(jù)參考文獻(xiàn)[2]的結(jié)果,直接選擇ACTB 作為內(nèi)參基因,內(nèi)參基因ACTB 的引物參考已發(fā)表的文獻(xiàn),根據(jù)NCBI 上已發(fā)表的目的基因TLR3、TLR7、MDA5、IFN-β、IL-6 的核苷酸序列,利用Oligo7.0軟件設(shè)計(jì)并優(yōu)化引物,使擴(kuò)增的目的片段保持在100~200 bp 之間,用于目的片段的擴(kuò)增及標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立。所有引物在生工生物工程(上海)股份有限公司合成,具體信息見表1。
表1 熒光定量引物信息
1.3.2 標(biāo)準(zhǔn)曲線構(gòu)建 參照文獻(xiàn)[3]方法建立標(biāo)準(zhǔn)曲線。將標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒用ddH2O進(jìn)行10倍倍比稀釋,在LightCycler?96 SW 熒光定量PCR 儀上進(jìn)行Real-time PCR反應(yīng),采用10 μL體系(上、下游引物各1.0 μL,0.8 μL 標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒和7.2 μL 雙蒸水)。引物與模板兩兩組合,反應(yīng)程序設(shè)定為:預(yù)變性95 ℃30 s,變性95 ℃5 s,退火52~57 ℃30 s,延伸72 ℃20 s,40個(gè)循環(huán)。確定線性回歸,并根據(jù)循環(huán)閾值(Ct 值)繪制含有插入物的質(zhì)粒DNA 拷貝數(shù)的對(duì)數(shù)值,將Ct 值轉(zhuǎn)換為拷貝數(shù),構(gòu)建內(nèi)參基因及目的基因的標(biāo)準(zhǔn)曲線。
1.4 試驗(yàn)方法
1.4.1 免疫和攻毒方案 1 日齡SPF 雞48 只,隨機(jī)分為4組,每組12只,分別飼養(yǎng)在4個(gè)相互隔離的區(qū)域。在10 日齡時(shí)對(duì)雞群免疫,24 日齡時(shí)對(duì)雞群攻毒。具體方案為:A組、B組不免疫(用PBS緩沖液代替),10日齡時(shí)對(duì)C 組、D 組雞分別進(jìn)行H120和4∕91免疫,免疫劑量為105EID50∕0.1 mL,免疫方式為點(diǎn)眼和滴鼻;24日齡時(shí)分別對(duì)B、C、D組雞接種ZQX 株,劑量為104EID50∕0.1 mL;A 組作為空白對(duì)照組接種PBS,劑量為0.1 mL∕只,接種方式為點(diǎn)眼和滴鼻。每組雞自由采食,隔離飼養(yǎng)。攻毒后持續(xù)觀察并記錄各組雞的臨床癥狀、發(fā)病率、死亡率及組織剖檢變化。
1.4.2 固有免疫相關(guān)基因mRNA 表達(dá)差異的測(cè)定 分別在攻毒后1、3、5、7 d 每組隨機(jī)剖殺3 只雞,觀察記錄組織病變,無(wú)菌采集雞的氣管(不包括喉頭)于液氮中保存?zhèn)溆?。將氣管剖開,用手術(shù)刀片刮取氣管黏膜,提取RNA,反轉(zhuǎn)錄得到cDNA,于-70 ℃保存?zhèn)溆?。以cDNA 為模板,采用已構(gòu)建好的PCR 方法檢測(cè)各個(gè)樣品中內(nèi)參基因ACTB及目的基因TLR3、TLR7、MDA5、IFN-β、IL-6的表達(dá)量,隨后計(jì)算B、C、D組各個(gè)目的基因相對(duì)于對(duì)照組的表達(dá)倍數(shù),使用2-△△Ct法計(jì)算表達(dá)比率,△△Ct=(試驗(yàn)組目的基因的Ct值-試驗(yàn)組內(nèi)參基因的Ct 值)-(對(duì)照組目的基因的Ct 值-對(duì)照組內(nèi)參基因的Ct 值)。最后用GraphPad Prism 8軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。
2.1 熒光定量PCR標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立 本試驗(yàn)共建立了6個(gè)RT-qPCR標(biāo)準(zhǔn)曲線,將10倍倍比稀釋的標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒在LightCycler?96 SW熒光定量PCR儀上進(jìn)行Real-time PCR 反應(yīng),反應(yīng)結(jié)束后對(duì)樣品進(jìn)行編輯并分析,依次添加需要分析的選項(xiàng),軟件自動(dòng)生成標(biāo)準(zhǔn)曲線。內(nèi)參基因ACTB 的熒光定量標(biāo)準(zhǔn)曲線為Y=-3.504LgX+2.93(X為起始模板的量,Y為Ct 值);目的基因TLR3 的標(biāo)準(zhǔn)曲線為Y=-3.314LgX+3.92;TLR7 的標(biāo)準(zhǔn)曲線為Y=-3.289LgX+2.36;MDA5 的標(biāo)準(zhǔn)曲線為Y=-3.508 1LgX+2.14;IFN-β的標(biāo)準(zhǔn)曲線為Y=-3.115 7LgX+3.67;IL-6 的標(biāo)準(zhǔn)曲線為Y=-3.497 51LgX+1.75。
2.2 動(dòng)物實(shí)驗(yàn)
2.2.1 臨床表現(xiàn) 攻毒后B、C、D 組雞相繼出現(xiàn)呼吸癥狀,表現(xiàn)為:打噴嚏、呼吸困難、氣管啰音,且羽毛蓬松、精神沉郁、采食量下降,全程無(wú)雞只死亡。A 組無(wú)臨床癥狀,B 組攻毒對(duì)照組發(fā)病率為66.7%,C 組和D 組的發(fā)病率分別為25%、33.33%,說(shuō)明疫苗株H120 和4∕91 對(duì)分離株ZQX均有一定的保護(hù)作用,能夠明顯降低雞傳支的發(fā)病率。
2.2.2 剖檢病變 剖檢結(jié)果表明,ZQX引起的最普遍病變?yōu)闅夤艹鲅?、有黏液,其次為盲腸扁桃體出血、腎臟腫大及腸道出血,但是腎臟病變不是特別明顯。疫苗株H120和4∕91對(duì)ZQX都具有一定的保護(hù)作用,兩者差異不明顯,統(tǒng)計(jì)結(jié)果見表2。
表2 剖檢病變統(tǒng)計(jì)
2.3 固有炎癥因子IFN-β mRNA表達(dá)水平的測(cè)定 IFN-β mRNA在攻毒后不同時(shí)間點(diǎn)氣管黏膜中的表達(dá)情況如圖1所示。A組為空白對(duì)照組,B組為攻毒組,C、D 組分別為H120、4∕91 免疫攻毒組。攻毒后免疫組C 組的IFN-β mRNA 表達(dá)水平在第1 d 和第5 d 出現(xiàn)了顯著上調(diào),D 組僅在第5 d 出現(xiàn)了上調(diào);免疫組C、D 組的IL-6 mRNA 表達(dá)水平在第1 d顯著上調(diào),且C組上調(diào)水平高于D組,C、D 組在第3 d 也出現(xiàn)了上調(diào),其余時(shí)間點(diǎn)及其他組的轉(zhuǎn)錄水平則都趨于穩(wěn)定。
圖1 ZQX攻毒后氣管中炎癥因子IFN-β mRNA的表達(dá)情況
2.4 固有免疫相關(guān)基因mRNA 表達(dá)水平的測(cè)定 TLR3、TLR7、MDA5的mRNA水平在攻毒后不同時(shí)間點(diǎn)氣管黏膜中的表達(dá)情況如圖2 所示。A組為空白對(duì)照組,B組為攻毒組,C、D組分別為H120、4∕91 免疫攻毒組。攻毒后,C、D 免疫組TLR3 的mRNA 表達(dá)水平在第3 d 顯著上調(diào),且C組的上調(diào)水平顯著高于D組,其他時(shí)間點(diǎn)都趨于穩(wěn)定;B 組攻毒組TLR7 mRNA 的表達(dá)水平在第5 d出現(xiàn)了顯著上調(diào),免疫組中只有C組在攻毒后第3 d 出現(xiàn)了顯著上調(diào),其余時(shí)間點(diǎn)及其他組的轉(zhuǎn)錄水平則都趨于穩(wěn)定甚至顯著下調(diào);對(duì)于MDA5 mRNA的表達(dá)水平,C組在第1 d就出現(xiàn)了顯著上調(diào),D 組到第3 d 才出現(xiàn)了這種顯著性上調(diào),而后在第5、7 d 免疫組與感染組都呈現(xiàn)出不同程度的顯著下調(diào),TLR7也出現(xiàn)了相同的狀況。
圖2 ZQX攻毒后氣管中TLR3、TLR7、MDA5 mRNA的表達(dá)情況
疫苗免疫是防控雞傳支(IB)的主要策略,但I(xiàn)BV 毒株的變異常降低疫苗的有效性和保護(hù)性[4]。IBV 疫苗的免疫和保護(hù)機(jī)制非常復(fù)雜[5]。GVI-1型分離株ZQX 是近幾年流行的IBV 新毒株[6],致病性不強(qiáng),動(dòng)物實(shí)驗(yàn)的解剖病變與H120 免疫攻毒組和4∕91免疫攻毒組相比差異不明顯,因此進(jìn)一步通過(guò)實(shí)時(shí)熒光定量PCR對(duì)其5個(gè)目的基因的表達(dá)水平進(jìn)行檢測(cè)。
比較不同組間炎癥因子mRNA 的表達(dá)水平,可以發(fā)現(xiàn)免疫組的表達(dá)量在前期均高于空白對(duì)照組和攻毒組,但是對(duì)比攻毒組其上調(diào)趨勢(shì)隨著時(shí)間的推移逐漸減緩,逐步與機(jī)體本身炎癥因子的表達(dá)水平持平,這可能是因?yàn)槊庖呓M前期通過(guò)上調(diào)抗病毒天然免疫通路對(duì)病毒進(jìn)行清除,導(dǎo)致了下游干擾素與白介素因子的一部分上調(diào)。
綜合比較H120免疫攻毒組和4∕91免疫攻毒組各個(gè)目的基因表達(dá)高峰出現(xiàn)的時(shí)間,發(fā)現(xiàn)H120免疫攻毒組中基因的表達(dá)高峰幾乎都在4∕91 免疫攻毒組之前,也就是說(shuō)H120 疫苗株發(fā)揮作用的時(shí)間早于4∕91疫苗株。由于H120免疫株是由IBV Mass 型的H株傳120獲得的,故其對(duì)機(jī)體的適應(yīng)性更高,在相同情況下的復(fù)制能力比4∕91更強(qiáng),對(duì)機(jī)體的保護(hù)作用也更迅速。
H120 和4∕91 疫苗對(duì)ZQX 株能提供一定程度的臨床保護(hù)。H120 疫苗攻毒組,在攻毒后1 d MDA5 mRNA 的表達(dá)水平達(dá)到高峰,攻毒后3 d TLR3、TLR7 mRNA的表達(dá)水平達(dá)到高峰;4∕91疫苗攻毒組,在攻毒后7 d TLR3、TLR7 mRNA的表達(dá)水平達(dá)到高峰,在攻毒后3 d MDA5 mRNA 的表達(dá)水平較高。H120 疫苗攻毒組,在攻毒后1 d IFN-β mRNA、IL-6 mRNA 的表達(dá)水平達(dá)到高峰;4∕91疫苗攻毒組,IFN-β mRNA的表達(dá)水平在攻毒后5 d 達(dá)到高峰,IL-6 mRNA 的表達(dá)水平在攻毒后1 d 達(dá)到高峰??梢奌120 免疫組感染ZQX 后固有免疫相關(guān)基因的表達(dá)比4∕91 免疫組更為快速。
本研究探討了H120免疫攻毒組和4∕91免疫攻毒組中5 個(gè)固有免疫相關(guān)基因在攻毒后1、3、5、7 d 的表達(dá)差異,得到了各個(gè)基因的表達(dá)動(dòng)態(tài),有利于在免疫學(xué)水平上闡明機(jī)體抵抗病毒感染的原因,為以后IBV 的天然免疫研究提供一定的參考。